- 38 - Drug Evaluation Research, Vol.32 No.1, August 2009
HPLC 法测定洛莫司汀-碘海醇复方脂质体的药物含量及包封率
杨硕晔 1,王杏林 2,杨志强 2 * ,司端运 2
1 河南大学药学院,河南 开封 475001
2 天津药物研究院,天津 300193
摘 要 目的:建立 RP-HPLC 法测定洛莫司汀-碘海醇复方脂质体中药物的含量及包封率。方法:使用 DiamonsilTM(钻
石)C18 色谱柱(200 mm × 4.6 mm,5 µm),流动相为乙腈 - 水(65︰35),柱温 25 ℃,体积流量 1.0 mL/min,
检测波长为 230 nm,鱼精蛋白凝聚法分离游离药物,测定复方脂质体中洛莫司汀的含量及包封率;使用 Diamonsil
TMC18 色谱柱(200 mm × 4.6 mm,5 µm),流动相为甲醇 - 水(10︰90),柱温 25 ℃,体积流量 1.0 mL/min,
检测波长为 244 nm,鱼精蛋白凝聚法分离游离药物,测定复方脂质体中碘海醇的含量及包封率。结果:洛莫司汀
与辅料及溶剂峰分离良好,在 1.0 ~ 20.0 µg/mL 线性关系良好(r = 1.0, n = 5),回收率为 99.0 % ~ 101.0 %;碘海
醇与辅料及溶剂峰分离良好,在 6.0 ~ 60.0 µg/mL 线性关系良好(r = 0.999 9, n = 5),回收率为 99.0 %~ 101.0 %。
结论:该方法准确、简单,可用于洛莫司汀-碘海醇复方脂质体含量及包封率的测定。
关键词 洛莫司汀;碘海醇;复方脂质体;含量测定;包封率;鱼精蛋白凝聚法
中图分类号:R927.2 TQ460.72 文献标志码:A 文章编号:1674–6376(2009)01–0038–05
Determination of content and entrapment efficiency of lomustine-iohexol
compound liposomes by HPLC
YANG Shuo-ye1, WANG Xing-lin2, YANG Zhi-qiang2*, SI Duan-yun2
1 Pharmaceutical College of Henan University, Kaifeng 475001, China
2 Tianjin Institute of Pharmaceutical Research, Tianjin 300193, China
Abstract Objective: To establish an HPLC method for determining the content and entrapment efficiency of lomustine-iohexol
compound liposomes. Methods: The separation was performed with a Diamonsil TM C18 column(200 mm × 4.6 mm, 5
µm), the mobile phase was acetonitrile-water(65∶35), the drug was detected at 230 nm wavelength and the flow rate
was 1.0 mL/min, with column temperature of 25℃, protamine aggregation method was applied to separating the free
drug and liposomes, for determining the content and entrapment efficiency of lomustine;the separation was performed with a
DiamonsilTM C18 column(200 mm × 4.6 mm, 5 µm), the mobile phase was methanol-water(10∶90), the drug was
detected at 244 nm wavelength and the flow rate was 1.0 mL/min, with column temperature of 25 ℃, protamine
aggregation method was applied to separating the free drug and liposomes, for determining the content and entrapment
efficiency of iohexol. Results: Lomustine and iohexol can be well separated with a good linear relationship in the rages
收稿日期:2009-06-10
基金项目:国家 973 科技
(2006CB933303)
作者简介:杨硕晔(1983),男,河南省平顶山市人,河南大学硕士研究生,专业方向为药物制剂。
Tel: 15822947270;E- mail: wangyufeng345@163.com
* 通讯作者:杨志强 Tel:(022)23006885; E- mail: yangyqss@sina.com
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of 1.0 — 20.0 µg/mL(r = 1.0, n = 5)and 6.0 — 60.0 µg/mL(r = 0.999 9, n =5), their average recoveries were both
between 99.0 % — 101.0 %, respectively. Conclusion: This method is accurate and simple, and can be well used to
determine the contentand entrapment efficiency of lomustine-iohexol compound liposomes.
