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醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用

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醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用 醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用 2002年6月第l9卷第2期 June2002,Vo1.19,No.2 广州中医药大学 JournalofGuarIgzII?UniversityofTraditionalChin~Medicine125 文章编号:1007—3213(2002)02—0125一O2 醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用 万文成,李杰芬,罗海燕,李小英,张少琼 (广州中医药大学基础医学院,广州510405) 摘要:【目的】研究麝香,冰片等组成的醒脑静对神经细...
醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用
醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用 醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用 2002年6月第l9卷第2期 June2002,Vo1.19,No.2 广州中医药大学 JournalofGuarIgzII?UniversityofTraditionalChin~Medicine125 文章编号:1007—3213(2002)02—0125一O2 醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用 万文成,李杰芬,罗海燕,李小英,张少琼 (广州中医药大学基础医学院,广州510405) 摘要:【目的】研究麝香,冰片等组成的醒脑静对神经细胞的保护作用.【方法】利用原代培养的大鼠大脑皮层神经细胞, ,3h)对脑细胞的兴奋毒性作用.【结果】醒脑静观察醒脑静对抗谷氨酸(1010l?L, 能减少谷氨酸所造成的细胞内乳酸 脱氢酶漏出量,减轻细胞的形态学改变.【结论】醒脑静能够对抗谷氨酸介导的兴奋性毒性,对培养的大鼠大脑皮层细胞具 有保护作用. 关键词:醒脑静/药理学;神经元/药物作用;麝香/药理学;冰片/药理学 中图分类号iR285.5文献标识码:A 醒脑静是一种中药复方制剂,主要成分为麝 香,冰片等开窍药L1j,对中枢神经系统的感染性疾 醒脑静能增强 病或中毒性疾病有较好的苏醒作用. 大鼠大脑皮层神经元耐缺血缺氧的能力j,对脑缺 血大鼠皮层组织中的神经元,胶质细胞具有保护作 用].本研究旨在进一步探讨醒脑静对大鼠大脑皮 层的神经细胞的保护作用. 1材料与方法 1.1实验动物新生SD大鼠(出生24h以内) 由本校实验动物中心提供. 1.2药物及试剂醒脑静由无锡山禾药业股份有 限公司生产(批号:0lcr722).L一谷氨酸(Glu), 多聚赖氨酸(poly—D—Lysine),N一2一羟乙基哌 嗪一N一2一乙磺酸(}{IPES)为美国Sigma公司产 品. 1.3仪器722光栅分光光度计,由上海第三分 析仪器厂生产. 1.4大鼠大脑神经细胞培养按文献[4]方法, 无菌条件下分离新生鼠大脑皮层,切成0.5?m3碎 块,置于含2.5g?L胰蛋白酶的Hank'8液中, 37?消化15min,加入含200mL?L小牛血清的 DMEM培养基中止消化.然后用移液管反复轻轻吹 打组织,制成单细胞悬液.离心,200g,5min. 弃上清,再用完全培养液重新悬浮细胞,调整细胞 ×106?mL,,接种在预先用poly—D— 密度为1.0 Lysine覆盖的35mln平皿中,每皿种2mL.培养3 — 4d改用含2.5哗?L阿糖胞苷的培养液培养 24h,以抑制胶质细胞的生长,再改用常规培养液 收稿日期:2002—03—05 作者简介:万文成(1962一),男,讲师 培养.培养液由DMEM,200mL?L小牛血清, 2mmol?L谷氨酰胺和21mmol?L葡萄糖组成. 细胞在37?,含5%CO2和95%空气的混合气体中 培养1O12d即可用于实验.培养过程中每周换 液2次,每次更换50%培养液. 1.5细胞毒性实验及醒脑静的对抗作用实验取 培养10d的神经细胞进行实验,实验共分4组: ?正常对照组;?损伤组;?醒脑静大剂量组 (20mL?L);?醒脑静小剂量组(10mL?L). 每组设4皿.实验时,参照文献[5]方法,除正常 对照组外,其余各组同时加入等量的低糖DMEM 培养液和10tmaol/L的谷氨酸;醒脑静组在加谷氨 酸前10min,向培养液中加入不同浓度的醒脑静. 再将各组置于培养箱中培养8h后,镜检并取上清 液测乳酸盐脱氢酶(IJ)H)活性. 1.6观察指标用倒置显微镜观察神经细胞的形 态变化,以培养液上清中LDH活性作为定量评价 细胞受损伤程度的指标.测定LDH时,参考文献 [6],先测培养液上清中LDH活性,然后将相应的 培养细胞置于一3O?,3h以上,使细胞破碎,再 测总LDH活性.细胞损伤程度以培养细胞释放的 LDH占总LDH活性的百分比表示. 1.7LDH活性测定按文献[7]进行. 2结果 培养10d后的神经细胞立体感强,胞体有明 显的折光性,呈锥体,双极或多极形,细胞呈团聚 集,分布疏密不均;细胞突起相互交织成网.损伤 组中,大部分细胞折光度降低,胞体肿胀,神经元 l26万文成,等.