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深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的影响

2018-03-30 8页 doc 24KB 26阅读

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深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的影响深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的影响 深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的 影响 现代医学(ModemMedk'alJourna1),2004年6月,第32卷第3期?l87? ? 论着? 深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的影响 陶运明,莫绪明,彭卫,戚继荣,钱龙宝,顾海涛 (南京医科大学附属南京JL童院心胸外科,江苏南京210008) [摘要]目的观察深低温停循环对大脑皮层神经细胞捌亡的影响一方法取sD大鼠 30只,随机分为3组:深低 温对照(DHC)组,常温对照(YFC)组和深低温停循环组(DHC,)...
深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的影响
深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的影响 深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的 影响 现代医学(ModemMedk'alJourna1),2004年6月,第32卷第3期?l87? ? 论着? 深低温停循环对大脑皮层神经细胞凋亡的影响 陶运明,莫绪明,彭卫,戚继荣,钱龙宝,顾海涛 (南京医科大学附属南京JL童院心胸外科,江苏南京210008) [摘要]目的观察深低温停循环对大脑皮层神经细胞捌亡的影响一方法取sD大鼠 30只,随机分为3组:深低 温对照(DHC)组,常温对照(YFC)组和深低温停循环组(DHC,)组,录用大鼠深低温 双侧颈总动脉阻断后再灌注模型,在 2l?时将双侧颈总动脉阻断60min,再灌注24h后取大脯皮层细胞制成细胞悬液, 流式细胞仪分析细胞凋亡改变,电镜观 察细胞超微结构的变化,对实验数据进行统计分析结果NTC小有5只死亡DHC 组,NTC组和DHCA组的大脑皮层 细胞凋亡率分别为(2,20?0.43)%,(19,23?1.01)%和(4.72?1.01)%,差异仃显着意 义(P<0.001).结论深低温停 循环能增强大脑细胞对缺氧的耐受性,降低和抑制缺血诱发的恼细胞捌亡: [关键词]大鼠;深低温停循环;凋亡;流式细胞仪;冲经细胞;大恼皮层 [中图分类号]R363;R654.1[文献标识码]A[文章编号]167卜7562(2004)03-0187-03 Effectofdeephypothermiccirculatoryarrestoncortexneuron apoptosisofrats TAOYun—ming,MOXu—ming,PENGWei,QIJi--rong,QIANLong--bao,GUHai-.tao (DepartmentofCardiothoracicSm'gery,A.ffiliatedNanfingChiMrenHospital,,Iledical,A g210008,China) Abstract:Obj,lectiveToobservetheeffec'tof~teephyt~)thelanicciI'cula[o15arrest(DHCA )oncortexneuIDn apoptosisaftercerebralisehemia/reperfusioninjmyinrats.MethodsThirt. ySDPdtSweredMdedrandomly. into threegroups:deephypothenniccontrol(DHC)group,110111131temperaturecontrol(NTC)groupanddeeph}~othermie circulatoryarrest(DHCA)group.Modelofcerebralischelllia/l'eperftlsioninju1. 'ywerepreparedby60minocclusion followed24hofreperfusionofbilateralconllnoncarotidm-telw. hithedeephypothernlic(21?)rats.Cerebralcortex.- eswereremovedandthendissociated,nleasuredwithflowcytolnetlyana|yzecellat~)ptosis.Themorphologicalchange wereexaminedbyelectronnfiemseope.Datawereanal,'zedI)softwareSPSS11.5.ResultsFiveratsoftheNTC groupdiedduringtheexperimentation,therateofapoptosisof'DHCDoup,NTCgroupandDHCAgroupwere (2.20?0.43)%,(19.23?1.01)%and(4.72? 