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柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马ERK及其磷酸化的影响_杜雅薇

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柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马ERK及其磷酸化的影响_杜雅薇 收稿日期:2012 - 01 - 26 作者简介:杜雅薇(1980 -) ,女(蒙古族) ,博士,研究方向:中医脑 病。 热下行,引邪从小便而出,苦寒直折,使三焦火邪去而热毒 解,达到治疗中风的目的,从而控制其胃肠道并发症,减少 胃黏膜组织损伤。 经过本团队的前期研究成果表明,脑梗塞后的胃肠道 症状是一种脑梗塞后的并发症,而非机体的应激反应[5]。 脑梗塞急性期在低灌注的情况下,全身血流减少,血液需要 重新分配,胃肠因其特殊的供血系统和解剖结构成为血液 灌流减少发生最早,最明显的脏器 [6 - 7]。同时脑梗塞...
柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马ERK及其磷酸化的影响_杜雅薇
收稿日期:2012 - 01 - 26 作者简介:杜雅薇(1980 -) ,女(蒙古族) ,博士,研究方向:中医脑 病。 热下行,引邪从小便而出,苦寒直折,使三焦火邪去而热毒 解,达到治疗中风的目的,从而控制其胃肠道并发症,减少 胃黏膜组织损伤。 经过本团队的前期研究成果明,脑梗塞后的胃肠道 症状是一种脑梗塞后的并发症,而非机体的应激反应[5]。 脑梗塞急性期在低灌注的情况下,全身血流减少,血液需要 重新分配,胃肠因其特殊的供血系统和解剖结构成为血液 灌流减少发生最早,最明显的脏器 [6 - 7]。同时脑梗塞的急 性期容易继发脑水肿以及颅内压增高,导致胃肠血管收缩 甚至痉挛,引起胃肠道血流灌注不足、黏膜微循环障碍 -胃 黏膜血流量减少,进一步破坏胃肠屏障,加重胃肠道的并发 症。从中医角度来讲,脑为髓海,胃为水谷之海,二者在生 理、病理,经络等方面紧密相连,互为因果。脑之动力来源 于水谷精微,胃的活动接受于脑的支配,脑病及胃,胃病及 脑,二者相互影响。 本实验研究证明大鼠在脑梗塞急性期时,的确能够 造成胃肠道的黏膜损害,予以灌服达到治疗量的黄连解 毒汤能够有效的减少其胃肠道的损害,并且就电镜观察 结果来看略优于西咪替丁。黄连解毒汤具有药物简单, 药价低廉的优点,容易在临床广为推广。当然对于脑梗 塞的胃肠道并发症目前研究还较少,起步较晚,对于其 机制及不同干预因素对其的不同影响还值得进一步深 入研究,这将对脑梗塞急性期的胃肠并发症的防治有深 远的意义。 第 30 卷 第 6 期 2 0 1 2 年 6 月 中 华 中 医 药 学 刊 CHINESE ARCHIVES OF TRADITIONAL CHINESE MEDICINE Vol. 30 No. 6 Jun. 2 0 1 2 中 华 中 医 药 1367 学 刊 柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠 脑海马 ERK及其磷酸化的影响 杜雅薇1,王玉来2,尹岭3,赵秀敏3,秦绍林2,赵永烈2 (1.北京中医药大学东直门医院,北京 100700;2.北京中医药大学东方医院,北京 100078; 3.中国人民解放军总医院神经信息中心,北京 100853) 摘 要:目的:研究柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马 CA1、CA3、DG区 ERK及其磷酸化免疫阳性神经元 的影响。方法:将大鼠分为空白对照组、肝郁模型组、柴胡疏肝散组,运用模具束缚结合孤养的方法制备肝气郁结 证候动物模型,采用免疫组化法检测大鼠脑海马 CA1、CA3、DG 区 ERK 及其磷酸化免疫阳性神经元的细胞数。 结果:柴胡疏肝散可增高 ERK1 /2、P - ERK 在海马 CA3、DG 区的阳性细胞数。结论:柴胡疏肝散具有抗肝郁作 用,其机制可能与通过上调肝郁大鼠海马 CA3、DG区 ERK1 /2、P - ERK信号通路的活动而起到保护受损神经元, 改善大脑功能,缓解肝郁症状的作用。 