柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马ERK及其磷酸化的影响_杜雅薇
收稿日期:2012 - 01 - 26
作者简介:杜雅薇(1980 -) ,女(蒙古族) ,博士,研究方向:中医脑
病。
热下行,引邪从小便而出,苦寒直折,使三焦火邪去而热毒
解,达到治疗中风的目的,从而控制其胃肠道并发症,减少
胃黏膜组织损伤。
经过本团队的前期研究成果表明,脑梗塞后的胃肠道
症状是一种脑梗塞后的并发症,而非机体的应激反应[5]。
脑梗塞急性期在低灌注的情况下,全身血流减少,血液需要
重新分配,胃肠因其特殊的供血系统和解剖结构成为血液
灌流减少发生最早,最明显的脏器 [6 - 7]。同时脑梗塞...
收稿日期:2012 - 01 - 26
作者简介:杜雅薇(1980 -) ,女(蒙古族) ,博士,研究方向:中医脑
病。
热下行,引邪从小便而出,苦寒直折,使三焦火邪去而热毒
解,达到治疗中风的目的,从而控制其胃肠道并发症,减少
胃黏膜组织损伤。
经过本团队的前期研究成果
明,脑梗塞后的胃肠道
症状是一种脑梗塞后的并发症,而非机体的应激反应[5]。
脑梗塞急性期在低灌注的情况下,全身血流减少,血液需要
重新分配,胃肠因其特殊的供血系统和解剖结构成为血液
灌流减少发生最早,最明显的脏器 [6 - 7]。同时脑梗塞的急
性期容易继发脑水肿以及颅内压增高,导致胃肠血管收缩
甚至痉挛,引起胃肠道血流灌注不足、黏膜微循环障碍 -胃
黏膜血流量减少,进一步破坏胃肠屏障,加重胃肠道的并发
症。从中医角度来讲,脑为髓海,胃为水谷之海,二者在生
理、病理,经络等方面紧密相连,互为因果。脑之动力来源
于水谷精微,胃的活动接受于脑的支配,脑病及胃,胃病及
脑,二者相互影响。
本实验研究证明大鼠在脑梗塞急性期时,的确能够
造成胃肠道的黏膜损害,予以灌服达到治疗量的黄连解
毒汤能够有效的减少其胃肠道的损害,并且就电镜观察
结果来看略优于西咪替丁。黄连解毒汤具有药物简单,
药价低廉的优点,容易在临床广为推广。当然对于脑梗
塞的胃肠道并发症目前研究还较少,起步较晚,对于其
机制及不同干预因素对其的不同影响还值得进一步深
入研究,这将对脑梗塞急性期的胃肠并发症的防治有深
远的意义。
第 30 卷 第 6 期
2 0 1 2 年 6 月
中 华 中 医 药 学 刊
CHINESE ARCHIVES OF TRADITIONAL CHINESE MEDICINE
Vol. 30 No. 6
Jun. 2 0 1 2
中
华
中
医
药
1367
学
刊
柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠
脑海马 ERK及其磷酸化的影响
杜雅薇1,王玉来2,尹岭3,赵秀敏3,秦绍林2,赵永烈2
(1.北京中医药大学东直门医院,北京 100700;2.北京中医药大学东方医院,北京 100078;
3.中国人民解放军总医院神经信息中心,北京 100853)
摘 要:目的:研究柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马 CA1、CA3、DG区 ERK及其磷酸化免疫阳性神经元
的影响。方法:将大鼠分为空白对照组、肝郁模型组、柴胡疏肝散组,运用模具束缚结合孤养的方法制备肝气郁结
证候动物模型,采用免疫组化法检测大鼠脑海马 CA1、CA3、DG 区 ERK 及其磷酸化免疫阳性神经元的细胞数。
结果:柴胡疏肝散可增高 ERK1 /2、P - ERK 在海马 CA3、DG 区的阳性细胞数。结论:柴胡疏肝散具有抗肝郁作
用,其机制可能与通过上调肝郁大鼠海马 CA3、DG区 ERK1 /2、P - ERK信号通路的活动而起到保护受损神经元,
改善大脑功能,缓解肝郁症状的作用。
关键词:肝气郁结证;柴胡疏肝散;ERK;海马;大鼠
中图分类号:R285. 5 文献标识码:A 文章编号:1673 - 7717(2012)06 - 1367 - 03
Effects of CHSG Powder on ERK and P - ERK in Hippocampus of
Rats with Liver - qi Stagnation
DU Ya-wei1,Wang Yu-lai2,YIN Ling2,ZHAO Xiu-min3,QIN Shao-lin2,ZHAO Yong-lie2
(1. Dongzhimen Hospital Affiliated to Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100700,China;
2. East Hospital Affiliated to Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100078,China;
3. Chinese PLA General Hospital,Beijing 100853,China)
Abstract:Objective:To observe the effects of CHSG powder on ERK and P - ERK in hippocampus of rats with liver -
qi stagnation. Methods:The rats were divided into three groups:control,model and CHSG powder group. This animal mod-
el is made by the method of confining the rats'movement. The cell numbers of ERK1 /2、P - ERK in CA1、CA3 and DG
sections of hippocampus in different groups were observed by immunohistochemical method. Results:CHSG powder can
significantly improve the cell numbers of ERK1 /2、P - ERK in CA3 and DG sections of hippocampus . Conclusion:CHSG
powder has antagonism against liver - qi stagnation by improving the cell numbers of ERK1 /2、P - ERK in CA3 and DG
sections of hippocampus.