1.02)%respecti~rel,'(P<0.001).ConclusionThedecrease oftherateofneuronapoptosisafterdeephypothemfieeirculatmxartiestillratsllla. Vbecluedtodecreasedandinhib— itedcellapoptosisaftercerebraisehemia/repeffusioniUl3. Keywords:rat;deephypothermieeireulato~-arrest;avoptosis;flowcytonletry;neuron;cerebralcortex (ModemMedica~fJo,P///71a,f,21304,32:l87一l89) 自Lewis和Taufil于1953年在深低温停循环下手 术治愈l例5岁心脏房间隔缺损患儿以来,深低温停 循环(DHCA)已在心脏外科得到广泛应用.但DHCA 暂时或永久的神经系统并发症却高达4%,25%,而 且其安全时限为45,60min,限制了其在临床上的应 用.后来研究发现,这些迟发性的神经系统并发症与 脑缺血诱发脑细胞的凋亡!有关.研究深低温脑缺 血60min后神经细胞调亡的情况对深低温在临床上应 [作者简介]陶运明(1972一),男,安徽安庆人,主治医师,医学硕_L 用有很大的指导意义.本实验采用大鼠深低温颈总动 脉阻断模型,应用流式细胞仪和电镜技术观察深低温 脑缺血对神经细胞调亡的影响. 1材料与方法 1.1实验动物 选择健康雄性SD大鼠30只(南京医科大学动物 实验中心提供),体重180,230g,随机分为3组,即深 ? 188?现代医学(ModemMe~hc'alJourna1),2004年6月,第32卷第3期 低温对照(DHC)组,常温对照(NTC)组和深低温停循 环(DHCA)组,每组lO只: 1.2大鼠DHCA模型制作 大鼠用阿托品0.02mg?kg肌肉注射,30min后按 100mg?kg..腹腔注射氯胺酮麻醉?完全麻醉后固定 大鼠,在导丝引导下气管插管并固定,联接小动物呼吸 机,将呼吸机呼吸频率调为120次?min,,压强调到 0.02—0.05kPa,吸呼比为l:3.剃除颈部鼠毛,碘附 消毒皮肤,酒精脱碘.先用剪刀纵行剪开颈部皮肤,打 开右侧颈部筋膜,从正中打开颈外肌层,分别向左右沿 颈外斜肌间隙分离筋膜,找到颈总动脉,从伴行的神经 旁游离出动脉并套上丝线.用涂有石蜡油的温度计插 入肛门5cm,探测大鼠的体温(大鼠的肛温和脑部的基 本近似,通过对大鼠深部体温检测来估计脑部的温 度):当体温降至22?时停止降温,用动脉夹阻断两 侧颈总动脉,使体温维持在(21?1)?,60nfin后恢复 颈总动脉血流.用电热吹风机给大鼠复温,每分钟体 温恢复不能超过0.5?,大约在30min内将体温恢复 到32?,取动脉血作血气分析,将大鼠放入35?早产 儿培育箱复温,在2h内将体温恢复到38.5?,维持正 常体温4h后放置室温下正常饲养. 1.3其他模型制作 NTC组在不降温的情况下进行以上操作过程制 模,而DHC组的操作同深低温停循环组.但不阻断两 侧颈总动脉 1.4标本的处理 24h后将大鼠断头处死,迅速开颅,取脑皮层组织 50—100mg,40O目尼龙网研磨,PBS冲洗过滤,研磨后 组织放入离心管中用PBS稀释为lOflll,反复吹打,制 成单细胞悬液,l000r?min离心5nli11,PBS洗2次,再 加体积分数为70%的乙醇固定,4?过夜,次日4?离 心去上清,加200RNase(RNA酶)(1g?L),37?水 浴30min,再加500lPI(碘化吡啶)(25mg?L)染色 液,4?避光条件下染色30min.应用FCM记录氩离 子激发光波长488nIn处红色荧光,每个样本计数 10000个细胞,经FACSCCalibur流式细胞仪检测,Mod. tLT2.0软件绘制细胞数和凋亡细胞分布图. 同时取lITlInxlITlInxlITlIn的脑皮层组织,用5% 戊二醛固定4h以上送电镜检测,观察细胞超微结构 的变化. 1.5大鼠神经功能评分 采用Longa的5级评分标准.0级:无体征;l级: 动物不能完全伸其前肢;2级:动物肢体瘫痪,出现追 尾现象;3级:动物不能站立,打滚;4级:无自主活动, 有意识障碍 1.6统计学处理 采用SPSS11.5统计软件(Kmska1.Wallistest)分 析,数据进行1检验? 2结果 2.1实验大鼠存活情况 在实验过程中,NTC组大鼠有5只因脑缺血死亡, DHC组及DHCA组大鼠无死亡,经检验,3组之间有显 着性差异(1=12.0,P<0.05). 存活的大鼠中,NTC组在运动灵活性方面也较 DHCA组及DHC组差,4h后作Longa5级评分发现3 组之间神经系统损伤情况存在显着性差异(1= 25.49.P<0.01)(1) 表l3组大鼠神经系统功能损害情况只 2.2大脑皮层神经细胞的凋亡率 DHC组,NTC组和DHCA组的神经细胞凋亡率分 男1为(2.20?0.43)%,(19.23?1.O1)%,(4.72? 1.o2)%,经检验,3组间有显着性差异(1=17.31, P<0.001)? 2.3电镜观察结果 在透射电镜下可以观察到凋亡小体(图1),NTC 组出现凋亡小体较其他两组明显增多. 