关键词:肝气郁结证;柴胡疏肝散;ERK;海马;大鼠 中图分类号:R285. 5 文献标识码:A 文章编号:1673 - 7717(2012)06 - 1367 - 03 Effects of CHSG Powder on ERK and P - ERK in Hippocampus of Rats with Liver - qi Stagnation DU Ya-wei1,Wang Yu-lai2,YIN Ling2,ZHAO Xiu-min3,QIN Shao-lin2,ZHAO Yong-lie2 (1. Dongzhimen Hospital Affiliated to Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100700,China; 2. East Hospital Affiliated to Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100078,China; 3. Chinese PLA General Hospital,Beijing 100853,China) Abstract:Objective:To observe the effects of CHSG powder on ERK and P - ERK in hippocampus of rats with liver - qi stagnation. Methods:The rats were divided into three groups:control,model and CHSG powder group. This animal mod- el is made by the method of confining the rats'movement. The cell numbers of ERK1 /2、P - ERK in CA1、CA3 and DG sections of hippocampus in different groups were observed by immunohistochemical method. Results:CHSG powder can significantly improve the cell numbers of ERK1 /2、P - ERK in CA3 and DG sections of hippocampus . Conclusion:CHSG powder has antagonism against liver - qi stagnation by improving the cell numbers of ERK1 /2、P - ERK in CA3 and DG sections of hippocampus. Key words:liver - qi stagnation ;CHSG powder ;ERK ;hippocampus;rat 7631 第 30 卷 第 6 期 2 0 1 2 年 6 月 中 华 中 医 药 学 刊 CHINESE ARCHIVES OF TRADITIONAL CHINESE MEDICINE Vol. 30 No. 6 Jun. 2 0 1 2 中 华 中 医 药 1368 学 刊 肝气郁结证是中医情志致病的代表证候,引起肝郁证 的主要原因是情志不遂或其他原因影响气机升发和疏泄。 其临床表现为郁郁寡欢、善太息、悲伤欲哭等。本实验通过 运用模具束缚结合孤养的方法制备肝气郁结证侯动物模 型,用疏肝解郁的代表方柴胡疏肝散作为治疗药物,研究柴 胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马 ERK 及其磷酸化的影 响。 1 材 料 1. 1 动物 Wistar 大鼠,雄性,清洁级,体重 200 ~ 220 g, 由解放军总医院实验动物中心提供。 1. 2 药物 柴胡疏肝散(柴胡 6 g,陈皮 6 g,川芎 5 g,香附 5 g,枳壳 5 g,白芍 5 g,甘草 3 g,由解放军总医院中药房提 供)经冷水浸泡药材 2 h,常规两煎,头煎 1. 5 h,二煎 1 h,2 次水煎液混合并过滤,经水浴蒸发浓缩成含生药 0. 