Key words:liver - qi stagnation ;CHSG powder ;ERK ;hippocampus;rat
7631
第 30 卷 第 6 期
2 0 1 2 年 6 月
中 华 中 医 药 学 刊
CHINESE ARCHIVES OF TRADITIONAL CHINESE MEDICINE
Vol. 30 No. 6
Jun. 2 0 1 2
中
华
中
医
药
1368
学
刊
肝气郁结证是中医情志致病的代表证候,引起肝郁证
的主要原因是情志不遂或其他原因影响气机升发和疏泄。
其临床表现为郁郁寡欢、善太息、悲伤欲哭等。本实验通过
运用模具束缚结合孤养的方法制备肝气郁结证侯动物模
型,用疏肝解郁的代表方柴胡疏肝散作为治疗药物,研究柴
胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马 ERK 及其磷酸化的影
响。
1 材 料
1. 1 动物 Wistar 大鼠,雄性,清洁级,体重 200 ~ 220 g,
由解放军总医院实验动物中心提供。
1. 2 药物 柴胡疏肝散(柴胡 6 g,陈皮 6 g,川芎 5 g,香附
5 g,枳壳 5 g,白芍 5 g,甘草 3 g,由解放军总医院中药房提
供)经冷水浸泡药材 2 h,常规两煎,头煎 1. 5 h,二煎 1 h,2
次水煎液混合并过滤,经水浴蒸发浓缩成含生药 0. 35 g /
mL的浓缩药液冷藏备用。大鼠灌胃煎剂溶液量按人与动
物的每公斤体重剂量折算,为 3. 5 g / kg。
1. 3 仪器 RM -2014 石蜡切片机(德国莱卡) ,KD - BM
生物组织包埋机,Image - Pro Plus MIS2000 图像
系统
(美国 Media Cybernetics 公司) ,OLYMPUSBX51 光学显微
镜,OLYMPUSDP71 照相显微镜(日本)。
1. 4 试剂 0. 01 M PBS,0. 01 M柠檬酸缓冲液,细胞通透
液,5%羊血清或封闭血清,含 0. 03%H2O2的 0. 05%DAB
2 方 法
2. 1 大鼠肝郁证动物模型的建立及分组 首先将 40 只大
鼠正常饲养、自由饮食、适应性饲养 1 周后,选用敞箱实验
(Openfield test )将评分相近的大鼠 30 只随机分为 3 组,分
别为空白对照组 10 只、肝郁模型组 10 只,、柴胡疏肝散治
疗组 10 只。模型的制备:在乔明琦[1]发明的大鼠肝郁模
型制做方法的基础上运用模具束缚结合孤养的方法制备。
将造模大鼠放入自制的细钢丝网笼内,对身躯及四肢起到
捆绑和束缚作用,使其行走困难、活动受限。每日束缚 6h,
从 9am - 3pm,然后定时观察并记录大鼠状态。从造模之日
起各组给予相关药物或生理盐水灌胃处理。空白对照组
(对照组) :不作任何刺激,等量生理盐水灌胃,1 次 /天;肝
郁模型组(模型组) :细钢丝网笼束缚,等量生理盐水灌胃,
1 次 /天;柴胡疏肝散组(治疗组) :细钢丝网笼束缚,中药灌
胃(3. 5g /kg) ,1 次 /天。服药时间为 2 周。
2. 2 取材 于造模第 2 周末次给药第 2 天,20%乌拉坦腹
腔麻醉大鼠(30mg /kg) ,仰卧位固定于手术盘中,暴露胸及
腹腔,沿胸骨剑突向两侧剪开皮肤,剪断膈肌,掀开整个胸
廓,打开心包,暴露心脏。灌注装置管道用 0. 9% Nacl 清洗
干净,排除气泡后,将灌注针在心尖处即左心室部插入到左
心室至主动脉,固定插管,立即剪开右心耳,可见静脉血流
出。迅速以预冷的 0. 9% Nacl 溶液灌流冲洗,直到肝脏颜
色变白,右心耳流出的液体变清为止(一般约需 200 ~
300mL) ;然后再灌注 4℃预冷的 10%甲醛固定液,灌注量
约 200 ~ 250mL,速度先快后慢,当大鼠出现四肢和尾部抽
