赖草种子发芽特性研究
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赖草种子发芽特性研究
黄彪,李显刚,邸燕 甘肃农业大学草
业学院,兰州(730070) E-mail:
huangbiao@st.gsau.edu.cn
摘 要:通过采用硝酸钾、聚乙二醇、萘乙酸和吲哚乙酸四种化学试剂提高赖草种子的发芽率和发芽势。研究结果
明:收获三年的赖草种子采用不同种类的化学溶液处理,不但发芽
较高。其中,在 15?,25?避光条件下,采用不同浓度的聚乙二醇溶液 理想,而且发芽势
处理赖草种子 10 小时,随着其浓度的升高,发芽势升高,在浓度为 35%时,其发芽势高于 对照 50%,达到极显著水平;硝酸钾处理对提高赖草种子发芽势和发芽率效果不显著;萘 乙酸处理对赖草种子发芽势和发芽率有抑制作用;吲哚乙酸对赖草种子发芽势没有影响,但 能提高赖草种子发芽率,在浓度为 20ppm 时,达到显著水平。因此,温度在 15?,25?条 件下, 收获三年的赖草种子采用 35%聚乙二醇或 20ppm 吲哚乙酸处理赖草种子后发芽较为 理想。
关键词:赖草;发芽率;发芽势
近年来,随着人口的增长和经济的发展,自然资源过渡开发利用,在干旱和半干旱地区,
积扩大,草原受到严重破坏,植被严重退化,土地盐碱化问题突出,生态环境严重恶 沙漠面
化,严重地限制了畜牧业的发展,人类生活环境受到严重威协。因此,对干旱和半干旱地区 生态建设十分重要。在我国北方地区,大部分属于干旱、半干旱气候,土地盐碱化严重,年 降雨量少,生态环境薄弱,植物难以生长,植被恢复难,恢复时间长,见效慢。因此,对北 方地区(特别是西北地区)生态恢复,应该选择一种式多种具有较强的抗干旱、耐盐碱、防 风固沙植物,并进行合理的开发和利用,改善生态环境。
[1-3]赖草(Leymus secalinus(Georgi) Tzvel.)隶属赖草属(Leymus Hochst)植物,生长低
[4-5]矮,具有发达的地下茎,无性繁殖能力强,具有较强的耐寒、耐旱、耐盐碱性能,易形 成优势群落,既是优良的抗逆性作物种子资源,也是优良的牧草作物和水土保持、防风固沙 植物。赖草适应范围相当广泛,从暖温带、中温带的森林草原到干草原、荒漠草原、草原化 荒漠,以至 4500 米以上的高寒地带都有分布,因而,赖草具有较好的开发和利用前景,但 由于长期的自然选择,赖草野生性强,驯化时间短,无性繁殖力强,有性繁殖力弱,雄花大
[6]部分不育,结实率、发芽率和发芽势均很低,种子严重体眠(发速变慢、时间长),萌发 不整齐,萌发后幼苗生长发育缓慢,大大降低了其生物学价值和生态应用价值。
治理和改良退化草地、建立人工草地都需要大量的草种子。牧草种子质量的优劣、田间 播种价值如何,都需要对牧草种子进行发芽试验。发芽试验一般采用
控制及标准条件 下的发芽试验,使结果具有可靠的重演性、一致性和可比性。因此,开展提高赖草种子发芽 率和发芽势研究具有一定的实用价值和现实意义。一方面,扩大了优良生态草种质——赖草 在生态恢复与重建方面的应用,加快了赖草与农作物(小麦、大麦、燕麦等)杂交育种—— 对耐寒、耐旱、耐盐碱性农作物的培育。另一方面,种子发芽试验不仅能正确掌握牧草的播
[7-8]种量,而且对牧草种子贸易,牧草种子的贮藏和运输也具有一定的参考价值。
种子发芽率和发芽势受种子内部因素和外界环境的影响,在实际生产中通常采用化学方 法或物理与化学相结合的方法来提高种子发芽率。研究发现,不同的化学试剂对同一种种子 发芽率和发芽势影响不同,同一种化学试剂的不同浓度对同一种种子发芽率和发芽势影响不
,,-55 -66 同。种子用化学试剂处理后,发芽率有所提高。比如:5×10赤毒素和 5×10细胞分裂 素共同处理羊草(L.chinensis(Trin))种子,其发芽率明显提高;聚乙二醇 (PEG-6000)可有
