中国急救复苏与灾害医学杂志 2008年2月第3卷第2期
肿瘤在其发生发展过程中可分为两个阶段,当肿
瘤体积小于1mm3时,主要依靠渗透获得营养,即血管
前期(prevascularphase),为无血管生长期;当肿瘤体积
大于1mm3时,主要依靠血管生成获得营养,即血管期
(vascularphase)。肿瘤血管生成是肿瘤生长、侵袭和转
移的的重要条件[1],是肿瘤学的研究热点。长期以来,肿
瘤血管生成一直被认为是无血管的肿瘤组织刺激邻近
宿主血管床新生来为自身供血。然而,近年来关于肿瘤
血管生成的机制,又有了新的发现:来自骨髓的成血管
细胞形成血管生发中心;共选择作用;血管生成拟态;
马赛克血管。这些肿瘤血管化的方式可能共存于某一
肿瘤中,也可能只存在于特定的肿瘤或宿主环境中,最
终形成新的血管,为肿瘤的生长提供营养。本文就肿瘤
血管形成方式及其分子机制作一综述。
1971年Folkman提出肿瘤需在可扩散化学信号调
节下促进血管形成以满足自身生长的需要[2]。最初描述
血管生成的机制是出芽式血管生成 (sproutingangio-
genesis):肿瘤血管生成时,在血管生成因子和细胞因
子的刺激作用下,处于静息状态的血管内皮细胞降解
基底膜,侵入细胞外基质,形成条索并增生,最后形成
新的毛细血管状结构。这个过程中最重要的因子是血
管内皮细胞生长因子(vascularendothegrowthfactor,
VEGFs),特别是VEGF-A。VEGF-A可使邻近的毛细
血管舒张,通透性增加,血浆蛋白特别是纤维蛋白原从
血管中渗出,辅助内皮细胞迁移并形成管状结构;
VEGF-A还可诱导内皮细胞增殖,增加金属蛋白酶和
纤溶酶原的活性,降解细胞外基质以利于内皮细胞迁移[3-5]。
不同于出芽式生长的另一种血管生成方式是套入
式血管生成(intussusceptiveangiogenesis),即通过间
质柱状结构插入已有血管的内腔,导致原有血管腔的
分割和新生血管的形成。1986年Caduff等首次在新生
幼鼠肺毛细血管床内观察到套入式血管生成,后来证
实其也存在于多数器官形成、组织修复、肿瘤血管形成
过程。在鸡胚尿囊膜肿瘤模型中,一侧的膜可以和对侧
的膜形成连接,由纤维母细胞和血管旁细胞组成的间
充质细胞将两个血管隔开。形成的两个血管间有胶原
或纤维蛋白等细胞外基质聚集。套叠式血管生长相对
于出芽生长更快更经济,内皮细胞不需要增生,只需要
容积变大,变长变薄。这种机制广泛存在,大多数肿瘤
通过这种方式快速形成血管[6,7],也可见于组织形成分
支和再塑形[6]。
套入式血管生成的分子机制目前并不清楚,但是
切应力和血流速度增加起着重要作用。切应力可以被
内皮细胞感受并且由血小板内皮细胞黏附分子-1
(plateletendotheliam cellularadhesion molecule-1,
PECAM-1)传导到细胞内部,使转化生长因子 β1
(transforminggrowthfactor-β1,TGF-β1)、内皮型一氧
化氮合酶(endothelialnitricoxidesynthase,eNOS)和黏
附分子的表达增加。在鸡胚尿囊膜中,PDGF-β促进套
入式血管生成,而抗PDGF-β抗体抑制该种血管生成
和血管旁细胞聚集。促红细胞生成素也是通过该种血
管生成在鸡胚尿囊膜中促进内皮细胞的增殖,转移和血管
生成的[8]。
在胚胎发育过程中,在卵黄囊,脏胸膜等不同部位
都可以找到造血细胞和内皮细胞的共同前体-成血管
细胞。VEGFR2阳性前体细胞在获得CD34,CD133和
VE-cadherin后形成成血管细胞,成血管细胞又可分化
为内皮细胞。在成人组织中,成血管细胞是由多能干细
胞分化而来,在VEGF-A的刺激下,多能干细胞可以在
体外分化为内皮细胞,也可以分化为间充质干细胞,后
者可分化为血管旁细胞,脂肪细胞,肌原细胞和软骨细胞[9,10]。
成血管细胞形成血管生成中心是指肿瘤组织分泌
2 成血管细胞形成血管生成中心
1 血管生成
基金项目:武警医学院院级课题资助(WY2005-4)
作者单位:300162 天津,中国人民武装警察部队医学院病理学教
研室
作者简介:刘燕青,硕士,讲师,主要研究方向为肿瘤病理学
·综 述·
