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实验一 质粒DNA提取纯化、DNA电泳检测

2017-09-15 6页 doc 40KB 33阅读

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实验一 质粒DNA提取纯化、DNA电泳检测实验一 质粒DNA提取纯化、DNA电泳检测 一、实验目的 1(掌握质粒DNA的制备的原理和方法 2(了解质粒琼脂糖凝胶电泳分离 二、实验原理 1(质粒DNA的制备方法 质粒(Plasmid)是独立存在于染色体外、能自主复制并能稳定遗传的一种环状双链DNA分子,分布于细菌、放线菌、真菌以及一些动植物细胞中,但在细菌细胞中含量最多。细菌质粒大小介于1,200Kb之间,是应用最多的质粒类群,在细菌细胞内它们利用宿主细胞的复制机构合成质粒自身的DNA。 质粒DNA的制备包括3个步骤:?培养细菌,使质粒DNA大量扩增;?收...
实验一 质粒DNA提取纯化、DNA电泳检测
实验一 质粒DNA提取纯化、DNA电泳检测 一、实验目的 1(掌握质粒DNA的制备的原理和方法 2(了解质粒琼脂糖凝胶电泳分离 二、实验原理 1(质粒DNA的制备方法 质粒(Plasmid)是独立存在于染色体外、能自主复制并能稳定遗传的一种环状双链DNA分子,分布于细菌、放线菌、真菌以及一些动植物细胞中,但在细菌细胞中含量最多。细菌质粒大小介于1,200Kb之间,是应用最多的质粒类群,在细菌细胞内它们利用宿主细胞的复制机构合成质粒自身的DNA。 质粒DNA的制备包括3个步骤:?培养细菌,使质粒DNA大量扩增;?收集和裂解细菌;?分离和纯化质粒DNA。主要方法包括:碱裂解法:0.2molNaOH+1%SDS;煮沸裂解法:沸水煮沸40秒;SDS裂解法:10%SDS,一般用于质粒大量提取。在实际操作中可以根据宿主菌株类型、质粒分子大小、碱基组成和结构等特点以及质粒DNA的用途进行选择。本实验选择碱裂解法提取质粒DNA。 2(碱裂解法 质粒DNA 具特定的形态结构,在特殊的环境条件下,如加热、极端pH值、有机溶剂、尿素、酰胺试剂等会导致质粒DNA变性,去除变性条件又可以使DNA复性。 碱裂解法根据共价闭合环状质粒DNA和线性染色体DNA在拓扑学上的差异来分离质粒DNA。SDS是一种阴离子表面活性剂,它既能裂解细菌细胞,又能使细菌蛋白质变性。SDS处理细菌细胞后会导致细菌细胞壁破裂,从而使质粒DNA及细菌基因组DNA从细胞中同时释放出来。细菌环状基因组DNA在操作过程中会断裂成线状DNA分子,在pH值介于12.0,12.5这个狭窄的范围内,线性的DNA双螺旋结构解开而被变性,尽管在这样的条件下,共价闭环质粒DNA的氢键会被断裂,但两条互补链彼此相互盘绕结合在一起。当加入pH4.8乙酸钾缓冲液时,pH恢复至中性,因为共价闭合环状的质粒DNA的两条互补链仍保持在一起,因此复性迅速而准确,而线性的染色体DNA的两条互补链彼此已完全分开,复性就不会那么迅速而准确,它们相互缠绕形成不溶性网状结构,而复性的质粒DNA恢复原来构型,保持可溶性状态。通过离心,就可去除染色体DNA和蛋白质-SDS复合物等物质,最后用酚氯仿抽提纯化上清液中的质粒DNA,乙醇或异丙醇沉淀就可得到纯的质粒DNA,之后可再用超离心、电泳、离子交换柱层析等方法进一步纯化质粒。 3(质粒琼脂糖凝胶电泳分离 琼脂糖凝胶电泳技术(agarose gel electrophoresis)是分离、鉴定和提纯DNA片断的有效方法。琼脂糖凝胶可分辩0.1~6.0kb的双链DNA片段。DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应。DNA分子的高于等电点的pH溶液中带负电荷,在电场中向正极移动。由于糖-磷酸骨架在结构上的重复性质,相同数量的双链DNA几乎具有等量的静电荷,因此它们能以同样的速度向正极方向移动。在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应,即DNA分子本身的大小和构型。具有不同的相对分子质量的DNA片段泳动速度不一样,可进行分离。DNA分子的迁移速度与相对分子质量的对数值成反比关系。