Key words compound liposome; content determination; entrapment efficiency; iohexol; lomustine; protamine aggregation method
洛莫司汀(lomustine)为亚硝基脲类烷化剂,
具有广谱抗肿瘤作用,临床主要用于治疗脑瘤、恶
性淋巴瘤、肺癌及恶性黑色素瘤等。目前,其临床
应用的剂型主要是胶囊剂,该剂型不良反应较为严
重,主要为消化道不良反应及迟发的骨髓抑制[1]。
碘海醇(iohexol)是常用非离子造影剂,具有水溶
性大、粘度小、渗透压低等优点,在临床中主要应
用于脊髓造影、血管造影、CT 增强、泌尿系统造
影、骨关节及淋巴管造影[2]。将碘海醇和洛莫司汀
一起包封,制成复方脂质体,通过造影明确肿瘤部
位,确定脂质体到达时间,同时同步在肿瘤内定位
释放化疗药物洛莫司汀,从而提高了疗效,避免了
全身化疗的副作用。本研究采用 RP-HPLC 法分别
测定复方脂质体中洛莫司汀和碘海醇的含量及包
封率,专属性强,操作简单。
1 仪器与试药
LabAlliance 高 效 液 相 色 谱 仪 , 包 括 :
Series1500 泵、As3000 自动进样器、Model 500 检
测器、HT-230A 柱温箱、Anastar 色谱工作站;
SHB-Ⅲ 循环水式多用真空泵(郑州长城科工贸有
限公司);Auto Science AS3120 超声清洗仪(天津
特纳科学仪器厂);KA-1000 低速台式离心机(上
海安亭科学仪器厂)。
洛莫司汀对照品(质量分数 99.6 %,山东潍坊
制药厂);碘海醇对照品(质量分数 99.4 %,浙江
司太立制药有限公司);洛莫司汀-碘海醇复方脂
质体(自制,批号 081102、0081103、081105,含
洛莫司汀 1 mg/mL,碘海醇 240 mg/mL);硫酸鱼
精蛋白注射液(上海第一生化药业有限公司);乙
腈(色谱纯,美国 Fisher 公司);甲醇(色谱纯,
天津市康科德科技有限公司)。
2 方法与结果
2.1 溶液配制
洛莫司汀对照品溶液:精密称取洛莫司汀对照
品适量,用甲醇溶解稀释得质量浓度 10 µg/mL 的
对照品溶液。
洛莫司汀供试品溶液:精密吸取复方脂质体1 mL
(相当于洛莫司汀 1 mg)置 100 mL 量瓶中,加
甲醇溶解并定容,摇匀即得。
洛莫司汀对照品储备液:精密称取洛莫司汀对
照品适量,用甲醇溶解稀释得质量浓度为 20 µg/mL
的对照品储备液。
碘海醇对照品溶液:精密称取碘海醇对照品适
量,用流动相溶解稀释成质量浓度为 24 µg/mL 的
对照品溶液。
碘海醇供试品溶液:精密吸取复方脂质体 1 mL
(相当于碘海醇 240 mg)置 100 mL 量瓶中,加
甲醇溶解并定容,摇匀。精密量取 1 mL 置 100 mL
量瓶中,加流动相定容,摇匀即得。
碘海醇对照品储备液:精密称取碘海醇对照品
适量,用甲醇溶解稀释得质量浓度为 60 µg/mL 的
对照品储备液。
2.2 洛莫司汀的含量及包封率测定
2.2.1 色谱条件与系统适应性实验
色谱柱为 DiamonsilTM C18(4.6 mm × 200 mm,
5 µm),流动相为乙腈 - 水(65︰35),柱温 25℃,
体积流量 1.0 mL/min,检测波长 230 nm,进样量
20 µL。理论塔板数按洛莫司汀峰计为 7 600。
2.2.2 专属性考察
分别取洛莫司汀对照品溶液、空白脂质体(按
复方脂质体制备处方及工艺,不加入洛莫司汀制得)
破乳溶液(吸取空白脂质体 1 mL 置 100 mL 量瓶
中,加甲醇破乳溶解并定容,摇匀即得)、复方脂
质体破乳溶液进样,色谱图见图 1。由图 1 可知,
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图 1 洛莫司汀对照品溶液(A)、空白脂质体破乳溶液(B)、复方脂质体破乳溶液(C)的色谱图
Fig 1 Chromatograms of lomustine standard(A), blank liposome(B)and compound liposomes(C)
洛莫司汀的保留时间为 7.7 min,碘海醇及辅料的
出峰时间在 3 min 以内,不干扰测定。
2.2.3
曲线制备
取洛莫司汀对照品适量,加甲醇制成 1.0、2.0、
4.0、10.0、20.0 µg/mL 的系列溶液,分别测定,以
洛莫司汀浓度为横坐标,峰面积为纵坐标进行回归,
得标准曲线方程:A = 1.348 3 × 104 C - 1 666.8, r =
1.0。结果表明,在 1.0 ~ 20.0 µg/mL洛莫司汀质量
