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蝴蝶兰的快速无性繁殖

2011-02-12 5页 pdf 173KB 69阅读

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蝴蝶兰的快速无性繁殖 第 1 6卷 19R9 1蛳 0 园 艺 学 报 AfirA HORTICULTURAE SINICA 蝴蝶兰的快速无性繁殖 王怀宇 (r末省农业科学院花卉研究所 ) 提 要 Vo】.16. No.1 Feb. . 1 0 89 以蝴蝶兰(Phalaenopsis)的花梗侧芽及花序顶端为外植体,在Kyoto或MS +BA 3ppm培养基中诱导出营养芽。以试管植株的茎尖、茎段、叶片在MS 4-BA 0.5~5ppm或Ms+BAO.5--5ppra4-NAA1ppm的培养基中,诱导出不...
蝴蝶兰的快速无性繁殖
第 1 6卷 19R9 1蛳 0 园 艺 学 报 AfirA HORTICULTURAE SINICA 蝴蝶兰的快速无性繁殖 王怀宇 (r末省农业科学院花卉研究所 ) 提 要 Vo】.16. No.1 Feb. . 1 0 89 以蝴蝶兰(Phalaenopsis)的花梗侧芽及花序顶端为外植体,在Kyoto或MS +BA 3ppm培养基中诱导出营养芽。以试管植株的茎尖、茎段、叶片在MS 4-BA 0.5~5ppm或Ms+BAO.5--5ppra4-NAA1ppm的培养基中,诱导出不定芽或 原球茎状体 (Protoeorm~Like--Body,PLB.) 在附加BA54-NAAl的培养 基里,茎段不定芽诱导率为 65 ,叶片PLB诱导率为16.7%,用MS+BA1ppm 进行 LIj继代培养可获得大量 群体,进一步培养可形成完整小苗。 由蝴蝶兰花梗侧芽而来的白花无性系 品种 (Pha1. (phyllis key×band leader)×cetebration?巳大量出瓶秽栽。在广州地区,蝴蝶兰 出瓶苗种植 2 3 年即可开花。 蝴蝶兰形态美妙,色彩鲜丽,花期持久,在热带兰中,素有 “兰花皇后”的美称, 在花卉市场上,是一种商氆商品兰花。 蝴蝶兰量堕萎性气生兰,疆株上极少发育例枝,比其他种类的兰花更难于进行常规 无性繁殖。组织培养是建立蝴蝶兰快速繁殖无性系的重要手段。 在蝴蝶兰的无性繁殖方面,据报道1949年Rotor成功地在试管中培养出花梗苗。但 大量的应用研究是在六十年代以后,尤其是七十年代至八十年代(4--187。所选用外植体 材料有花梗倒芽、茎、叶片、根尖等。方法各异,难度各有高低。我国除台湾省的林金 其、林瑞松等也对蝴蝶兰的组织培养作了认真的研究外(1、z、11),其他地方尚未见有报道。 本研究 自1982年 5月开始,研究期问,曾进行了花梗例芽诱导营养芽 }不定芽增殖j 茎尖、茎段、叶片原球茎状体 (PLB)诱导}PLB增殖J完整植株培养等试验。 第一批来自不定芽的蝴蝶兰苗(Pha1.(.phyllis keyxband leader)×cFlebration? 于1983年3月出瓶,1985年抽第一次花穗。经1986、1987两年开花观察,认为该无性系 后代保持了原母株的优 良特性。 材 料 与 方 法 一 、 材料t 本文于1987年0月啦剜·1988年 4月收到参改穑。 ’1·本研究部~i.-r作是作者在广州市圈林科研所工作时完戚的。 2.球明晤。温桔辩,事琳掷参加了静分试瞳工作。叶撮华参加了试管苗的栽培工作.中国兰协理事藏 盎 惨先 生提供了扑植体材料。 3.车戈乖蒙广东省固艺学台理事昱绍彝先生,中国兰协特书忙何精碡先生审阍相正,在弗一并取坩。 维普资讯 http://www.cqvip.com 网 艺 学 报 16卷 蝴蝶兰杂交科-:Phal。(phytli,~key x band leader)×celebration(白花 ),Phal。 hy d(黄花 ),P Ⅱ^『.hyhrid(红花 ) =,外植体及消毒 剪取正在开花或开花后的花梗,剥除已开放的花朵及花莆,啊 漂粉精溶液 (1 5片/tOOm1)消毒2O一3O分钟,剥去苞叶,露出侧芽,再 消 毒 5分钟, 无擅水冲洗 5— 6次。 