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实验8植物组织中可溶性蛋白质含量的测定

2021-10-15 2页 doc 13KB 50阅读

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lupeng

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实验8植物组织中可溶性蛋白质含量的测定实验8植物组织中可溶性蛋白质含量的测定时间:2021.03.09创作:欧阳法I.斐林-酚试剂法[原理]斐林(Folin)-酚试剂法结合了双缩脉试剂和酚试剂与蛋白质的反应,其中包括两步反应:第一步是在威性条件下,与铜试剂作用生成蛋白质-铜络合物;第二步是此络合物将磷锢酸、磷鹄酸试剂还原,生成磷钿蓝和磷鹄蓝的深蓝色混合物,颜色深浅与蛋白含量成正相关。在650nm时比色测定的灵敏度比双缩腺法高100倍。由于肤键显色效呆增强,从而减少了因蛋白质种类引起的偏差。该法适于微量蛋白的测定(范围为5〜1()()临蛋白质)。[材料、仪器设备及试...
实验8植物组织中可溶性蛋白质含量的测定
实验8植物组织中可溶性蛋白质含量的测定时间:2021.03.09创作:欧阳法I.斐林-酚试剂法[原理]斐林(Folin)-酚试剂法结合了双缩脉试剂和酚试剂与蛋白质的反应,其中包括两步反应:第一步是在威性条件下,与铜试剂作用生成蛋白质-铜络合物;第二步是此络合物将磷锢酸、磷鹄酸试剂还原,生成磷钿蓝和磷鹄蓝的深蓝色混合物,颜色深浅与蛋白含量成正相关。在650nm时比色测定的灵敏度比双缩腺法高100倍。由于肤键显色效呆增强,从而减少了因蛋白质种类引起的偏差。该法适于微量蛋白的测定(范围为5〜1()()临蛋白质)。[材料、仪器设备及试剂]材料各种植物材料。仪器设备722分光光度计,离心机,恒温水浴,定量加样器,冷凝回流装置一套,研钵,离心管,刻度移液管,微量滴定管,试管等。试剂(1)().5mol/LNa()Ho⑵斐林-酚试剂甲液:由A、B两种溶液组成:A液:4%碳酸钠(Na2C03)溶液与0.2mol/L氢氧化钠(NaOH)溶液等体积混合。B液:1%硫酸铜(CuS04•5H20)溶液与2%酒石酸钾钠溶液等体积混合。使用前将A与B按5():1的比例混合即成,此试剂只能在使用当天配制。⑶斐林-酚试剂乙液:称取鹄酸钠(Na2W04oH20)100g,钮酸钠(Na2Mo()4-2H20)25g,加蒸锦水700ml溶解于150()mL的圆底烧瓶中。之后加入85%的H3P()450mL,浓HcllOOmL,安上回流装置(使用磨口接头,若用软木寒或橡皮塞时,就必须用锡縮纸包起来),使其慢慢沸腾1()h。冷却后加入硫酸锂(Li2SO4.H2O)15()g,蒸馅水50ml,渓水2-3滴,打2021.03.09开瓶口煮沸15min,以逐出过量的渓,冷却后溶液呈黄色(若仍绿色,须再滴加几滴渓水,继续煮沸15min)。待冷却后稀释至1000ml,过滤入棕色瓶中保存。使用时大约加水1倍,使最终浓度相当于lmol/L酸度。因此在使用前应进行标定。标定方法:取5ml福林-酚试剂乙液放入锥形瓶内,用lmcl/L氢氧化钠溶液滴定,酚醮作指示剂,当溶液突然转红再转灰绿时,即为滴定终点。计算其相当的酸度,用盐酸或氢氧化钠溶液调至相当于lmol/L的酸度。在测定时要注意,因为酚试剂仅在酸性稳定,但此实验的瓜只在pH#l()的情况下发生,所以当加酚试剂时,必须立即混匀,以便在磷钿酸-磷鹄酸试剂被破坏前即能发生还原反应,否则会使显色程度减弱。⑷标准蛋白质溶液:称取25mg牛血清蛋白,溶于100ml蒸馅水中,使终浓度为250|Ag/mlo[实验步骤](一)标准曲线的绘制取18mmX200mm试管7支,1-7编号,分别加入()mL、().1mLx().2mL、0.4mLs().6mL、().8mL、l.OmL标准蛋白质溶液,用蒸馅水补足ImL,使每管含蛋白量分别为Opmol/L、25p.mol/Ls5()pmol/L%100pmol/L、15()p.mol/L>200|imol/L、250p.mol/Lo用定量加样器给每支试管中加入5mL甲液,混匀,于3()°C下放置lOmino再向试管中喷射加入0.5mL乙液,立即振荡混匀,在3()°C下准确保温30min以不加标准蛋白的1号管为空白,在650nm下用lcm光径的比色皿测定吸光度。