肿瘤血管生成的分子机制
刘燕青 齐丽莎 刘亚敏
【中图分类号】 R730.23 【文献标识码】 A 【文章编号】 1673-6966(2008)02-0117-04
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的促血管生成因子动员骨髓中的循环内皮前体细胞
(circulatingendothelialprecursors,CEPs),并且引导他
们到达肿瘤局部直接参与肿瘤血管的形成。CEPs是在
VEGF-A和/或Ang-1的作用下被激活和聚集的,后
二者的区别是 Ang-1的作用相对微弱但作用持久。
CEPs在循环中聚集也依赖于金属蛋白酶-9(matrix
metalloproteinases,MMP-9)诱导的可溶性配体的释
放,它可以使内皮细胞增殖,迁移,还可以促进CEPs进
入外周血液循环[11,12]。CEPs在肿瘤血管生成中的重要
性已经在Id蛋白突变鼠中得到证实[13]。Id1+/-Id3+/-的双
突变鼠发育过程中,VEGF-A诱导的CEPs迁移与增殖
受到损害,继而导致血管形成障碍并抑制肿瘤演进。在
致死量照射的Id1+/-Id3-/-并且由野生型CEPs重组的小
鼠中,肿瘤的生长情况和对照组一样。大部分的内皮细
胞都是Id3+。而且在野生型小鼠中,CEPs聚集于肿瘤
血管的作用可以完全被抗VEGF-2而不是VEGF-1的
抗体抑制。但是,VEGF-1阳性的造血干细胞和祖细胞
可以聚集到肿瘤血管并且参与CEPs合并入内皮组织[13]。
CEPs聚集于肿瘤血管的范围取决于肿瘤种类,移植于
小鼠皮下的淋巴瘤中占90%,而神经母细胞瘤中只占
5%[12,14]。另外CEPs的聚集对肿瘤的转移也必不可少:
在淋巴瘤中,第二天时,大部分的肿瘤血管是由CEPs
分化来的,而在第十四天只有 50%的肿瘤血管是由
CEPs分化来的[13]。对肿瘤血管来说,CEPs可能是非常
有效的携带血管生成抑制因子的工具,把携带VEG-
FR2和GFP的逆转录病毒的CEPs导入小鼠,在这些
小鼠中,神经母细胞瘤的生长速度明显减慢,这证明了
CEPs可以用于抗血管形成治疗[14]。来自于小鼠胚泡内
细胞群的胚胎干细胞可以替代CEPs传递抗血管生成
分子[15]。
发生于脑和肺等高度血管化组织中的许多肿瘤可
以通过另一种机制血管化,Holash等[16]把其命名为共
选择作用。在早期阶段,脑肿瘤高度血管化,血管和正
常血管有相似的表型。肿瘤细胞围绕在血管周围,并没
有出现出芽式生长。这就可以解释为什么早期通过核
磁共振成像很难发现神经胶质瘤[17]。被包绕的内皮细
胞合成Ang2和它的受体Tie2。Ang2结合Tie2,抑制
Ang1的活性,诱导血管旁细胞从内皮细胞上分离,增
加内皮细胞的凋亡。Ang2的活化导致肿瘤血管数量的
大规模减少和血管直径的增大。血管的减少导致缺氧,
这又会上调肿瘤细胞VEGF-A的表达。结果,在肿瘤
的周围就会有显著的血管生成[16,17]。在肿瘤中心,肿瘤
细胞以套袖状围绕着残存的血管。
共选择作用依赖于肿瘤发生的位置。例如,鼠的乳
腺癌细胞只有在注入脑组织后才以共选择的方式血管
化,分别转移到肺和脑的Lewis肺癌和黑色素瘤只有
部分以共选择方式血管化[16,18]。
另一些人有提出了一种与上述的机制相反的脑肿
瘤血管形成机制。肿瘤细胞或是注入脑的以出芽的方
式立即生成缺少血脑屏障的血管。内皮细胞上的Ang2
和VEGFR2都有所增加,但并没有发现血管退化[24]。肿
瘤细胞和新生的内皮细胞以套袖排列的方式围绕在
VEGFR2阳性的血管周围并且以VEGFR2侵犯其他脑
组织。肿瘤细胞结合在富含层粘连蛋白、胶原4、粘蛋
白的膜上以利于转移[19,20]。
大部分的抗肿瘤血管生成分子很难杀灭这些套袖
排列的肿瘤细胞[20,21]。只有非常强效的抗肿瘤血管形成
分子,如能够完全抑制血管退行的高剂量的 VEGF-
Trap,才能杀死这些肿瘤细胞套袖[22]。
有假说认为,肿瘤细胞可以定位于肿瘤血管壁上[23]。
这些细胞可以通过活化自然杀伤(NK)细胞来穿入肿
瘤内部。最近,Chang等[24]更详尽的描述了这种机制并
把它命名为马赛克血管。通过使用转染了GFP的肿瘤
