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葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究

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葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究 第22卷第4期哈尔滨商业大学(自然科学版)Vo1.22No.4 2006年8月 JournalofHarbinUniversityofCommerce(NaturalSciencesEdition)Aug.2006 葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究 赵瑛,周游,殷惠军,张颖 (1.哈尔滨商业大学博士后工作站,黑龙江哈尔滨150076; 2.中国中医科学院西苑医院,北京100091) 摘要:探讨葛根素对脂肪细胞糖,脂代谢的影响.建立3'13一L1脂肪细胞IR模型. 葡萄糖氧化酶法 ...
葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究
葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究 第22卷第4期哈尔滨商业大学(自然科学版)Vo1.22No.4 2006年8月 JournalofHarbinUniversityofCommerce(NaturalSciencesEdition)Aug.2006 葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究 赵瑛,周游,殷惠军,张颖 (1.哈尔滨商业大学博士后工作站,黑龙江哈尔滨150076; 2.中国中医科学院西苑医院,北京100091) 摘要:探讨葛根素对脂肪细胞糖,脂代谢的影响.建立3'13一L1脂肪细胞IR模型. 葡萄糖氧化酶法 测定葛根素处理48h后培养液中葡萄糖残存量,铜试剂显色法测定游离脂肪酸浓 度.与模型组比较, 葛根素高,低剂量组葡萄糖消耗量显着增加(P<0.05),游离脂肪酸水平呈现降低 趋势.葛根素明显 增加脂肪细胞的葡萄糖消耗,对TNF一0【诱导的脂肪分解无明显作用. 关键词:葛根素;3—L1脂肪细胞;胰岛素抵抗;糖脂代谢 中图分类号:R285文献标识码:A文章编号:1672—0946【2006)04—0005—03 Studies0neffectsofpuerarinonglucoseandlipidmetabolisminaaipocytes ZHAOYing,ZHOUYou,YINHui-jun,ZHANGYing (1.Postd~-talResearchInstituteMaterialMedical,HarbinUniversityCollll/lei,-ce,Harbin150076,China; 2XiyuanHospital,Ac蜘0fTraditionalChineseMedicineScience,Beijing103391,China) Abstract:Toobserveeffectsofpuerarinonglucoseandlipidmetabolisminadipocytes.This paperestablishestheinsulinresistancemodelof3T3一L1adipocytes.Theglucoseoxidase methodiSusedtomeasuretheresidualamountofglucoseintheculturemediumaftertreat. mentwithpuerarinfor48hours.andthefreefattyacidconcentrationiSmeasuredbycuprum reagentforvisualization.Comparingwithmodelgroup,theglucoseconsumptionofpuerarin highandlowgroupincreasedsignificantly(P<0.05),andthefreefattyacidleveltended todecrease.Puerarincansignificantlyincreacetheglucoseconsumptioninadipocytes,and havenotobviouseffectonfatdecompositionwhichiSinducedbyTNF—. Keywords:puearin;3T3一L1adipocyte;insulinresistance;glucoseandlipidmetabolism 葛根是中药的辛凉解药之一,具有升阳,解 肌,通络等作用.葛根素是从葛根中提取的有效成 分,根据对葛根素的研究报道,许多整体动物实验 和临床观察发现其不仅能够调节机体的糖代谢,也 能够调节脂代谢,同时对胰岛素抵抗(IR)有一定 的改善?.为进一步明确葛根素对糖,脂代谢的 影响,本文采用游离脂肪酸(FFA)诱导建立3T3一 L1脂肪细胞胰岛素抵抗细胞模型,以培养液中葡 萄糖消耗量和FFA浓度为指标观察葛根素对脂肪 细胞糖,脂代谢的影响. 收稿日期:2006—04—26. 作者简介:赵瑛(1960一),女,博士,教授,研究方向:中药药理 1 1.1药物与试剂 313一L1细胞株购自ATCC(AmericanType CultureCollection);IMDM培养基(GIBCOBRL Co.);优等胎牛血清(Fetalbovinesemm/FBS.Hy. cloneBRLCo.);1一甲基3一异丁基黄嘌呤(IMX, Sigma);地塞米松(南京第三制药厂);生物合成人 胰岛素注射液(丹麦诺和诺德公司,批号 PW52526);棕榈酸(北京化学试剂公司,批号 940902);C盐(Celite,Serva公司);牛血清白蛋白 哈尔滨商业大学(自然科学版)第22卷 (BSA,sigma分装);FFA测定试剂盒(南京建成生 物工程研究所);葛根素注射液(烟台鲁银药业,批 号0310211). 