兰 接种和培养 将消毒后的花梗,切成 2~3 cm长的切段,每段带一侧 芽’花 序顶端则切成约 。6era长短,基部向下插于培养基上。培养室温度为25±l℃,光照度 ‘5001x,光照10h/d。 一 营养芽诱导培养基:A.Kyoto培养基。Hypoaex(7—6—19)花宝 1号 3 g,琼 脂 I2g,胰蛋白胨 2 g,水10们 I,蔗糖36g,PH=s.o一5。 13.MS+B'Agpprn。 四 试验程序 : 一 f一不定芽一增殖一长根一完整植株一出瓶 萎 L{三蓁叶萋)一P LB诱 一增殖一完整小苗一出瓶 花梗侧芽或花序顶端)I { 茎段f P LB诱导 增殖 完整小苗 出瓶 【一【一嫩叶片J 结 果 一 花梗侧芽和顶弗的诱导 本试验的目灼是使休眠的花梗侧芽和顶芽启动,形成营养芽,在试管内长成无菌植 栋,便于进一步利用。应黾A、B两种培养基作为营养芽诱导培养基,接种七天左右,侧 芽膨大并向外伸长,30天后长出小叶 50天左右可长出4~ 5片l咔。这时,花梗组织及 植株基部均变黑色,所分泌的代谢物质将培养基染成黑色。培养基上的植株虽然生长 良 好,但应尽快转移到新鲜培养基上。在A培养基上,例芽多长成单椿小苗。在B培养基 上,删芽可萌发废丛生芽 (图版一1)。花序顶端小芽的启动则比较慢,40—5。天后,才 见小叶伸出。 、 =、不定芽的诱导及增殖 将试管内植株切离花梗,将茎段横切为上、下两段,转入 附加BA或BA+NAA的 MS培养基中,约30天左右,小芽及茎段的基部膨大并长出不定芽,son左右幼芽 长 大, 可将幼芽切离,继续接种于培养基中增殖丛芽 (图版一2),周而复始,可 得较大数量 的丛生芽 在MS+BA3ppm培养基中,不定芽诱导率 为50 。在MS+BAs+NAAt培 养基中,诱导率达6 ( 1) 统计不定芽的年增殖率,铸果表明,以5O天为一周期, 每芽增殖芽数=3 42(x)±0。69(s)即每芽年增殖数上限为19810撑,下限为¨30蚌 (置信度a=o5% ) 三、原球蓥状体的诱导 维普资讯 http://www.cqvip.com 1粥 王怀字:瑚蝶兰的快建无性繁殖 7 5 茎尖诱导原球茎状体,在双目解剖镜下剥取试管植株的茎 。取下的茎尖直径约 0. m,接种 {:Ms+DA3ppm培养基上,在光照条件下培养,l4天后观察, 肉限可见 茎尖膨大,呈浅绿色半球状,直径约1.5mm。三个碍后,长成的桑果状原球茎状体组织 块直径约 6 mm(匿版一3)。 阁IJ【‘片和茎段诱 导原球茎状体,将试管植株的嫩叶片整块或横切成上、 中, 下 三 段}同样,将试管植株的茎段整株或横切成上 、中、下三段,分别接种在培养基上。基 本培养基为Ms,附加不同浓度的BA稠NAA。接种后20天,可见叶片弯曲,近离 培 养 基的切口出现愈仿组 织微粒,而接触培养基的切口则分泌出黑色代谢物质,但I~-,q‘仍保 持绿色,几乎维持 5— 6个月才逐渐褐化 (此现象与林金其c:)在花梗节闯切片 培 养 中 所观察的情况相似 )。只有极个别的嫩叶片基部或断裂I=I呈现凹凸不平,逐渐出现愈伤 组织状的早期原球茎状体 (图版一4)。茎切段的培养情况与上述情况相似,但愈伤组织 多在接近培养基处或深埋培养基处出现。接种90天后调查,143个叶片外植体中只有9个 外植体出现愿球茎状体,总诱导率为6.3 。l6o个茎段外植休中,有14个出现原球 茎 状 体,总诱导率为8.8 ,但有37个茎段出现不定芽,不定芽的总诱导率为23 。附加不 同激素对茎段和叶片原球茎状体和不定芽诱导率曲影响 (袁 1)。 表 1 附加不同激素对蝴蝶兰茎段 和叶片原球茎状体和不定芽诱导率的影响 \ 纬 茎 橱 曼 叶片 \ \ PLB 丛生芽 一PL.B 附加璇隶 \ 移 成 数 一 诱 导 章 戚 / 诱 导 率 虚 / 博导率 (mgl1) \ ,一 植体数 /// 擅体 外植体 盐 BAo.5 O,21 0 o12l 0 0,l8 0 BAl O,1 5 0 2,I 5 1 3.3 l,1 8 5.5 BAs 3,22 1 3·B Ii,22 50.0 2,I 6 l2·5 BA5 3,I8 I6.T 3,I8 1 6.7 1,2O 5·0 BAo.5+M A1 4,20 20·0 1,20 5.0 0,1 9 0 BA1+NAAl II14 7.1 O,14 ’ 0 I,26 3.8 BAs+MAA1 213o 6·7 7,3O 2 3.3 1,8 l2·5 BAs+N从 1 I12o 6·0 l I3,柏 65.0 s/I8 l I6· 四,原球茎状体的增殖 早期原球茎状体外观像愈伤组织,表面球状物不明显。