细胞证实结肠肉瘤的异位(卵巢蒂)或常位(盲肠)的移
植物中,15%的血管都是马赛克血管,占全部血管表面
积的4%。这些血管都是有功能的,因为他们可以灌流
入荧光凝集素。马赛克血管的肿瘤细胞要穿透管腔并
暂时留在血管壁上。能够活化MMP-2的促肿瘤血管
生成因子,如FGF-2或VAGF-A可以促进血管基底膜
的降解利于肿瘤细胞的穿入以增加马赛克血管的
数量[24,25]。
1999年美国Iowa’s大学的Maniotis等[26]研究人眼
葡萄膜的黑色素瘤微循环时发现了一种与经典的肿瘤
血管生成途径完全不同的、不依赖内皮细胞的全新的
肿瘤血管生成模式。Maniotis等认为在葡萄膜黑色素瘤
中,黑色素瘤细胞通过自身变形并与细胞外基质相互
作用模仿血管壁结构形成可输送血液的管道系统,从
而重建肿瘤的微循环,并在某个环节与宿主血管相连
使肿瘤获得血液供应,并将这个过程命名为血管生成
拟态(vasculogenicmimicry,VM)。该血管管道的特点是
管道内没有血管内皮细胞衬覆,肿瘤细胞模仿机体血
管生成而形成瘤细胞条索并围成管道,而血液则在这
3 共选择作用
4 马赛克血管
5 血管生成拟态
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无内皮细胞的管道中流动。该管道外周是一层厚薄不
一的PAS阳性物质构成的基底膜[27]。这些PAS阳性管
道与周边的正常血管联系紧密,且部分管道呈vWF、
CD34和VEGFR-2等内皮细胞标记物染色阳性。在透
射电镜下,可见血管通道由内衬的薄层基板构成血管
壁,但没有内皮细胞。基板上可见侵袭性强和失去分化
能力的肿瘤细胞,管腔里面可观察到红细胞。只有侵袭
性强的肿瘤细胞才能表达内皮细胞受体或促血管生成
因子,而且内皮细胞标记物的特异性表达是否阳性要
视肿瘤类型而定。
形成VM的高度恶性的黑色素瘤分化程度低,其
基因表达呈现一种多能性、胚胎样的表型。Bittner等用
cDNA微阵列研究6000个基因在高度和低度恶性的
黑色素瘤细胞中的差异表达,结果显示高度恶性的黑
色素瘤细胞上调表达许多内皮细胞、上皮细胞、外周细
胞、纤维母细胞、造血细胞、肾、神经、肌肉和其他细胞
祖细胞表型有关的基因,其中有些基因如 TIE1和
CD34等与胚胎干细胞有关。相反,除黑色素瘤细胞黏
附分子(melanomacelladhesionmolecule,MCAM)外,其
他黑色素瘤细胞特异性标志基因则下调表达。如黑色
素瘤表面抗原MLANA基因表达下调22倍,与黑色素
细胞分化相关的酪氨酸激酶的活化基因MITF表达下
调34倍,编码酪氨酸酶(tyrosinase,TYR)和酪氨酸酶相
关蛋白1(tyrosinase-relatedprotein-1,TYRP1)基因表达
也分别下调37和100倍[28]。
VE-钙黏蛋白是一种介导细胞与细胞间互相黏附
的Ca2+依赖性跨膜蛋白,现认为高度恶性黑色素瘤细
胞也表达VE-钙黏蛋白,并在VM中也起到非常重要
作用[29]。PI3-K主要结构包括调节亚单位P85和水解亚
单位Pll0,抑制其活性能够可逆地抑制黑色素瘤VM
管道样结构形成。此酶的激活能活化大量下游效应分
子,是VM形成中不可缺少的枢纽性信号分子。活化的
PI3-K催化 4,5-二磷酸肌醇 (PIP2)磷酸化形成
3,4,5-三磷酸肌醇(PlP3)从而发挥激活细胞信号转导
的作用。PI3-K通路可以激活膜I型基质金属蛋白酶
(MT1-MMP)的活性,活化的MT1-MMP与基质金属蛋
白酶2的前体(pro-MMP2)和TIMP2形成复合体后水
解pro-MMP2形成有活性的MMP2。
研究表明除恶性黑色素瘤外,在炎性乳癌、卵巢
癌、肝癌、前列腺癌、黑色素瘤、横纹肌肉瘤、滑膜肉瘤、
间皮肉瘤、骨肉瘤组织中均发现了VM的存在[30-34]。
随着对肿瘤血管生成研究的深入,逐步认识到肿
瘤血管生成的机制尚有许多未知领域。根据肿瘤血管
形成的不同方式,设计出针对不同靶点的药物是今后
抗肿瘤血管生成研究的方向。
[1] CarmelietP,JainRK.Angiogenesisincancerandother
diseases.Nature,2000,407(6801):249-257.