浓度与峰面积线性关系良好。
2.2.4 重复性实验
精密吸取同一批号的复方脂质体样品适量,共
6 份,按“2.1”项下方法制得洛莫司汀供试品溶液,
进样测定,计算得洛莫司汀含量的 RSD 为 0.48%。
2.2.5 回收率实验
按处方比例取空白脂质体 0.1 mL 于 10 mL
量瓶中,共 15 份,分别精确加入 4.0、5.0、6.0 mL
洛莫司汀对照品储备液,各 5 份,用甲醇定容,
摇匀,得质量浓度为 8.0、10.0、12.0 µg/mL 的样
品溶液,进样测定。另取洛莫司汀对照品溶液进
样测定,计算回收率分别为 99.6 %、99.9 %和
100.2 %,RSD(n = 5)分别为 1.26 %、0.98 %
和 1.14 %。
2.2.6 稳定性实验
取供试品溶液(洛莫司汀质量浓度为 10 µg/mL)
2 份分别置避光与光照环境(强度为 2 000 LX)中,
于 0、1、2、4、6、8、12 h 测定洛莫司汀的含量,
结果发现,在避光环境中洛莫司汀的含量 12 h 内
基本不变,峰面积的 RSD 为 0.23 %,而在光照环
境中洛莫司汀的含量 12 h 内下降了约 20 %,因此
在测定过程中须注意样品溶液的避光操作。
2.2.7 鱼精蛋白凝聚法的回收率测定
配制低(80 %)、中(100 %)、高(120 %)
浓度的洛莫司汀氯仿溶液(以氯仿为溶剂配制)各
3 份,60℃ N2 吹干,分别加入空白脂质体适量使
混合均匀,得脂质体混悬液。分别吸取脂质体混悬
液 100 µL,加入 100 µL 鱼精蛋白注射液,混匀,放
置约 3 min,精确加入 5.0 mL 纯净水,离心 15 min
(相对离心力 350 × g),取上清液进样,记录峰
面积。计算得回收率分别为 97.2 %、95.8 %和 98.1 %,
RSD(n=9)为 1.58 %。
2.2.8 洛莫司汀含量测定
分别取洛莫司汀对照品溶液和洛莫司汀供试
品溶液进样,记录色谱图,按外标法以峰面积计算
洛莫司汀含量。3 批供试品中洛莫司汀标示含量分
别为 102.3 %、100.9 %和 102.6 %,RSD(n = 5)
分别为 1.42 %、2.18 %和 1.56 %。
2.2.9 复方脂质体中洛莫司汀的包封率测定
采用鱼精蛋白凝聚法分离脂质体[3]。精密吸取
复方脂质体 100 µL 于离心管中,加鱼精蛋白注射
液 100 µL,振摇混匀,放置约 3 min,精确加入 5.0
mL 纯净水,离心 15 min(相对离心力 350×g), 取
上清液进样,记录峰面积,由标准曲线计算游离药
物的浓度(C1);另精密吸取复方脂质体 100 µL,
置 10 mL 容量瓶中,加入 5 mL 甲醇溶解,摇匀,
A B C
t/min t/min t/min
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进样测定峰面积,由标准曲线计算药物总浓度(C0)。
按包封率=(1 - C1/ C0)× 100 %,计算得 3 批样品
的洛莫司汀包封率分别为 78.7%、75.4%和 72.9%。
2.3 碘海醇的含量及包封率测定
2.3.1 色谱条件与系统适应性实验
色谱柱为 DiamonsilTM C18(4.6 mm × 200 mm,
5 µm),流动相为甲醇 - 水(10︰90),柱温25 ℃,
流速1.0 mL/min,检测波长244 nm,进样量为20 µL。
理论塔板数以碘海醇峰计为 8 500。
2.3.2 专属性考察
分别取碘海醇对照品溶液、空白脂质体(按复
方脂质体制备处方及工艺,不加入碘海醇制得)破
乳溶液、复方脂质体破乳溶液进样,色谱图见图 2。
由图 2 可知,碘海醇(以峰 2 计,峰 1 为其无药
用效果的对映体)的保留时间约为 10 min,洛莫司
汀及辅料无明显色谱峰,不干扰测定。
2.3.3 标准曲线制备
取碘海醇对照品适量,加甲醇制成浓度为 6.0、
12.0、24.0、36.0、48.0、60.0 µg/mL 的系列溶液,
分别进样测定,以碘海醇浓度为横坐标,峰面积为
纵坐标进行回归,得标准曲线方程:A = 1.568 2 × 104
C - 4 013.2, r = 0.999 9。结果表明在 6.0 ~ 60.0
µg/mL 与峰面积线性关系良好。
2.3.4 重复性实验
精密吸取同一批号的复方脂质体样品适量,共
6 份,按“2.1”项下方法制得碘海醇供试品溶液,
进样测定,计算得碘海醇含量的 RSD 为 1.12%。
图 2 碘海醇对照品溶液(A)、空白脂质体破乳溶液(B)、复方脂质体破乳溶液(C)的色谱图