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[9]效地解除羊草(L.chinensis(Trin))种子的休眠。基于上述研究报道,并且赖草和羊草均属 于赖草属植物,具有很多相似的生理生化特性,因此,可以利用提高羊草发芽率的方法来探 索提高赖草种子发芽率的方法。
有关赖草的研究,过去多从赖草的栽培育种、遗传特性、休眠与耐旱生理、群落生产、 无性系生长及构件年龄结构等方面展开,由于赖草繁殖方式主要为根茎繁殖,极少数用种子 繁殖,所以关于赖草种子的抗盐、碱性方面的研究基本上刚刚开始。本试验对赖草种子在聚 乙二醇、硝酸钾溶液、萘乙酸和 IAA 溶液胁迫下的发芽势、发芽率、初始萌发时间以及发 芽速度等特征进行研究,以便深入了解赖草种子萌发的抗盐性,并对赖草人工草地土壤化学 条件的选择提供理论依据。
1. 材料和方法
1.1 试验材料
本研究选用草业学院 2006 年收获的赖草(L.secalinus(Georgi) Tzvel.)种子,生长分布 于田边、地埂、路边、河流两岸轻度盐渍化草甸、山坡草原等。种子饱满、光泽好、无虫害、 无损伤、生活力强。
硝酸钾、聚乙二醇(PEG-6000)、吲哚乙酸(IAA)、萘乙酸、蒸馏水、75%酒精、0.01% 的高锰酸钾溶液、培养皿、容量瓶、电子天平、玻璃棒、定性滤纸、种子净度
台、数种 板、镊子、滴管、GXZ 型光照发芽箱、试验记录本等。
1.2 方法
1.2.1 种子净度分析 在净度分析台上按照下列标准分选赖草
种子和分离杂质
净种子 下列构造凡能明确地鉴别出它们是属于所分析的种(已变成菌核、黑穗病孢子团或线虫瘿除外),即使是未成熟的、瘦小的、皱缩的、带病的或发过芽的种子单位都应作为 净种子。在禾本科中,种子单位如是小花须带有一个明显含有胚乳的颖果或裸粒颖果(缺乏
[10-14]内外稃),大于原来大小一半的破损种子单位。
杂质 明显不含真种子的种子单位,破裂或受损伤种子单位的碎片为原来大小的一半或 不及一半的;按该种的净种子定义,不将这些附属物作为净种子部分或定义中尚未提及的附 属物;脆而易碎、呈灰白色、乳白色的菟丝子种子;脱下的不育小花、空的颖片、内外稃、 稃壳、茎叶、球果、鳞片、果翅、树皮碎片、花、线虫瘿、真菌体(如麦角、菌核、黑穗病
[15-16]孢子团)、泥土、砂粒、石砾及所有其他非种子物质。经分析,赖草种子净度为 98%, 千粒重为 2.795g。
1.2.2 化学试剂的配置
聚乙二醇(PEG-6000)溶液配置 用电子天平分别称取 0g(CK)、0.5g、1.0g、1.5g、 2.0g、2.5g、3.0g、3.5g、4.0g、4.5g 、5.0g 聚乙二醇固体,分别到入 11 个小烧杯中,编号 为 PEG—O、PEG—1、PEG—2、PEG—3……PEG—10,分别加入 10ml 蒸馏水,使聚乙二 醇完全溶解,再用玻璃棒转移到编号为 PEG—O、PEG—1、PEG—2、PEG—3……PEG—10 规格为 100ml 容量瓶中,用蒸馏水洗涤 11 个小烧杯 2-3 次,分别用玻璃棒转移各自的容量 瓶中,最后进行定容,再摇匀。这样就配置好了浓度分别为 0%(CK)、5%、10%、15%、 20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%共 11 种不同浓度的聚乙二醇溶液。
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硝酸钾溶液配置 用电子天平分别称取 0g(CK)、0.01g、0.02g、0.03g、0.04g、0.05g、0.06g、0.07g、0.08g、0.09g、0.10g 硝酸钾固体,分别到入 11 个小烧杯中,编号为 KNO—O、 3KNO—1、KNO—2、KNO—3……KNO—11,分别加入 10ml 蒸馏水,使硝酸钾完全溶解, 3333