35 g / mL的浓缩药液冷藏备用。大鼠灌胃煎剂溶液量按人与动 物的每公斤体重剂量折算,为 3. 5 g / kg。 1. 3 仪器 RM -2014 石蜡切片机(德国莱卡) ,KD - BM 生物组织包埋机,Image - Pro Plus MIS2000 图像系统 (美国 Media Cybernetics 公司) ,OLYMPUSBX51 光学显微 镜,OLYMPUSDP71 照相显微镜(日本)。 1. 4 试剂 0. 01 M PBS,0. 01 M柠檬酸缓冲液,细胞通透 液,5%羊血清或封闭血清,含 0. 03%H2O2的 0. 05%DAB 2 方 法 2. 1 大鼠肝郁证动物模型的建立及分组 首先将 40 只大 鼠正常饲养、自由饮食、适应性饲养 1 周后,选用敞箱实验 (Openfield test )将评分相近的大鼠 30 只随机分为 3 组,分 别为空白对照组 10 只、肝郁模型组 10 只,、柴胡疏肝散治 疗组 10 只。模型的制备:在乔明琦[1]发明的大鼠肝郁模 型制做方法的基础上运用模具束缚结合孤养的方法制备。 将造模大鼠放入自制的细钢丝网笼内,对身躯及四肢起到 捆绑和束缚作用,使其行走困难、活动受限。每日束缚 6h, 从 9am - 3pm,然后定时观察并记录大鼠状态。从造模之日 起各组给予相关药物或生理盐水灌胃处理。空白对照组 (对照组) :不作任何刺激,等量生理盐水灌胃,1 次 /天;肝 郁模型组(模型组) :细钢丝网笼束缚,等量生理盐水灌胃, 1 次 /天;柴胡疏肝散组(治疗组) :细钢丝网笼束缚,中药灌 胃(3. 5g /kg) ,1 次 /天。服药时间为 2 周。 2. 2 取材 于造模第 2 周末次给药第 2 天,20%乌拉坦腹 腔麻醉大鼠(30mg /kg) ,仰卧位固定于手术盘中,暴露胸及 腹腔,沿胸骨剑突向两侧剪开皮肤,剪断膈肌,掀开整个胸 廓,打开心包,暴露心脏。灌注装置管道用 0. 9% Nacl 清洗 干净,排除气泡后,将灌注针在心尖处即左心室部插入到左 心室至主动脉,固定插管,立即剪开右心耳,可见静脉血流 出。迅速以预冷的 0. 9% Nacl 溶液灌流冲洗,直到肝脏颜 色变白,右心耳流出的液体变清为止(一般约需 200 ~ 300mL) ;然后再灌注 4℃预冷的 10%甲醛固定液,灌注量 约 200 ~ 250mL,速度先快后慢,当大鼠出现四肢和尾部抽 动时开始缓慢注入约 30min。灌注完成后立即取出大鼠完 整全脑,放入 10%的甲醛固定液中后固定 2 周。待固定完 成后取出脑组织,进行常规组织脱水、透明,行石蜡包埋。 2. 3 免疫组化染色 石蜡切片脱蜡入水,30% H2O2 封 闭内源性过氧化物酶,0. 01M 柠檬酸钠缓冲液中微波加 热修复 15min,山羊血清封闭液封闭后滴加兔抗鼠多克 隆抗体 ERK1 /2 4℃孵育过夜后,采用 SABC 法,滴加已 稀释的二抗,滴加试剂 SP 后放入 37℃ 烤箱中各孵育 30min,DAB 显色,复染、脱水、透明、封片。PBS 代替一 抗作为阴性对照。 2. 4 图像处理 选取每批每组冠状切面相似的切片进行 照像。用 OLYMPUS数码相机和 OLYMPUS 显微镜组合拍 摄图像,关闭数码相机所有自动功能,分别在显微镜 20 倍 物镜和数码相机 4 倍光学放大下进行照像。拍摄部位参照 包新民《大鼠脑立体定位图谱》[2]进行,CA1 区摄像点位于 门区的上方,CA3 区摄取迂回部,齿状回摄取接近折回部包 括上下两个颗粒层。图像在 Imagepro Plus 6. 0 图像分析系 统进行图像分析。每组 8 张切片,根据参考文献[3],按图 1 进行海马分区的图像处理。处理前先用同等条件下拍摄 的测微尺图像和空白片进行空间和光密度校正,CA1 区选 取 200 × 100μm2,CA3、DG,进行手动阳性细胞计数,左右侧 数据平均后即为该片的阳性细胞数。 图 1 海马分区图 2. 5 统计学处理 运用 SPSS 13. 0 统计软件分析,实验结 果以平均值士标准差(珋x ± s)表示,各组间进行单因素方差 分析,方差齐性,使用 LSD 法进行验后多重比较,P < 0. 05 为差异有显著性意义,P < 0. 01 为差异有非常显著性意义。 3 结 果 3. 1 各组大鼠海马 ERK1 /2 免疫反应阳性表达的影响 ERK1 /2免疫反应阳性神经元在大鼠海马各区均有分布。 