Fig 2 Chromatograms of iohexol standard(A), blank liposome(B)and compound liposomes(C)
2.3.5 回收率实验
按处方比例取空白脂质体 0.1 mL 于 100 mL 量
瓶中,加甲醇溶解并定容,摇匀。吸取 1.0 mL 置
于 3 个 10 mL 量瓶中,共 15 份。分别精确加入
3.2、4.0、4.8 mL 碘海醇对照品储备液,用流动相
定容,摇匀即得质量浓度为 19.2、24.0、28.8 µg/mL
的样品溶液,进样测定。另取碘海醇对照品溶液进
样,记录峰面积,计算回收率分别为 99.8%、99.5%
和 99.2 %,RSD(n=5)分别为 1.43 %、1.26 %
和 0.58 %。
2.3.6 鱼精蛋白凝聚法的回收率测定
配制低(80%)、中(100 %)、高(120 %)浓
度的碘海醇水溶液各 3 份,分别加入空白脂质体适
量使混合均匀,得脂质体混悬液。测定鱼精蛋白凝
聚法的回收率(操作同洛莫司汀的鱼精蛋白凝聚法
回收率测定),结果分别为 98.5 %、97.4 %、96.8 %,
RSD(n=9)为 1.42 %。
2.3.7 碘海醇含量测定
分别取碘海醇对照品溶液和碘海醇供试品溶
液进样,记录色谱图,按外标法以峰面积计算碘海醇
含量。3 批供试品中碘海醇标示含量分别为 101.6%、
98.9%和 99.4%,RSD(n=5)分别为 2.34%、1.76%
和 1.25%。
2.3.8 复方脂质体中碘海醇的包封率测定
采用鱼精蛋白凝聚法分离脂质体。按“2.2.9”
项下方法分离游离药物和脂质体,取上清液 100 µL
置 25 mL 量瓶中,加入流动相定容,摇匀,进样,
记录峰面积,由标准曲线计算游离药物的浓度(C1);
A B C
t/min t/min t/min
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另精密吸取复方脂质体 100 µL 置 10 mL 量瓶中,加
甲醇溶解并定容,摇匀,精密量取 100 µL 置 10 mL
量瓶中,加入流动相定容,摇匀,进样测定峰面积,
由标准曲线计算药物总浓度(C0)。按包封率=(1 -
C1/ C0 × 1.25)× 100 %,计算 3 批样品得碘海醇
包封率为 68.7%、65.4%、62.9%。
3 讨论
曾尝试采用同一种色谱条件同时测定洛莫司
汀和碘海醇,但由于碘海醇易溶于水,而洛莫司汀
水溶性差,两者的极性差别使保留时间相差很大。
此外,由于处方中洛莫司汀和碘海醇浓度差别很大
(洛莫司汀质量浓度为 1 mg/mL,碘海醇质量浓
度为 240 mg/mL),在同一色谱条件下很难同时准
确定量测定。因此,最终选择在两种色谱条件下,
分别测定洛莫司汀和碘海醇。
脂质体预处理,曾尝试采用葡聚糖凝胶过滤
法、透析法和超速离心法。结果显示,由于洛莫司
汀难溶于水,采用葡聚糖凝胶过滤法很难将游离的
洛莫司汀从凝胶柱上洗脱,收集组分至 2 h,游离
的洛莫司汀仍未完全流出;采用透析法,在 2 h 后
观察,发现游离的洛莫司汀与脂质体仍未完全分离,
且每次试验需消耗介质 5 L 以上;超速离心法对设
备要求较高,离心 1 h(相对离心力 20 000 × g),仍
不能将样品中的脂质体完全沉淀。鱼精蛋白凝聚法
是通过絮凝作用增加脂质体密度,在较低转速下就
可达到有效分离[4]。实验证明该法简单、快速,且分
离效果好、回收率更稳定。故最终选用。
参考文献:
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[4] 李红茹,李淑芬.脂质体中药物包封率的测定方法[J].
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《药物评价研究》第一届编委会会议通知
金秋十月,丹桂飘香,中华人民共和国 60 华诞之际,恰值《药物评价研究》的主办单位之一——天
津药物研究院建院 50 周年之时,同时也是我院《中草药》杂志创刊 40 周年、《中草药》英文版——《Chinese
Herbal Medicines》创刊和刘昌孝院士创建药代动力学实验室 40 周年的大日子。兹定于 10 月 22~25 日在天
津举行庆典和学术活动。届时,《药物评价研究》杂志将召开第一届编委会,现诚邀编委与审稿专家光临
指导;同时也欢迎广大医药工作者参加学术会议。联系电话 022-23006822,邮箱:ywpjyj@126.com,详
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《药物评价研究》编辑部
2009 年 8 月