再用玻璃棒转移到编号为 KNO—O、KNO—1、KNO—2、KNO—3……KNO—11 规格 33333为 100ml 容量瓶中,用蒸馏水洗涤 11 个小烧杯 2-3 次,分别用玻璃棒转移各自的容量瓶中,
行定容,再摇匀。这样就配置好了浓度分别为 0%(CK)、0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、 最后进
0.5%、0.6%、0.7%、0.8%、0.9%和 1.0%共 10 种不同浓度的硝酸钾溶液。 萘乙酸、吲哚乙
酸(IAA)溶液配置 在分别称取吲哚乙酸和萘乙酸之后,在分别用 5ml
精进行溶解,再按照配置硝酸钾和聚乙二醇溶液的步骤进行配置。最后得 浓度为 75%的酒
到浓度分别为 0ppm(CK)、20ppm、40ppm、60ppm、80ppm、100 ppm 的吲哚乙酸(IAA) 溶液和浓度为 0ppm(CK)、100ppm、150ppm、200ppm、250ppm、300ppm 的萘乙酸溶液。
1.2.3 试剂处理
聚乙二醇处理 将赖草净种子充分混合后,不论种子大小,用数种板随机数取 1100×4 粒种子,用 0.01%的高锰酸钾溶液消毒,蒸馏水冲洗 3,5 次, 置于滤纸上,自然风干。将 种子放入新配制的浓度分别为 0%(CK)、5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、 45%和 50%的 PEG-6000 溶液中,每个浓度放入 450 粒种子,将种子与溶液充分混合,再置 于 14?生化培养箱中避光处理 10h 后取出,用蒸馏水冲洗 4,5 次, 置于滤纸上 10min,自 然风干,在分别对每个浓度处理的种子做发芽实验,每个浓度 100 粒种子, 4 个重复。然后 将赖草种子置于培养皿滤纸上(培养皿底盘的侧面贴上标签,并注明置床日期、样品编号、 种名或品种名、重复次数等,然后盖好发芽器皿),放入发芽箱中 15?,25?变温(8h 高温, 温度为 25?,光强为 33LX;16 h 低温,温度为 15?,光强为 0LX)条件下发芽。发芽床为 纸床 ,采取纸上(TP)方法,每个培养皿中铺上 2 层定性滤纸。每日观察,统计发芽和发霉情 况,连续实验记录 20 天,发芽期间保证种子水分充足(发芽试验用水为蒸馏水)。
硝酸钾处理 将赖草净种子充分混合后,不论种子大小,用数种板随机数取 1200×4 粒种 子,用 0.01%的高锰酸钾溶液消毒,蒸馏水冲洗 3,5 次, 置于滤纸上,自然风干。分别用 新配制的浓度分别为 0%(CK)、0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、0.6%、0.7%、0.8%、 0.9%和 1.0%的硝酸钾溶液做发芽实验(每种处理液 5ml),每个浓度 100 粒种子, 4 个重复。 然后将赖草种子置于培养皿滤纸上(培养皿底盘的侧面贴上标签,并注明置床日期、样品编 号、种名或品种名、重复次数等,然后盖好发芽器皿),放入发芽箱中 15?,25?变温(8h 高温,温度为 25?,光强为 33LX;16h 低温,温度为 15?,光强为 0LX)条件下发芽, 发芽 床为纸床,采取纸上(TP)方法,每个培养皿中铺上 2 层定性滤纸。发芽试验第一次用硝酸 钾溶液,以后每次都用蒸馏水。每日观察,统计发芽和发霉情况,连续实验记录 20 天,发 芽期间保证种子水分充足。
