扫描电镜生物样品制备步骤

扫描电镜样品制备一、取材组织块小于3立方毫米（单细胞培养或收集展片于盖玻片或滤膜上）。二、固定前固定：2.5%戊二醛（磷酸缓冲液配制）固定2小时或更长时间。用0.1MpH7.4磷酸盐缓冲液漂洗三次，每次10分钟。后固定：1%锇酸固定液，固定1-2小时。用0.1MpH7.4磷酸盐缓冲液漂洗三次，每次10分钟。三、脱水＊脱水在4度冰箱内进行，所有脱水步骤建议在专用的冷冻干燥杯中进行，冷冻干燥杯请于实验前一天到电镜室领取。＊整个过程，样品不要暴露于空气。1.乙醇脱水，每一级10-20分钟：30%乙醇—50%乙醇—70%乙醇—90%乙醇—95%乙醇—100%乙醇；2.然后从乙醇逐步过渡到叔丁醇，纯叔丁醇每次10分钟，3次以上；此系列操作均在25度环境中进行；3.纯叔丁醇4度冰箱过夜，样品结晶。四、冷冻干燥＊需事先预约冷冻干燥时间；第二天上午八点半讲冷冻结冰的样品用冰盒送至电镜室进行冷冻干燥。五、喷金附件1：     细菌类样品的前处理方法1.盖玻片泡酸，清洗，烘干。用剪刀剪碎，挑出5mm*5mm大小玻片备用。玻片过大或者过厚影响观察效果。2.菌液或样品悬液离心，需要可进行清洗，加入固定液，吹散固定，于4度冰箱固定2小时左右。3.固定结束后，去固定液，加入PBS浸泡清洗，10分钟。离心去PBS，固体沉淀根据量多少，加入适量PBS，制成浓度较高的悬液（目测较混浊）。样品浓度对后期吸附有较大影响，浓度过低可能吸附量会很少。4.取鸡蛋清，稀释3-5倍（一定要稀释！蛋清过浓会包裹样品），之前准备好的玻片放入液体内蘸一下，取出晾干至触摸感觉有点黏的状态（快干的状态）。将第3步取得的悬液滴在玻片上，吸附30秒到1分钟，用滤纸吸去多余液体。（样品悬液在玻片上停留时间过长将导致样品被蛋清完全包裹而无法观察）。5.在玻片上滴加固定液，固定10分钟，固定后用PBS浸泡清洗10分钟，放入干燥杯开始进行脱水。