null 药物的量效曲线
及pD2、pA2的求算(一) 药物的量效曲线
及pD2、pA2的求算(一)
实验目的 实验目的掌握用温血动物离体器官求药物的量效曲线的实验方法。
观察乙酰胆碱(Ach)和阿托品(Atropine)
的竞争性拮抗作用。
3. 加深对受体学说中亲和力、内在活性概念的理解及掌握KD、Emax、pD2、pA2的概念及求算法。
nullKD值:50%受体与药物结合时的药物浓度。
示药物与受体的亲和力。 KD越大,药物与受体亲和力越小。
EMAX:药物的最大效应。增加剂量或浓度,效应不再继续增强。体现药物的内在活性。
效价强度(potency)能引起等效反应的相对浓度或剂量。
pD2、pA2的概念?pD2、pA2的概念?pD2:受体激动剂的受体亲和力指数,即受体激动剂引起最大效应的50%时所需剂量的摩尔浓度的负对数。
pA2:竞争性受体拮抗剂的拮抗指数,即用加倍浓度的受体激动剂,只引起原浓度的反应水平,这时所用拮抗剂的摩尔浓度的负对数。null作用于受体的药物与受体结合产生效应不仅要有亲和力,而且还要内在活性。
内在活性决定药物与受体结合时产生效应大小的性质。当两药内在活性相等时,其效价强度取决于亲和力的大小 当两药亲和力相等时,
其效价强度取决于内在活性的强弱 0≤α≤1原理原理 乙酰胆碱(Ach):M受体激动剂 肠平滑肌收缩。
S型累加剂量效应曲线(Cumulative dose response curve, CDRC)。
阿托品(Atropine)为M受体拮抗剂 肠平滑肌松弛 曲线平行右移null本实验课分两次进行。
第一次课
药物的量效曲线实验 第一次课
药物的量效曲线实验方法:
本实验主要观察兔肠平滑肌的收缩情况:
通过张力传感器, 利用与计算机相连
接的BL-420生物机能实验系统, 观察、
记录给阿托品前后Ach的量效曲线, 测量
给阿托品前后Ach的肌张力(g), 并打
印出来。
实验步骤 实验步骤一、微机准备:
1. 开机, 打开“BL-420生物机能实验系 统” 开关,
将张力换能器的五心插口连接于1通(CH1),
启动“BL-420”。
2. 单击“设置”——“实验人员”, 输入组号、名
单, “确定”。
3. 单击“文件”——“打开配置”, 在弹出的“自定
义模块选择”对话框中选“量效曲线”,“确定”。
4. 双击“1通道”, 窗口变大后, 鼠标指左侧坐标零
刻度, 将零基线移至屏幕下1/3处。
null二、固定肠肌:
1. 用自来水冲洗麦氏液槽和贮液瓶三次后, 加入
台氏液,麦氏液槽加入台氏液40ml, 在恒温液槽
中加入自来水适量。
2. 打开恒温平滑肌槽开关, 设定温度 38±0.5 ºC ,
调节麦氏液槽氧气适量。
3. 取温台氏液约10ml于培养皿中, 用小镊子取
一肠段于培养皿中, 两端夹上蛙心夹, 一端连
接于肌条固定夹于底部,另一端连接于张力
换能器的旋臂。
4. 冲洗肠肌三次, 稳定10分钟。
nullnull三、Ach量效曲线的制作三、Ach量效曲线的制作1. 单击工具栏“▲”, 记录肠肌收缩曲线约2cm。
2. 单击右下角的“L”, 打开特殊实验标记编辑对话框, 在 “实验标记组列表” 中选 “量效曲线实验”
在“标记方式”中选 “箭头”, 在“标记文字显示方向”中选“水平”, “确定”。
3. 制作给Atropine前Ach的量效曲线,给药按表( Ach -9 ~ -3), 应注意给药时机并及时添加每个药物浓度的标记(可在右下角“实验标记项”下拉表中找到 )。
Ach给药次序 Ach给药次序null4. 曲线完成,点击工具栏“ ”暂停后,立
即在10分钟内冲洗肠肌三次,然后加入 10-6 M Atropine 0.4 ml,温液15分钟
5. 肠肌温浴完毕,再以同法制作在Atropin存在下的Ach量效曲线, 具体操作同上。null6. 结束实验,点击工具栏“■”,在对话盒中输入文件名、保存。
7. 调出保存文件,在工具栏点击“区间测量”按钮(绿色),测量给Atropine前后Ach量效曲线各浓度的肌张力(g),(显示在右上角),记录下来,填在实验
上。
8、复制图形(必要时剪辑)并打印出来。注意事项:注意事项:
1、勿过度牵拉肠管。
2、加药时勿滴在线及管壁上,应将药
液直接滴在液面上。
3、加药时要及时、准确。
4、离体空肠标本与换能器的连线不要
触及浴管壁。null