醒脑静对大鼠皮层神经细胞的保护作用第2期 突起断裂,变短.培养液中LDH漏出率明显增加. 但是,在加入Glu前加入醒脑静的两组细胞受损程 度相对较轻,LDH漏出率较损伤组为低,与损伤 组比较具有显着性差异;且高剂量组较低剂量组的 形态学改变更轻一些,LDH漏出率更低,统计学 检验也有显着意义(见表1). 表1醒脑静对Glu介导的神经细胞的LDH漏出率的影响 TabIe1EffectofXNJ0ntheI的seofLDHfromcortical rl~tlrorlsinducedbyGlu(?s) GroupspLglt/% 正常对照组(A) 损伤组(B) 醒脑静低剂量组(c) 醒脑静高剂量组(D) lO.3?3.4 38.8?4.0 28.3?5.2 22.8?3.6 检验方法:t检验;*与损伤组比较(GroupB)P<O.05, **P<0.01 3讨论 据报道,正常情况下,神经元内LDH含量丰 富,且流出量极少,而当神经元受损后,随受损程 度的加重,膜通透性增强,LDH流出相应增加. 在10ttmol/LGlu低糖培养液培养的条件下,神经 元已形成了离体"缺血"模型].Koh认为测定培 养液中的LDH含量能够定量评价神经元的受损程 度.因此,我们以培养液中LDH的漏出率作为 主要的观察指标.Glu浓度过高导致神经细胞损伤 的机制可能在于,其作用于突触后膜上的NMDA (N一甲基一D一天冬氨酸)受体和非NMDA受体, 钙离子通过NMDA受体偶联的钙通道和电压依赖 性钙通道内流,使突触后神经细胞内钙超载以及自 由基生成增多,导致细胞损伤,膜通透性增强, LDH大量外漏. 临床观察,醒脑静对中枢神经系统的许多疾病 引起的意识障碍有较好的苏醒作用….实验研究表 明,醒脑静能使脑缺血大鼠皮层电图(Ec0G)保 持在较高状态,显示其具有一定的抗脑缺血作 用;对脑缺血大鼠皮层组织中的超微结构具有保 护作用bJ,能提高脑缺血大鼠皮层组织中超氧化物 歧化酶(SOD),谷胱苷肽过氧化物酶(GSH—Px) 的活性,减少过氧化脂质(【JP())生成u.本研究 利用神经细胞原代培养技术,观察到醒脑静能减轻 细胞的损伤性变化,减少LDH的漏出率,显示出 对抗过量Glu对神经细胞的兴奋性毒性作用,进一 步证实了醒脑静具有抗脑缺血作用. 参考文献: [1]杨秀露,徐玮一,龚跃新,等.醒脑静注射液的药理作用研 究[J].中国药房,1993(1):l8. 陈洁文,罗荣敬.醒脑静与川芎嗪对不完全性全脑 [2]万文成, 缺血大鼠脑皮层电图的影响[J].广州中医药大学, 1997,14(2):92 [3]罗海燕,万文成,陈洁文,等.醒脑静对脑缺血大鼠大脑皮 质超微结构的保护作用[J].中医药研究,2000,16(4): 37. [4]洪庆涛,唐一鹏.新生大鼠大脑皮层神经细胞的体外原代培 养[J].神经解剖学杂志,1994,10(3):259. [5]裴林,纵艳艳,孙亚锋,等.谷氨酸对培养神经元的兴奋毒 性及氯氨酮的保护作用[J].徐州医学院,1995,15 (3):221. [6]马丽焱,肖培根,梁发权,等.三七总皂苷对原代培养大鼠 皮层神经细胞的保护作用[J].中国药学杂志,1998,33 (3):143. [7]赵善政.乳酸脱氢酶测定[M].临床生化检验.上海:上 海科学技术出版社,1979.314. [8]裴林,纵艳艳,张光毅.氯胺酮和右美沙芬对培养神经元缺 氧损伤的保护作用[J].徐州医学院,1996,16(4): 337. [9]KohJY,ChoiDW.Quantitativedeterminationofdutan1atecortical nM1almyincellbylactatedehydrogaseeflluxassay[J].JNeu— rosciMet,1987,20:83. [1O]万文成,罗海燕,陈洁文,等.清热解毒开窍醒脑防治脑 缺血的实验研究[J].深圳中西医结合杂志.2001,ll (1):5. ProtectiveEffectofXangNaoJingonCulturedCorticalNeuronsinRats WWe~heng,Hfen,oHaiyan.LIXiaoying.ZHANGShaoqiong (BasicMedicalCollege,Guan0tIUniversityofTCM,Gtlan~ou510405,China) Abstract:【Objective】 TostudytheprotectiveeffectofXingNaoJing(XNJ)onculturedcorticalneuronsinrats. 【Methods】 Pl4ma~culturedcorticalneuronswereappliedtoobservetheeffectofXNJincounteractingth eexeitotoxieity ofglutamicacid.【Results】? decreasedthereleaseofintracellularlactiedehydrogenaseindueedbyglut~acacid andreducedthehistologicalchangesofculturedcorticalneurons.【Conclusion】 XNJCallcounteracttheexeitotoxieityof glutamieacidandprotecteult~corticalneuronsinrats. Keywords:XINGNAOJING/phannacology;NEURONS/drugeffects; BORNEOLUMSYNTHETICUM/pharmacology ;
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