主要定位于胞浆与胞膜内,呈棕黄色,排列紧密,胞体较大, 圆形或椭圆形。而模型组阳性神经元数目明显减少,胞体变 小,核固缩,排列松散。柴胡疏肝散组可见阳性神经元数目 较模型组增多,排列较紧密,胞体变大。见插页ⅩⅤ图 2 ~5。 ERK1阳性神经元在模型组大鼠海马 CA3、DG 区的数 量与空白对照组比较均明显减少(P < 0. 01) ,而柴胡疏肝散 组大鼠海马 CA3、DG ERK1 阳性神经元数目与模型组比较 均明显增多(P < 0. 01) ,且与空白对照组比较无统计学差 异。 8631 第 30 卷 第 6 期 2 0 1 2 年 6 月 中 华 中 医 药 学 刊 CHINESE ARCHIVES OF TRADITIONAL CHINESE MEDICINE Vol. 30 No. 6 Jun. 2 0 1 2 中 华 中 医 药 1369 学 刊 表 1 各组大鼠海马 ERK1 阳性细胞数的 影响(n = 8,珋x ± s) 组别 n CA1 CA3 DG 空白对照组 8 23. 5 ± 1. 2 27. 38 ± 1. 69 47. 00 ± 1. 51 模型组 8 21. 0 ± 3. 16 21. 13 ± 1. 55* 39. 25 ± 1. 49* 柴胡疏肝散组 8 21. 5 ± 2. 45 23. 75 ± 1. 16▲ 45. 63 ± 3. 34▲ 注:与空白对照组比较,* P < 0. 01;与模型组相比,▲P < 0. 01。 ERK2 阳性神经元在模型组大鼠海马 CA3、DG 区的数 量与空白对照组比较均明显减少(P < 0. 01) ,而柴胡疏肝 散组大鼠海马 CA3、DG区 ERK2 阳性神经元数目与模型组 比较均明显增多(P < 0. 01) ,且与空白对照组比较无统计 学差异。 表 2 各组大鼠海马 ERK2 阳性细胞数的 影响(n = 8,珋x ± s) 组别 n CA1 CA3 DG 空白对照组 8 24. 38 ± 1. 3 28. 38 ± 2. 07 50. 75 ± 1. 98 模型组 8 22. 00 ± 3. 07 22. 25 ± 1. 28* 42. 13 ± 1. 81* 柴胡疏肝散组 8 23. 00 ± 2. 33 25. 00 ± 1. 07▲ 48. 75 ± 2. 96▲ 注:与空白对照组比较,* P < 0. 01;与模型组相比,▲P < 0. 01。 3. 2 各组大鼠海马 P - ERK免疫反应阳性表达的影响 P - ERK阳性反应物在大鼠海马各区均有分布。免疫反应阳 性产物主要位于神经元的胞浆、胞核及突起内,呈棕褐色,染 色较深。P - ERK 免疫阳性产物见于海马 CA1、CA2、CA3 区,而模型组阳性神经元数目明显减少,染色较浅,胞体变 小,核固缩,排列松散。柴胡疏肝散组可见阳性神经元数目 较模型组增多,排列较紧密,胞体变大。见插页ⅩⅥ图 6 ~7。 P - ERK阳性神经元在模型组大鼠海马 CA3、D 区的 数量与空白对照组比较均明显减少(P < 0. 01) ,而柴胡疏 肝散组大鼠海马 CA3、DG区 P - ERK阳性神经元数目与模 型组比较均明显增多(P < 0. 05) ,且与空白对照组比较无 统计学差异。 表 3 各组大鼠海马 P - ERK阳性细胞数 的影响(n = 8,珋x ± s) 组别 n CA1 CA3 DG 空白对照组 8 55. 50 ± 5. 5 57. 13 ± 4. 85 104. 38 ± 11. 76 模型组 8 50. 25 ± 5. 26 34. 00 ± 9. 23* 77. 50 ± 8. 91* 柴胡疏肝散组 8 55. 38 ± 5. 29 47. 63 ± 6. 95▲ 93. 63 ± 8. 60▲ 注:与空白对照组比较,* P < 0. 01;与模型组相比,▲P < 0. 01。 4 讨 论 目前,从系统、细胞到分子水平的研究,极大地丰富了 对肝郁证发病机制的认识。认为肝郁证是在压抑、焦虑、悲 痛等负性情绪心理应激状态下,以高级神经中枢调节机制 紊乱为前提,神经、内分泌、循环、消化、免疫、感觉、运动等 多系统病理改变、病证表现的有机概括[4]。肝体阴而用 阳,贮藏有形之血,又疏泄无形之气,通过疏泄功能影响气 血的运行,进而调节情志的变化。 