继续培养,可见表面突起一: 个千圆球,部分表面细胞分化出根毛状物。如果不切割原球茎状体,让它们在不含或只 含低浓度细胞激动素的培养基里继续生长,6O天后陆续长出芽,成为完整的原球茎。100 天后,大部分已长成有 2— 3片叶的小苗。为达到大量繁殖韵目的,必须加快原球茎增 殖速度。在原球茎状体阶段进行增殖是最理想的,原球茎状体形成君,在无苗条件下取 出切成小块,转移到MS+BA1ppm培养基中继代培养。在切块细小,稀疏的培养瓶内, 群体生长较慢,而在切块较大且密集的培养瓶里,群体生长十分旺盛,表现出—定的群 体生长效应 (图版 5) 维普资讯 http://www.cqvip.com 园 艺 学 报 “·卷 不同培养基对小苗长根的影响 表 2 不同培养基对蝴蝶兰苗长根的影响 以丛生芽增殖方式研得小苗是无根的, 须转长根培养基 }毛根培养基用花梗侧芽诱 导,kyoto培养基和MSm加生长素培养基作 比较,蹦kyoto培养基较好。结果见表2。在 kyoto培养基中, 无根苗培养 4周后长根率 为82.61%,l0周后长根率为95.65%,根粗 壮肥大,出瓶成活率很高(图版一s)。 六、试瞥苗的出瓶移栽及开花情况 在广州地 ,蝴蝶兰的试管苗出瓶移栽可在 3--1 0月进行,以4— 6月出瓶效果虽 好。出瓶时,甩清水将附在小苗根上的培养基洗净,然后移植在干净的水苔或椰糠上, 放置阴凉湿润通风处,一个月后,开始喷施液肥 待小苗新叶长出时,移植到 小 盆 或 蕨板上:出瓶后的楦株一般两年即可Jf花 该无性系花色洁白,花型丰满,花期持久, 每杖花花期均长达60天以上 。花径约 8 Cm。 第二年和第三年开花 枝 每 枝 有 5— 7朵 花,随着植株的年龄增长,每枝花的朵数增多。该无性系后代保持了原母株的 优 良特 性。 (图版~7、8) 讨 论 一 、 蝴蝶兰是 茎性气生兰,适于以花梗作为外植 沐建立快速繁殖无性系。其优点 是不损母株,开花后取材,对母抹曲整体情况得以了鲟。特别是从外地弓I入的新品种, 可以待植株开花后,确定其观赏价值后再进行大量繁殖。 二、蝴蝶兰花轴基部的芽往往l为休眠芽,花序顶端则含有未完全分化的花原始侔, 本试验使休眠芽启动,使顶端向营养芽转化,均未通过脱分化过程形成愈伤组织,之后 如采用丛生芽方式增殖,尽管增殖系数较低,但对减少变异,保持母株特性是有利的。 三、花轴基部的休眠芽有两种发育可能,一是长成幼小植株,二是长成花枝。花梗 删芽的分化方向受翎芽的发育程度、温度、激素等诸因素影响。低温有可能导致体眠芽 向花芽分化 作者在1988年 2、 3月接种的--}it花梗侧芽,受较低温度影响(1 5—22 oC), 结泉太部分发育成花芽 将这些花芽继续培养35天,待花梗长度约 2.5—3.5cin时,将 其切成段,在较高的温度下 (23--26~C)继续培养,结果,新花梗上的节问侧芽又长成 了营养芽 田中道男等的研究表明[ 9),当培养温度为28℃时,花梗侧芽向营养芽分化, 在20~C的低温下,则多数伸长成为花芽。附加细胞激动素 6 BA,有利于 花 梗 侧 芽 萌 发,向丛生芽方向发展。以花梗侧芽为外植体建立无性系目的在于取得营养植株,建议培 养条件采用温度25—28℃,光照15001x,并在培养 基 中 附加1—3ppm的BA。 四、目前开花的植株均为确 基芽苗,因而变异不大。山叶片和茎段脱分化产生愈伤 组织形成原球茎状体途径而来的植株仍有待观察。 五、研究表明,不定芽增殖、原球茎状体诱导和增殖与激素的种类、浓度有关。在 对其他蝴蝶兰品种的试验中观察到,不同品种,或同一品种不同部位,对培养基及培养 条件也有不同的反应。 维普资讯 http://www.cqvip.com 1删 王怀宇:瑚蠊兰的快建壳性繁殖 参 考 文 献 [1]林瑞 梧 , 98’, 中华 应业 研究。 00(2 ): 1 4t~ 1 45。 ’ [2]林 台 , 1 095,q’『日园艺 。31(2 ):84— 9 3。 [3]加 古舜 冶, 1 978, 囝芸植 物0器 官上组 织0 培养,21 6一 2t。 [ ] g 部庆 俊 ,1 981,7 , 只 0 组织 培养 新花卉 》 110,40~4 。 [5)田 f一道男,长备川嘻 ·五井正宪,1 7 5,单 茎性j./科植物0组辍培养拉土西荣养簸 殖 蔺寸西研究t第 1撤 )(J.Japan Soe.Hot}.Sc!.)44( 1):47—58。 (6]田 p造男,壤西又洋 ,t 97 5,Ph缸 nops 0 花茎培嚣忙{5仲 壹芽0凳育忙轺占; 辐温度0影响, 阪府 收 学部 3 68。 [7]Am;tti A.,E.A.Ba!lang,M.Reis{nger, I 97 7,Amet.Orchid Soc.Bul1.46—2 36—240. [8]Tana a, d Y.3akan hi,I 97 7,Amer.or Id.s .B~ti.46=7 3 3 7 3 .。. ‘ ’ [9]Tanaka M .aJtd Y.SakaMsh, 1 9 T8,Sc1.Hort.8:1 69·1 7 B. [t0]Pieper W .and K.Zimmer, 1 97fi,Aeta Hort.64:21—23 . [t1]Chin—chi Lin, l 98 T,Liadleyaaa 2 (1)l 58一B5. RAPID cLONAL PROPAGATION OF I~HALAEN .OPiis BY hssuE c'ULTURE W ang Hualyi“ (The Floricultural Research Institute oi Guangdong Academy o,Agricultural Science, Guangzhou) A bstra ct Rapid clonal propagation of Phaloenopsis in vitro \WaS studied.The vegetati e buds were induced from lateral buds and the apices of Pholaenop; sis flower Stalks in &yoto or his 3ppm BA medium. Shoot tips, stem sections and young leaves from in vitro pIantlets formed protoeorm—like— bodies(PLB)or adventitious buds in MS+0.5-,5ppal B +lppm NAA or Ms十0.5—5ppm medium. en 5p:pm:BA+ippm NA A WaS added jnto th e lnedium,65 of the stein seeti0nS formed adventitious buds,and 16。7 of tl1e learCS ormed PLB. In the M S+ippm BA medium, PLB sub— culture gave multiplicatioo, and the structures formed young plants by further c 1ture. The plantlets of th 2 w te fi。-v r ctoae Pha1.(p,hytlfs key band lea— der)×celebration have been transplanted On a large scale.The study has a1 s。 sl1own that plantlets of Phataenopsis developed by this method start flo、 ering in 2-3 y ears after trans91antati。n in Guangzhou area. 维普资讯 http://www.cqvip.com
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