[2] FolkmanJ.Tumorangiogenesis:therapeuticimplicatio-
tions.NEnglJMed,1971(21);285:1182-1186.
[3] VuTH,ShipleyJM,BergersG,etal.MMP-9/gelatinase
Bisakeyregulatorofgrowthplateangiogenesisand
apoptosis of hypertrophic chondrocytes.Cell,1998;
93(3):411–422.
[4] PepperMS,FerraraN,OrciL,etal.Vascularendothel-
ialgrowthfactor(VEGF)inducesplasminogenactivato-
rsandplasminogenactivatorinhibitor-1inmicrovasc-
ularendothelialcells.BiochemBiophysResCommun,1991,
181(2):902–906.
[5] BergersG,BrekkenR,McMahonG,etal.Matrixmetall-
oproteinase-9triggerstheangiogenicswitchduringc-
arcinogenesis.NatCellBiol,2000;2(10):737–744.
[6] DjonovV,AndresAC,ZiemieckiA.Vascularremodelling
duringthenormalandmalignantlifecycleofthemam-
marygland.MicroscResTech,2001;52(2):182–189.
[7] PatanS,MunnLL,JainRK.Intussusceptivemicrovascu-
largrowthinahumancolonadenocarcinomaxenograft:
anovelmechanismoftumor angiogenesis.Microvasc
Res,1996;51(2):260–272.
[8] CrivellatoE,NicoB,VaccaA,etal.Recombinanthum-
anerythro-poietininducesintussusceptivemicrovasc-
ulargrowthinvivo.Leukemia,2004;18:331–336.
[9] MooreMA.Puttingtheneointoneoangiogenesis.JClin
Invest,2002;109(3):313–315.
[10] ReyesM,DudekA,JahagirdarB,etal.Originofendo-
thelialprogenitorsinhumanpostnatalbonemarrow.J
ClinInvest,2002;109(3):337–346.
[11] RabbanySY,HeissigB,HattoriK,etal.Molecularpa-
thwaysregulatingmobilizationofmarrow-derivedstemc-
ellsfortissuerevascularization.TrendsMolMed,2003,
9(3):109–117.
[12] RafiiS,HeissigB,HattoriK.Efficientmobilization
andrecruitmentofmarrow-derivedendothelialandhe-
matopoieticstemcellsbyadenoviralvectorsexpressing
pressingangiogenicfactors.GeneTher,2002;9(10):631–641.
[13] LydenD,HattoriK,DiasS,etal.Impairedrecruitme-
ntofbonemarrow-derivedendothelialandhematopoieti-
cprecursorcellsblockstumorangiogenesisandgrowth.
NatMed,2001;7(11):1194–1201.
[14] DavidoffAM,NgCY,BrownP,etal.Bonemarrow-deriv-
edcellscontributetotumorneovasculatureand,whenm-
odifiedtoexpressanangiogenesisinhibitor,canrest-
rict tumor growthinmice.ClinCancerRes,2001,7
(9):2870-2879.
[15] MarchettiS,GimondC,IljinK,etal.Endothelialce-
llsgeneticallyselectedfromdifferentiatingmousee-
mbryonicstemcellsincorporateatsitesofneovascul-
arizationinvivo.JCellSci,2002;115(Pt10):2075–2085.
参考文献
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CHINAJOURNALOFEMERGENCYRESUSCITATIONANDDISASTERMEDICINEFebruary2008,Vol3,No.2
·读者·作者·编者·
本刊对统计学检验结果表达
的要求
根据人民卫生出版社出版的全国高等学校教材《卫生统计学》第5版,报告统计学检验的结论时,对P值小于或等于检验水准(一
般为0.05)的情况下一律描述为“差异有统计学意义”,同时写明P的具体数值或相应的不等式,不再采用将P<0.05描述为“差异有
显著意义”或“差异有显著性”,将P<0.01描述为“差异有非常显著意义”或“差异有非常显著性”。在一般情况下本刊选用P>0.05、
P<0.05和P<0.01三种方式即可满足需要,无须再细分为P<0.001或P<0.0001或P=0.0000。
编辑部
[16] HolashJ,MaisonpierrePC,ComptonD,etal.Vesselc-
ooption,regression,andgrowthintumorsmediatedby
angiopoietinsandVEGF.Science,1999;284(5422):1994–
1998.