图l大鼠脑皮层细胞凋亡小体×1500 现代医学(ModemMedicalJourna1),2004年6月,第32卷第3期?l89? 3讨论 随着体温的降低,机体的代谢也随之降低.脑部 温度的降低可以降低脑细胞的代谢,提高脑细胞对缺 氧的耐受,故低温是脑保护的最基本技术.通常按体 温的高低将其分为:超深低温(4,16?),深低温 (17,28?),中低温(29,33?),轻低温(34,36?), 将中低温和轻低温统称为亚低温.据文献报道,机体 在l8,37?范围内体温降低与脑血流减少存在直线 关系,而与脑氧代谢下降呈指数关系.,体温从37? 降至27?,脑细胞代谢降低至正常的50%,体温降至 l7?,其代谢低至正常的8%. 大鼠的大脑供血主要是颈总动脉和椎动脉,两支 颈内动脉与两支椎动脉在大脑的基底部形成大脑动脉 环向大脑供血,而颈内动脉占脑总供血量的大部分,椎 动脉(主要为小脑,延髓,脊髓等生命中枢供血)仅占脑 总供血量的小部分.在常温下阻断颈总动脉,由于脑 部尚有椎动脉供血,故仍有部分大鼠得以存活,但由于 供血量明显不足,故引起脑细胞的坏死和凋亡.在本 实验中有5只大鼠在阻断颈总动脉过程中死亡,主要 原因是常温脑缺血引起脑细胞的大量急性坏死.NTC 组存活大鼠神经系统的损伤较重也与大鼠脑细胞坏死 和凋亡有关. 深低温停循环模型是在Sheng等的两血管阻断 法的基础上进行了改进.在大鼠的体温降到 l7,28?时将大鼠的颈总动脉阻断,虽然此时大鼠的 心脏仍有搏动,但深低温时大鼠的心率,血压都只有正 常时的1/5左右,心输出量显着下降,心脏泵血量只有 正常时的1/5,1/10.在本模型中虽然还有椎动脉对 大脑供血,但此时的椎动脉供血只有正常情况下的1/8 左右,而且血供主要集中在小脑,脑干,延髓和脊髓等 椎动脉供血区,大脑皮层的血供是通过椎动脉与大脑 动脉环间的非常细小的侧支来供给,可见在阻断双侧 颈总动脉时脑皮层的供血供氧量极低,基本可以忽略. 故这种脑缺血低流量模型可以作为大鼠深低温停循环 脑缺血缺氧模型来研究,特别是大脑皮质深低温脑缺 血的研究. 细胞凋亡是由于外来因素触发了细胞内预存的死 亡程序而发生的细胞自杀过程,是由特定基因控制的 细胞自主的,有序的死亡,又称程序性细胞死亡.细胞 凋亡是生命的基本特征之一,与细胞增殖共同维持机 体正常生长发育和内环境稳定.在多种应激因素如氧 化剂,毒素,Ca超载,缺氧以及其他促凋亡活性蛋白作 用下,线粒体释放出细胞色素C,在Apaf-1,d—ATP和 ATP存在下活化Caspase一9,导致细胞凋亡的激活:激活 凋亡特异性核酸酶能水解DNA,降解细胞骨架蛋白, 裂解DNA修复的关键酶——多聚ADP核糖多聚酶 等,导致细胞凋亡的发生.通过流式细胞仪检测细胞 断裂的DNA是现在常用的检测细胞凋亡的重要方法: 以往的主要集中在亚低温脑缺血一再灌 注后脑神经细胞的凋亡,在深低温条件下的脑缺血一再 灌注后脑细胞凋亡尚未见报道.很多资料研究显示, 细胞凋亡表达的最高峰时间是24h,可以持续1周 左右,故本实验检测大鼠脑缺血一再灌注引起脑神经元 凋亡的时间选择在再灌注24h.脑皮层和海马区是脑 缺血敏感区,缺血缺氧后脑细胞容易坏死和凋亡.由 于大鼠的海马区比较小,细胞数很少,为了能够满足流 式细胞仪的检测所需细胞数的要求,我们选用大鼠的 脑皮层作为研究对象.本实验研究发现:DHCA组凋 亡细胞百分率均明显低于NTC组,提示深低温停循环 能够增强脑细胞对缺氧的耐受性,延长对缺氧的耐受 时间,减轻脑细胞的损伤及因缺氧而造成的脑细胞的 凋亡;但深低温停循环大鼠脑缺血一再灌注后凋亡细胞 百分率比深低温对照组要高,提示深低温停循环虽然 可以降低脑细胞的代谢提高脑细胞对缺氧的耐受,但 不能完全逆转缺血引起的脑细胞凋亡. [参考文献] [1吴国祥,李承晏,李涛,等.亚低温对大鼠脑缺血一再灌注损 伤后Bcl-2,Bax和C—fos蛋白表达及损伤神经细胞凋亡的影 响[J.中华物理医学与康复杂志,2002_,24(10):605—607. [2]江朝光,齐弘炜,周春喜,等.深低温停循环时不同脑保护方 法对海马区神经元凋亡的影响[J].中华胸心血管外科杂 志,2003,19(2):100-102. [3:左连富.流式细胞术与生物医学[M:.沈阳:辽宁科学技术出 版社.1996.240. [4]IG.M~IT,HOSHINOS,IWAYAF,eta1.Cerebralbloodflowand oxygenmetabolismduringcardiopulmonarybypass【hmoderate h)3~othermicselectivecerebralperfusion【J].Cal~ovascSurg,1999, 7:106-II1. [5]SHENGH,LASKOWHZDT,PEARKS3EINRD,eta1.Character. izationofarecoveryglo"balcerebralischemiamodelinthemouse 【J].JNeurosciMethods,1999,88(1):103—109. [6]陈施艳,张志坚,许国英,等.亚低温对大鼠短暂全脑缺血后 神经元凋亡的影响[J].临床神经病学杂志,2003,15(2):129一 l31. [收稿日期]2003—12-26
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