动时开始缓慢注入约 30min。灌注完成后立即取出大鼠完
整全脑,放入 10%的甲醛固定液中后固定 2 周。待固定完
成后取出脑组织,进行常规组织脱水、透明,行石蜡包埋。
2. 3 免疫组化染色 石蜡切片脱蜡入水,30% H2O2 封
闭内源性过氧化物酶,0. 01M 柠檬酸钠缓冲液中微波加
热修复 15min,山羊血清封闭液封闭后滴加兔抗鼠多克
隆抗体 ERK1 /2 4℃孵育过夜后,采用 SABC 法,滴加已
稀释的二抗,滴加试剂 SP 后放入 37℃ 烤箱中各孵育
30min,DAB 显色,复染、脱水、透明、封片。PBS 代替一
抗作为阴性对照。
2. 4 图像处理 选取每批每组冠状切面相似的切片进行
照像。用 OLYMPUS数码相机和 OLYMPUS 显微镜组合拍
摄图像,关闭数码相机所有自动功能,分别在显微镜 20 倍
物镜和数码相机 4 倍光学放大下进行照像。拍摄部位参照
包新民《大鼠脑立体定位图谱》[2]进行,CA1 区摄像点位于
门区的上方,CA3 区摄取迂回部,齿状回摄取接近折回部包
括上下两个颗粒层。图像在 Imagepro Plus 6. 0 图像分析系
统进行图像分析。每组 8 张切片,根据参考文献[3],按图
1 进行海马分区的图像处理。处理前先用同等条件下拍摄
的测微尺图像和空白片进行空间和光密度校正,CA1 区选
取 200 × 100μm2,CA3、DG,进行手动阳性细胞计数,左右侧
数据平均后即为该片的阳性细胞数。
图 1 海马分区图
2. 5 统计学处理 运用 SPSS 13. 0 统计软件分析,实验结
果以平均值士标准差(珋x ± s)表示,各组间进行单因素方差
分析,方差齐性,使用 LSD 法进行验后多重比较,P < 0. 05
为差异有显著性意义,P < 0. 01 为差异有非常显著性意义。
3 结 果
3. 1 各组大鼠海马 ERK1 /2 免疫反应阳性表达的影响
ERK1 /2免疫反应阳性神经元在大鼠海马各区均有分布。
主要定位于胞浆与胞膜内,呈棕黄色,排列紧密,胞体较大,
圆形或椭圆形。而模型组阳性神经元数目明显减少,胞体变
小,核固缩,排列松散。柴胡疏肝散组可见阳性神经元数目
较模型组增多,排列较紧密,胞体变大。见插页ⅩⅤ图 2 ~5。
ERK1阳性神经元在模型组大鼠海马 CA3、DG 区的数
量与空白对照组比较均明显减少(P < 0. 01) ,而柴胡疏肝散
组大鼠海马 CA3、DG ERK1 阳性神经元数目与模型组比较
均明显增多(P < 0. 01) ,且与空白对照组比较无统计学差
异。
8631
第 30 卷 第 6 期
2 0 1 2 年 6 月
中 华 中 医 药 学 刊
CHINESE ARCHIVES OF TRADITIONAL CHINESE MEDICINE
Vol. 30 No. 6
Jun. 2 0 1 2
中
华
中
医
药
1369
学
刊
表 1 各组大鼠海马 ERK1 阳性细胞数的
影响(n = 8,珋x ± s)
组别 n CA1 CA3 DG
空白对照组 8 23. 5 ± 1. 2 27. 38 ± 1. 69 47. 00 ± 1. 51
模型组 8 21. 0 ± 3. 16 21. 13 ± 1. 55* 39. 25 ± 1. 49*
柴胡疏肝散组 8 21. 5 ± 2. 45 23. 75 ± 1. 16▲ 45. 63 ± 3. 34▲
注:与空白对照组比较,* P < 0. 01;与模型组相比,▲P <
0. 01。
ERK2 阳性神经元在模型组大鼠海马 CA3、DG 区的数
量与空白对照组比较均明显减少(P < 0. 01) ,而柴胡疏肝
散组大鼠海马 CA3、DG区 ERK2 阳性神经元数目与模型组
比较均明显增多(P < 0. 01) ,且与空白对照组比较无统计
学差异。
表 2 各组大鼠海马 ERK2 阳性细胞数的