[17] LeendersWP,KustersB,deWaalRM.Vesselco-option:
howtumorsobtainbloodsupplyintheabsenceofsprou-
tingangiogenesis.Endothelium,2002;9(2):83–87.
[18] KustersB,LeendersWP,WesselingP,etal.Vasculare-
ndothelialgrowthfactor-A(165)inducesprogression
ofmelanomabrainmetastaseswithoutinductionofspr-
outingangiogenesis.CancerRes,2002;62(2):341–345.
[19] VajkoczyP,FarhadiM,GaumannA,etal.Microtumor
growthinitiatesangiogenicsproutingwithsimultaneou-
sexpressionofVEGF,VEGFreceptor-2,andangiopoiet-
in-2.JClinInvest,2002;109(6):777–785.
[20] KunkelP,UlbrichtU,BohlenP,etal.Inhibitionof
gliomaangiogenesisandgrowthinvivobysystemictr-
eatmentwithamonoclonalantibodyagainstvasculare-
ndothelial growth factor receptor-2. Cancer Res,
2001,61(18):6624–6628.
[21] RubensteinJL,KimJ,OzawaT,etal.Anti-VEGFantib-
odytreatmentofglioblastomaprolongssurvivalbutr-
esultsinincreasedvascularcooption.Neoplasia,2000,
2(4):306–314.
[22] KimES,SerurA,HuangJ,etal.PotentVEGFblockade
causesregressionofcooptedvesselsinamodelofneu-
roblastoma.ProcNatlAcadSciUSA,2002;99(17):11399–
11404.
[23] PrauseJU,JensenOA.Scanningelectronmicroscopyof
frozencracked,dry-crackedandenzyme-digestedtissue
ofhumanmalignantchoroidalmelanomas.AlbrechtVon
GraefesArchKlinExpOphthalmol,1980;212(3-4):217–
225.
[24] ChangYS,di Tomaso E,McDonaldDM,etal.Mosaic
bloodvesselsintumors:frequencyofcancercellsin
contactwithflowingblood.ProcNatlAcadSciUSA,
2000;97(26):14608–14613.
[25] FolkmanJ.Canmosaictumorvesselsfacilitatemolecu-
lardiagnosisofcancer?ProcNatlAcadSciUSA,2001,98
(2):398–400.
[26] ManiotisAJ,FolbergR,HessA,etal.Vascularchann-
elformationbyhumanmelanomacellsinvivoandinv-
itro:vasculogenicmimicry.AmJPathol,1999(3);155:739
–752.
[27] HendrixMJ,SeftorEA,HessAR,etal.Molecularplas-
ticityofhumanmelanomacells.Oncogene,2003;22(20):
3070–3075.
[28] BittnerM,MeltzerP,ChenY,etal.Molecularclassi-
ficationofcutaneousmalignantmelanomabygeneexpr-
essionprofiling.Nature,2000;406(6795):536–540.
[29] HendrixMJ,SeftorEA,MeltzerPS,etal.Expressiona-
ndfunctionalsignificanceofVE-cadherininaggressi-
vehumanmelanomacells:roleinvasculogenicmimicry.P-
rocNatlAcadSciUSA,2001;98(14):8018–8023.
[30] PassalidouE,TrivellaM,SinghN,etal.Vascularph-
enotypeinangiogenicandnon-angiogeniclungnon-small
cellcarcinomas.BrJCancer,2002(2);86:244–249.
[31] SharmaN,SeftorRE,SeftorEA,etal.Prostatictumor
cellplasticityinvolvescooperativeinteractionsofd-
istinctphenotypicsubpopulations:roleinvasculogen-
icmimicry.Prostate,2002;50(3):189–201.
[32] SoodAK,SeftorEA,FletcherMS,etal.Moleculardet
terminantsofovariancancerplasticity.AmJPathol,
2001;158(4):1279–1288.
[33] ShirakawaK,FuruhataS,WatanabeI,etal.Induction
ofvasculogenesisinbreastcancermodels.BrJCancer,
2002;87(12):1454–1461.
[34] ShirakawaK,WakasugiH,HeikeY,etal.Vasculogenic
mimicryandpseudo-comedoformationinbreastcancer.
IntJCancer,2002;99(6):821–828.
(收稿日期:2007-12-28)
120· ·