海马是目前肝郁证研究涉及最多的脑区,这主要是因 为海马神经元群主要包括齿状回颗粒细胞层,CA1 和 CA3 区的锥体细胞层,易于界定和研究。ERK1 /2 信号通路的 主要作用是调节细胞的增殖和分化[5]。胞外信号如生长 因子、神经营养因子、细胞因子、神经递质与细胞膜相应受 体结合最后导致蛋白激酶级联途径 Raf - MEK—ERk 被相 继的线性激活。活化的 ERK 可在胞浆内磷酸化一系列蛋 白和激酶[6],同时移位到细胞核磷酸化一系列转录因子, 从而参与细胞增殖与分化的调控。ERK 调控神经组织细 胞的死亡、分化和突触可塑性等重要功能,学习记忆的形成 也需要 ERK 的激活和参与[7 - 8]。用 ERK1 /2 与 P - ERK 作为指标,观察与负性心理应激有关的脑区,目前仅见一些 用Western blot方法在部分脑区所观察的结果,本研究进一 步用免疫细胞化学方法对肝郁模型动物的相关的脑区进行 了全面的观察。本实验中,肝郁模型组大鼠 ERK1 /2 与 P - ERK阳性神经元在海马 CA3、DG 区细胞数明显减少,说 明肝郁证大鼠模型存在海马 CA3、DG 区 ERK1 /2 与 P - ERK细胞数减少,而柴胡疏肝散大鼠海马 CA3、DG 区 ERK1 /2 与 P - ERK 细胞数明显增多,提示柴胡疏肝散抗 肝郁机制可能是通过上调 ERK1 /2 与 P - ERK信号通路的 活动而发挥作用,从而促进肝失疏泄损伤神经元的恢复而 发挥抗肝郁的作用。 该实验研究显示,柴胡疏肝散具有抗肝郁作用,其机制 可能与通过上调肝郁大鼠海马 CA3、DG 区 ERK1 /2、P - ERK信号通路的活动而起到保护受损神经元,改善大脑功 能,缓解肝郁症状的作用。然而柴胡疏肝散抗肝郁的机制 还有待于进一步的研究。 参考文献 [1] 乔明琦,张惠云,陈雨振,等. 肝郁证动物模型研究的理论思 考[J]. 中国医药学报,1997 ,12 (5) :42. [2] 包新民,舒斯云.大鼠脑立体定位图谱[M]. 北京:人民卫生 出版社,1991. [3] Martens U,Capito B,Wree A. Septotemporal distribution of [3H]MK -801,[3H]AMPA and[3H]Kainate binding sites in the rat hippocampus[J]. Anat Embryol (Berl) ,1998,198(3) : 195 - 204. [4] HATALSKI CG,BRUNSON KL,TANTAYANUBUTA B,et al. Neuronalactivity and stress differentially regulate hippocampal and hypothalamic corticotrophin releasing hormone expression in the immature rat[J]. Neuroscience,2001,101(3) :571. [5] Kolkova K,Novitskaya V ,Pedersen N ,et al. Neural cell adhe- sion molecule stimulated neurite outgrowth depends on activation of protein kinase C and the Ras mitogen activated prolein kinase pathway[J]. J Neurosee,2000,20:2238 - 2246. [6] Foorce T. Bonventre J. Growth factors and nfitogen activated pro- tein kinase[J]. Hypertension,1998,31:152 - 161. [7] Roux PP,Blenis J. ERK and p38 MAPK—Activated Protein Ki- nases:a Family of Protein Kinas es with Diverse Biological Func- tions[J]. Microbio Mol Biol Rev,2004,68:320 - 344. 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