萘乙酸处理 将赖草净种子充分混合后,不论种子大小,用数种板随机数取 610×4 粒种 子,用 0.01%的高锰酸钾溶液消毒,蒸馏水冲洗 3,5 次, 置于滤纸上,自然风干。分别用 新配制的浓度分别为 0ppm(CK)、100ppm、150ppm、200ppm、250ppm 和 300ppm 的萘乙 酸溶液做发芽实验(每种处理液 5ml),每个浓度 100 粒种子, 4 个重复。然后将赖草种子置 于培养皿滤纸上(培养皿底盘的侧面贴上标签,并注明置床日期、样品编号、种名或品种名、 重复次数等,然后盖好发芽器皿),放入发芽箱中 15?,25?变温(8h 高温,温度为 25?, 光强为 33LX;16 h 低温,温度为 15?,光强为 0LX)条件下发芽, 发芽床为纸床,采取纸上
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(TP)方法,每个培养皿中铺上 2 层定性滤纸。发芽试验第一次用萘乙酸溶液,以后每次都用蒸馏水。每日观察,统计发芽和发霉情况,连续实验记录 20 天,发芽期间保证种子水分 充足。
吲哚乙酸(IAA)处理 将赖草净种子充分混合后,不论种子大小,用数种板随机数取 700×4 粒种子,用 0.01%的高锰酸钾溶液消毒,蒸馏水冲洗 3,5 次, 置于滤纸上 10,自然 风干。分别用新配制的浓度分别为 0ppm(CK)、20ppm、40ppm、60ppm、80ppm 和 100ppm 的吲哚乙酸溶液做发芽实验(每种处理液 5ml),每个浓度 100 粒种子, 4 个重复。然后将赖 草种子置于培养皿滤纸上(培养皿底盘的侧面贴上标签,并注明置床日期、样品编号、种名 或品种名、重复次数等,然后盖好发芽器皿),放入发芽箱中 15?,25?变温(8h 高温,温 度为 25?,光强为 33LX;16h 低温,温度为 15?,光强为 0LX)条件下发芽, 发芽床为纸床, 采取纸上(TP)方法,每个培养皿中铺上 2 层定性滤纸。发芽试验第一次用吲哚乙酸溶液, 以后每次都用蒸馏水。每日观察,统计发芽和发霉情况,连续实验记录 20 天,发芽期间保 证种子水分充足。
1.2.4 种子发芽试验
试样分取 将赖草净种子充分混合后,不论种子大小,用传统记数法随机分取 3700×2
[17]粒种子,每一重复 100 粒,共 32×2 次处理,每个处理有 4 次重复。 选用发芽床及种子
置床 本试验采用纸上发芽法,在培养皿内放置两层滤纸,每个培养 皿内均匀排列 100 粒种子,将种子置于发芽床上,置床时每粒种子在发芽床上应保持足够的
[18-20]距离,以尽量减少相邻种子对种苗发育的影响和病菌的互相感染。
加入处理液 在置床好的培养皿中加入等量的处理液至饱和状态(每种处理液 5ml),对 照组的培养皿应加入等量的蒸馏水(5ml),并要求加入的溶液一致,使种子吸水良好,发芽 整齐。
发芽器皿贴标签 将培养皿底盘的侧面贴上标签,并注明置床日期、样品编号、种名或 品种名、重复次数等,然后盖好发芽器皿上盖或套一膜塑料袋。
规程要求将发芽箱调至发芽所需温度,将置床后的培养皿放进发芽 置箱培养与管理 按
箱的网架上进行恒温(或变温)发芽,当规定用变温时,通常保持低温 16h 需要调节光照条 件。种子发芽期间,每天检查发芽试验的情况以保证适宜的发芽条件。发芽床始终保持湿润, 不断加入蒸馏水。温度保持在所需温度的?1?范围。如发现霉菌滋生,应及时取出霉种子并 将霉菌洗去。
1.2.5 观察记录 整个发芽期间
(1)每天检查发芽试验的情况,并将明显死亡的软、腐烂种子用镊子取出并在试验记录本 上分别记录其数目。
(2)发芽势测定 统计到第 10 天种子的发芽数 计算公式为:发芽势,第 10 天的发芽数/ 供试种子数。
(4)发芽率测定 统计到第 20 天种子发芽基本结束时的发芽数 计算公式为:发芽率,第 20 天的发芽数/供试种子数。
(5)数据统计分析 将所有的数据进行汇总,用 DPS 软件进行差异显著性分析和 EXCEL 软件做出图表。