1.2仪器 超净工作台(北京昌平长城空气净化公司), CO培养箱(TYPE4型,德国Heraeus公司生产), 倒置相差显微镜(Leica),离心机(Sigma3K30,Sig— ma公司),酶标仪(TECAN公司),光学显微镜(O— lympus). 2方法 2.1313一L1前脂肪细胞诱导分化 待313一L1前脂肪细胞在瓶壁上铺满成单层 时(0d),立即去除普通培养液,换用含IMX 0.5mmol/L,地塞米松1trmol/L,胰岛素10g/mL 的诱导分化培养液J.48h后,撤去诱导化液,再 换用含胰岛素10g/mL的IMDM培养液培养,每 2,3d换液一次,根据细胞长势传代,到第9d, 90%以上的细胞分化为成熟的脂肪细胞,再换用普 通IMDM培养液,恢复3d,即可用于实验. 2.2313一L1脂肪细胞胰岛素抵抗模型的建立 诱导分化成熟的脂肪细胞,接种于6孔培养板 中J,待生长融合后,用浓度为10nmol/L葡萄糖/ 1%BSA/FFA/KRP缓冲液(KRP缓冲液:131.2 mmol/LNaCI,4.71mmol/LKCI,2.48mmol/L Na3PO4?12H2O,10mmol/LHepes,1.24mmol/L MgSO4?7H2O,2.47mmol/LCaCI2,pH值为7.2, 7.4.)洗涤3次,并用此液孵育,每孔2mL.对照组 用含10nmol/L葡萄糖/1%BSA/KRP缓冲液做同 样处理.孵育时间12h,根据细胞贴壁情况,每4h 换液一次,液体与原孔同.12h后,均用1mmol/L 丙酮酸1%BSA/KRP缓冲液洗3次,并用该液 孵育1h.然后用1%BSA/KRP缓冲液洗2次,并用 该液孵育1h.然后用D—hanks洗2次,换用无血 清IMDM培养液孵育2h.最后用D—hanks洗2 次,全部换用普通IMDM培养液孵育. 2.3葛根素对脂肪细胞葡萄糖消耗的影响 将IR模型细胞分组如下:对照组(contro1),模 型组(mode1),二甲双胍组(Met),葛根素高剂量组 (PueH)(1.5mg/mL),低剂量组(PueL)(0.75mg/ mL)及丙二醇组(PG),每组6个平行孔.各组加入 相应质量浓度药物,作用48h后取出培养液,1000 r/min离心5min,取上清液,葡萄糖氧化酶法测培 养液中葡萄糖残存量,以未接种细胞空白复孔的糖 含量均值为基础值,计算出各孔细胞葡萄糖消耗 量. 2.4葛根素对TNF—诱导脂解作用的研究 除对照组外,均用TNF—诱 细胞分组同前. 导脂解,TNF—培养液中终质量浓度5g/mL.各 药物组在培养基中,除加TNF—外,还分别加入 相应质量浓度药物作用.48h后吸取培养液,用铜 试剂显色法(试剂盒)检测培养液中FFA的质量浓 度. 2.5统计学处理 数据以x?S表示,多组比较用SPSS11.5软 件作方差分析,组间比较用g检验. 3结果 3.1葛根素对脂肪细胞葡萄糖消耗的影响 各组葡萄糖消耗量如表1.模型组与对照组比 较差异有显着意义(P<0.01),证实FFA可以减少 脂肪细胞对葡萄糖的消耗,诱导IR的发生,这与文 献报道相符.与模型组比较,葛根素高,低剂量 组均具有促进葡萄糖消耗作用,差异显着(P< 0.05).丙二醇与模型组比较无显着差异. 表1葛根素对脂肪细胞葡萄糖消耗的影响(x?) 与对照组比较,'P<0.05,一P<0.Ol;与模型组比较.'P <0.05.P<0.0l 3.2葛根素对TNF—诱导脂解作用的研究 各组游离脂肪酸浓度如表2.模型组与对照组 比较,差异显着(P<0.01);二甲双胍组与模型组 比较,差异显着(P<0.01);与模型组比较,葛根素 高,低剂量组数值显示出降低趋势,但无统计学意 义(P>0.05). 表2葛根素对脂肪细胞脂解作用的影响(x?) 与对照组比较,P<0.o5,一P<0.Ol;与模型组比较,P <0.0l 4讨论 本实验证实葛根素具有促进脂肪细胞葡萄糖 第4期赵瑛,等:葛根素对脂肪细胞糖脂代谢作用研究?7? (上接4页) 具有抗肿瘤活性,结合我国用青龙衣治疗某些肿瘤 疾病大多数是汤剂的现状,针对青龙衣多糖是否具 有抗肿瘤活性,以及在其多糖具有抗肿瘤基础上, 研究其多糖的抗肿瘤机制进行一次深入的研究,是 青龙衣作为抗瘤药物的开发研究的空白和重点. 参考文献: 刘薇,季宇彬.青龙衣毒性作用及体内抗肿瘤作用的实验 研究[J].哈尔滨商业大学:自然科学版,2004,20(1):4 一 l0. 季宇彬,汲晨锋,马宏图.青龙衣冷,热乙醇提取物对H22小 鼠肿瘤细胞膜生化功能影响的研究[J].中国中药杂志, 2005,30(7):53l一534. 徐巍.青龙衣的药用研究概述[J].中医药信息,2002,19 (6):l3一l4. 季宇彬,马宏图,杨波,等.青龙衣不同提取部位的抗肿瘤 作用研究[J].中草药,2004,35(10):l145一l147. ALKHAWAJA.StudiesontheantimicrobialactivityofJuglan~ regiaAm[J】.ChinMed,1997,25(12):175—180. XUSY.MethodologyinPharmacologicalExperimentonmedical [M].Beijing:People'sMedicalPublishingHouse,2002.97. 韦巍,李雪华.多糖的研究进展[J].国外医学:药学分册, 2005,32(3):179,184. YEKZ,LIBN,WANGKL,eta1.ExtractionandSeparation ofPolysaccharide[J].Guan~ouFoodScienceandTechnole- gY,2004,20(3):144—145. 叶振南,邵家坪,陆惠文.粗多糖的提取,分离及结构研究 [J].中国药事,2000,14(5):329—332. [10]陆国栓,吴小蓉.黑豆皮色素的提取及其理化性质研究[J]. 中国粮油,1997(3):53—58. [11]吴寿金,赵泰,秦永琪.现代中草药成分化学[M].北京: 中国医药科技出版社,2002.214—217. [12]谭仁祥.植物成分分析[M].北京:科学出版社,2002.87— 89. 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