影响(n = 8,珋x ± s)
组别 n CA1 CA3 DG
空白对照组 8 24. 38 ± 1. 3 28. 38 ± 2. 07 50. 75 ± 1. 98
模型组 8 22. 00 ± 3. 07 22. 25 ± 1. 28* 42. 13 ± 1. 81*
柴胡疏肝散组 8 23. 00 ± 2. 33 25. 00 ± 1. 07▲ 48. 75 ± 2. 96▲
注:与空白对照组比较,* P < 0. 01;与模型组相比,▲P <
0. 01。
3. 2 各组大鼠海马 P - ERK免疫反应阳性表达的影响 P
- ERK阳性反应物在大鼠海马各区均有分布。免疫反应阳
性产物主要位于神经元的胞浆、胞核及突起内,呈棕褐色,染
色较深。P - ERK 免疫阳性产物见于海马 CA1、CA2、CA3
区,而模型组阳性神经元数目明显减少,染色较浅,胞体变
小,核固缩,排列松散。柴胡疏肝散组可见阳性神经元数目
较模型组增多,排列较紧密,胞体变大。见插页ⅩⅥ图 6 ~7。
P - ERK阳性神经元在模型组大鼠海马 CA3、D 区的
数量与空白对照组比较均明显减少(P < 0. 01) ,而柴胡疏
肝散组大鼠海马 CA3、DG区 P - ERK阳性神经元数目与模
型组比较均明显增多(P < 0. 05) ,且与空白对照组比较无
统计学差异。
表 3 各组大鼠海马 P - ERK阳性细胞数
的影响(n = 8,珋x ± s)
组别 n CA1 CA3 DG
空白对照组 8 55. 50 ± 5. 5 57. 13 ± 4. 85 104. 38 ± 11. 76
模型组 8 50. 25 ± 5. 26 34. 00 ± 9. 23* 77. 50 ± 8. 91*
柴胡疏肝散组 8 55. 38 ± 5. 29 47. 63 ± 6. 95▲ 93. 63 ± 8. 60▲
注:与空白对照组比较,* P < 0. 01;与模型组相比,▲P <
0. 01。
4 讨 论
目前,从系统、细胞到分子水平的研究,极大地丰富了
对肝郁证发病机制的认识。认为肝郁证是在压抑、焦虑、悲
痛等负性情绪心理应激状态下,以高级神经中枢调节机制
紊乱为前提,神经、内分泌、循环、消化、免疫、感觉、运动等
多系统病理改变、病证表现的有机概括[4]。肝体阴而用
阳,贮藏有形之血,又疏泄无形之气,通过疏泄功能影响气
血的运行,进而调节情志的变化。
海马是目前肝郁证研究涉及最多的脑区,这主要是因
为海马神经元群主要包括齿状回颗粒细胞层,CA1 和 CA3
区的锥体细胞层,易于界定和研究。ERK1 /2 信号通路的
主要作用是调节细胞的增殖和分化[5]。胞外信号如生长
因子、神经营养因子、细胞因子、神经递质与细胞膜相应受
体结合最后导致蛋白激酶级联途径 Raf - MEK—ERk 被相
继的线性激活。活化的 ERK 可在胞浆内磷酸化一系列蛋
白和激酶[6],同时移位到细胞核磷酸化一系列转录因子,
从而参与细胞增殖与分化的调控。ERK 调控神经组织细
胞的死亡、分化和突触可塑性等重要功能,学习记忆的形成
也需要 ERK 的激活和参与[7 - 8]。用 ERK1 /2 与 P - ERK
作为指标,观察与负性心理应激有关的脑区,目前仅见一些
用Western blot方法在部分脑区所观察的结果,本研究进一
步用免疫细胞化学方法对肝郁模型动物的相关的脑区进行
了全面的观察。本实验中,肝郁模型组大鼠 ERK1 /2 与 P
- ERK阳性神经元在海马 CA3、DG 区细胞数明显减少,说
明肝郁证大鼠模型存在海马 CA3、DG 区 ERK1 /2 与 P -
ERK细胞数减少,而柴胡疏肝散大鼠海马 CA3、DG 区
ERK1 /2 与 P - ERK 细胞数明显增多,提示柴胡疏肝散抗
肝郁机制可能是通过上调 ERK1 /2 与 P - ERK信号通路的