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2. 结果与分析
2.1 不同浓度的 PEG-6000 对提高赖草种子发芽势和发芽率的影响
不同浓度的 PEG-6000 对赖草种子发芽势和发芽率的影响不同,其中,不同浓度的 PEG-6000 对提高赖草种子发芽率没有作用。而不同浓度的 PEG-6000 对提高赖草种子发芽 势有明显效果,且效果显著。其中,浓度为 15%、20%、25%、30%、35%的 PEG-6000 对 提高赖草种子发芽势效果最佳,而其中又以浓度为 35%的 PEG-6000 的效果最好。 实验所得结果见表 1、4。15%、20%、25%、30%、35%的 PEG-6000 与对照发芽势比 较见图 1。
表 1 PEG-6000 处理赖草种子发芽势结果
重复?重复?重复?重复?处理(%)平均值发芽势(%)CK(0) 65 64 67 67 66.25
5 65 67 63 64 64.75
10 69 68 65 63 66.25
15 72 68 69 72 70.25
20 75 73 71 74 73.25
25 68 69 71 64 68.00
30 75 71 72 74 73.00
35 76 73 71 74 73.75
40 67 64 65 65 65.25
45 63 65 60 61 62.25
50 60 61 58 59 59.50
78
76
74
72
0% 70 15%
20%
25%68 30% 发芽势(%) 35% 66
64
62
重复? 重复? 重复? 重复?
重复处理数
图 1 PEG-6000 处理赖草种子发芽势与对照折线图
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表 2 PEG-6000 处理对赖草种子发芽势影响(SSR 测验)
差异显著性处理(%) 重复? 重复? 重复? 重复? 平均发芽势(%) 5% 1% 35 76 73 71 74 73.75 a A 20 75 73 71 74 73.25 ab AC 30 75 71 72 74 73.00 ab ACE 15 72 68 69 72 70.25 bd ACD 25 68 69 71 64 68.00 bc BD
CK(0) 65 64 67 67 66.25 c D
表 3 PEG-6000 处理对赖草种子发芽势影响(F 测验) DF SS MS F F(0.05) F(0.01) 变异来源
10 870 87 20.09 2.14 2.93 处理间 33 143 4.33 试验误差
经试验结果分析可知,用 PEG-6000 对赖草种子处理后种子发芽势与不采用任何试剂相 比,存在显著差异,且浓度为 35%时效果达到极显著水平。
表 4 PEG-6000 处理赖草种子发芽率结果 浓度(%)重复?重复?重复?重复?平均发芽率(%)
CK(0) 74 72 79 77 75.50
5 79 74 76 73 75.50
10 72 75 77 72 74.00
15 84 83 79 83 82.25
20 85 81 84 83 83.25
25 84 80 79 85 82.00
30 85 87 82 84 84.50
35 87 88 89 87 87.75
40 83 84 87 85 84.75
45 80 79 82 84 81.25
50 79 74 76 76 76.25
表 5 PEG-6000 处理对赖草种子发芽率影响(F 测验) DF SS MS F F(0.05) F(0.01) 变异来源
10 1197.05 119.705 1.30 2.14 2.93 处理间
33 3029.50 91.80 试验误差
经分析得知,因 F