凝胶电泳不仅可分离不同相对分子质量的DNA,也可以分离相对分子质量相同,但构型不同的DNA分子,如pUC19质粒,有3种构型:超螺旋的共价闭合环状质粒 1 DNA(covalently closed circular DNA, cccDNA);开环质粒DNA,即共价闭合环状质粒DNA 1条链断裂(open circular DNA , OCDNA)和线状质粒DNA,即共价闭合环状质粒DNA2条链发生断裂(linear DNA, LDNA)。这3种构型的质粒DNA分子在凝胶电泳中的迁移速度不同。因此电泳后呈3条带,超螺旋质粒DNA泳动最快,其次为线状DNA,最慢的为开环质粒DNA。 三、仪器及试剂 1(仪器及耗材:冷冻离心机、微量移液器、1.5ml EP管、枪头、凝胶槽、电泳仪等。 2(试剂及配制: 溶液?(GET缓冲液):25 mmol/LTris-HCl(pH8.0),10 mmol/L EDTA,50 mmol/L葡萄糖,pH8.0 溶液II(变性液):200 mmol/L NaOH,1% SDS 配制:1 ml 10% SDS 50 μl 1N NaOH 200 μl 取以上溶液,用灭菌去离子水定容至1ml,充分混匀,现用现配。 溶液 III (醋酸钾液):3 mol/L 醋酸钾(KAc)缓冲液,pH 5.6。 5 mol/L 冰醋酸 配制:100 ml 醋酸钾 29.4g 冰醋酸 11.5 ml 加入60 ml去离子水后搅拌溶解。待醋酸钾溶解后,再加去离子水将溶液定容至100 ml。高温高压灭菌后,4?保存。 其它试剂:TE(pH8.0)、饱和酚、酚/氯仿(25:24)、无水乙醇、70,乙醇、电泳缓冲液、6×上样缓冲液 四、实验步骤 1(接种细菌于LB液体培养基中,37?培养过夜(E coli. Top10, pUC19质粒); 2(取细菌悬液1mL于1.5mLEP管中,4000 rpm/min,离心2min; 3(弃上清,加入100μl溶液?; 4(加入200μl溶液II ,颠倒混匀,静置2min; 5(加入150μl溶液III,颠倒混匀,静置5min; 6(4?,12000 rpm/min,离心10min; 7(取400μl上清移入另一EP管,加等体积饱和酚,振荡混匀,12000 rpm/min,离心10min; 8(取约300μl上层水相移入另一EP管,加等体积酚/氯仿,振荡混匀,12000 rpm/min,离心10min; 9(取200μl上层水相移入另一EP管,加2倍体积无水乙醇,混匀置-20?1.5小时,沉淀DNA; 10(12000 rpm/min,离心10min,弃上清,加入1mL70%乙醇洗涤DNA沉淀,小心吸弃乙醇; 11(开盖放置5 min干燥DNA,加入15μl TE溶解DNA; 12(加入3μl 6×上样缓冲液,混匀,18μl分两次上样于1%琼脂糖凝胶电泳; 2 13(上样9μl DNA marker。 14(150V, 60min,紫外灯下观察结果。 五、结果与讨论 1(质粒电泳结果 质粒DNA在含有溴化乙锭的琼脂糖凝胶电泳中,被染成橘黄色。如下图所示,质粒DNA可以观察到3条带,电泳速度最慢的条带显色最浅。质粒DNA有3种构型,即共价闭合环状质粒(cccDNA)、开环质粒 (OCDNA)和线状质粒DNA (LDNA)。在凝胶电泳中的迁移速度不同。因此电泳后呈3条带,超螺旋质粒DNA泳动最快,其次为线状DNA,最慢的为开环质粒DNA。本次实验的结果中的三条带,也可推测为:超螺旋质粒DNA、线状DNA和开环质粒DNA。 2(细菌基因组DNA与质粒DNA分离注意事项 在加入细菌裂解液后,需要颠倒混匀,细菌环状基因组DNA在操作过程中会断裂成线状DNA分子。这时应当上下颠倒轻轻混匀,以避免产生小分子量的基因组DNA片断,最后污染提取的质粒DNA。 3(溴酚蓝指示剂 上样缓冲液中含有溴酚蓝(Bromophenol blue,别名四 溴苯酚磺酞,最大吸收波长422nm),以0.25%溴酚蓝作为电泳 指示剂。溴酚蓝结构式如右图,分子式CHBrOS,分子191045 量669.96,氨基酸的平均分子量110 Da,每对核苷酸的平均 分子量是659Da,电泳时溴酚蓝会跑在前面,在到达凝胶底 部3/4位置时,即可停止电泳,进行结果观察。 3 4
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