活动而发挥作用,从而促进肝失疏泄损伤神经元的恢复而
发挥抗肝郁的作用。
该实验研究显示,柴胡疏肝散具有抗肝郁作用,其机制
可能与通过上调肝郁大鼠海马 CA3、DG 区 ERK1 /2、P -
ERK信号通路的活动而起到保护受损神经元,改善大脑功
能,缓解肝郁症状的作用。然而柴胡疏肝散抗肝郁的机制
还有待于进一步的研究。
参考文献
[1] 乔明琦,张惠云,陈雨振,等. 肝郁证动物模型研究的理论思
考[J]. 中国医药学报,1997 ,12 (5) :42.
[2] 包新民,舒斯云.大鼠脑立体定位图谱[M]. 北京:人民卫生
出版社,1991.
[3] Martens U,Capito B,Wree A. Septotemporal distribution of
[3H]MK -801,[3H]AMPA and[3H]Kainate binding sites in
the rat hippocampus[J]. Anat Embryol (Berl) ,1998,198(3) :
195 - 204.
[4] HATALSKI CG,BRUNSON KL,TANTAYANUBUTA B,et al.
Neuronalactivity and stress differentially regulate hippocampal
and hypothalamic corticotrophin releasing hormone expression in
the immature rat[J]. Neuroscience,2001,101(3) :571.
[5] Kolkova K,Novitskaya V ,Pedersen N ,et al. Neural cell adhe-
sion molecule stimulated neurite outgrowth depends on activation
of protein kinase C and the Ras mitogen activated prolein kinase
pathway[J]. J Neurosee,2000,20:2238 - 2246.
[6] Foorce T. Bonventre J. Growth factors and nfitogen activated pro-
tein kinase[J]. Hypertension,1998,31:152 - 161.
[7] Roux PP,Blenis J. ERK and p38 MAPK—Activated Protein Ki-
nases:a Family of Protein Kinas es with Diverse Biological Func-
tions[J]. Microbio Mol Biol Rev,2004,68:320 - 344.
[8] Sweatt JD. Mitogen—activated protein kinases in synaptic plastic-
ity and memory[J]. Curt Opin Neurobiol,2004,14:311 - 317.
9631
本文档为【柴胡疏肝散对肝郁证模型大鼠脑海马ERK及其磷酸化的影响_杜雅薇】,请使用软件OFFICE或WPS软件打开。作品中的文字与图均可以修改和编辑,
图片更改请在作品中右键图片并更换,文字修改请直接点击文字进行修改,也可以新增和删除文档中的内容。
[版权声明] 本站所有资料为用户分享产生,若发现您的权利被侵害,请联系客服邮件isharekefu@iask.cn,我们尽快处理。
本作品所展示的图片、画像、字体、音乐的版权可能需版权方额外授权,请谨慎使用。
网站提供的党政主题相关内容(国旗、国徽、党徽..)目的在于配合国家政策宣传,仅限个人学习分享使用,禁止用于任何广告和商用目的。