以标准蛋白浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线。样品的测定样品的提取:称取鲜样().5g,用5mL蒸馅水或缓冲液研磨成匀浆后,1000()r/min离心lOmin,取上清液1.OmL(视蛋白质含量适当稀释)于试管中,然后重复标准曲线绘制中的2〜4步骤,以空白管调零,测定吸光度。根据吸光度查标准曲线,求出样為中的蛋白质含量。[结果计算]样品中蛋白的含量=(mg/g)式中:C为查标准曲线值,rig;VT为提取液总体积,mL;WF为样品鲜重,g;Vs为测定时加样量,mLo'还原物质,其他酚类物质及柠檬酸对此反应有干扰。U.考马斯亮蓝G-250染色法[原理]考马斯亮蓝G-250(CoomassicbrilliantblueG-250)测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。该染料在游离状态下呈红色,在稀酸溶液中当它与蛋白质的疏水区结合后变为青色,前者最大光吸收在465nm,后者在5951lnmo在一定蛋白质浓度范围内(1〜l()()()|Ag),蛋白质与色素结合物在595nm波长下的吸光度与蛋白质含量成正比,故可用于蛋白质的定量测定。考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合反应十分迅速,2min左右即达到平衡。其结合物在室温下lh内保持稳定。此法灵敏度高(比斐林-酚法还高4倍),易于操作,干扰物质少,是一种比较好的定量法。其缺点是在蛋白质含量很高时线性偏低,且不同来源蛋臼质与色素结合状况有一定差异。[材料、仪器设备及试剂](一)材料小麦叶片及其他植物材料。(二)仪器设备722分光光度计,研钵,烧杯,量瓶,移液管,具塞刻度试管等。(三)试剂⑴标准蛋白质溶液:l()()Rg/mL牛血清白蛋白:称取牛血清蛋臼25隅,加水溶解并定容至lOOmL,吸取上述溶液40mL,用蒸懈水稀释至1OOmL即可。⑵考马斯亮蓝G-250溶液:称取lOOmg考马斯亮蓝G-250,溶于50mL90%乙醇中,加入1OOmL85%(W/V)的磷酸,再用蒸镐水定容到1L,贮于棕色瓶中。常温下可保存一个月。[实验步骤](一)标准曲线的绘制取6文具塞试管,按表2-29-1加入试剂(()〜100|ig/mL的标准蛋白)。混合均匀后,向各管中加入5mL考马斯亮蓝G-250溶液,摇匀,并放置5min左右,用1cm光径比色皿在595nm下比色测定吸光度。以蛋白质浓度为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。(二)样品测定⑴样品提取。方法与斐林-酚试剂法相同。⑵吸取样品提取液1.0ml,放人具塞试管中(每个样品重复2次),加入5mL考马斯亮蓝G-250溶液,充分混合,放置2min后在595nm下比色,测定吸光度,并通过标准曲线查得蛋白质含量。[结果计算]样品中蛋白质的含量=(mg/g)式中:C、VT、WF.Vs的表示意义与斐林-酚法相同。111.紫外吸收法[原理]蛋白质分子中的酪氨酸、色氨酸等残基在280nm波长下具有最大光吸收。由于各种蛋白质中都含有酪氨酸,因此280nm的光吸收度是蛋白质的一种普遍性质。在一定程度下,蛋臼质溶液在280nm吸光度与其浓度成正比,故可作定量测定。核酸在紫外区(260nm)也有吸收,可通过校正加以消除。[材料、仪器设备及试剂]材料.小麦叶片及其他植物材料。仪器设备紫外分光光度计,离心机,刻度移液管。试剂().lmol/LPH7.()磷酸缓冲液。[实验步骤]样器提取与菲林-酚法相同。测定取适量的样品提取液,根据蛋白质浓度,用0.1mol/LpH7.0磷酸缓冲液适当稀释后,用紫外分光光度计分别在280nm和260nm波长下读取吸光度,以pH7.0磷酸缓冲液为空白调零。[结果计算]蛋白质浓度=1.45A280-0.744A260(mg/mL)蛋白质含量二式中:1.45和().74为校正值:A280为蛋白质溶液在280nm处的吸光度;A260为蛋白质溶液在260nm处的吸光度;n为稀释倍数。思考题1.测定植物体内可溶性蛋白质含量有什么意义和用途?试举二例说明。2.三种测定方法各有何优缺点?在实验中如何选择合适的方法并克服其缺点?3.福林-酚试剂法测定蛋白质含量的原理是什么?测定中应注意什么问题?时间:2021.03.09创作:欧阳法
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