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人体解剖学骨骼肌实验报告

2017-12-25 25页 doc 49KB 2113阅读

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人体解剖学骨骼肌实验报告人体解剖学骨骼肌实验报告 人体解剖学实验报告指导 实验报告 实验课的目的及要求 系统解剖学是研究正常人体形态结构的科学。本实验课的目的是通过观察标本模型,使学生掌握掌握人体九大系统器官的形态结构及功能,巩固解剖学基本理论和基本知识,从而培养学生的观察能力和思维能力,自学、表达和分析解决问题的能力。因此,要求学生: 1.重视实验课,实验前仔细阅读实验指导,了解实验目的、方法及步骤并结合实验内容复习有关理论。 2.实验时要仔细观察、认真操作,并对观察结果进行思考。 如:(1)椎骨的形态特征, (2)各部椎骨的特殊结...
人体解剖学骨骼肌实验报告
人体解剖学骨骼肌实验报告 人体解剖学实验报告指导 实验报告 实验课的目的及要求 系统解剖学是研究正常人体形态结构的科学。本实验课的目的是通过观察标本模型,使学生掌握掌握人体九大系统器官的形态结构及功能,巩固解剖学基本理论和基本知识,从而培养学生的观察能力和思维能力,自学、表达和分析解决问题的能力。因此,要求学生: 1.重视实验课,实验前仔细阅读实验指导,了解实验目的、方法及步骤并结合实验内容复习有关理论。 2.实验时要仔细观察、认真操作,并对观察结果进行思考。 如:(1)椎骨的形态特征, (2)各部椎骨的特殊结构, (3)椎间盘的结构及临床意义。 (4)脊柱的侧面的四个生理弯曲及意义。 3.实验后,认真整理实验物品,如有损坏及时交给实验老师。 班级: 组别: 日期: 实验指导教师: 实验室守则 1.遵守学习纪律,准时到达实验室。实验时因故外出或早退应向教师请假。 2.要严肃认真地进行实验,实验期间不得进行任何与实验无关的活动。 3.保持实验室安静,讲话要低声,不要影响其他人实验。 4.实验时严格遵守代教教师及课代表的指示。 实 验 内 容 任务一观察躯干骨及其连结 一、实验指导 (一)实验目的 1.能在骨标本上说出躯干骨的组成,胸廓的组成。 2.能在骨标本上辨认椎骨、胸骨的形态结构。 3.能指出躯干骨的主要体表标志。 (二)实验器材 分离躯干骨标本 完整脊柱和胸廓标本 (三)实验步骤 1.分组取标本 学生需提前分组,每组成员需按照课代表及组长的分配确定座位,未经代教教师允许不得擅自更换桌位。各组组长到课代表处领取骨标本,分发给每位组员作好记录以便回收。 2.保持安静,听代教教师讲解椎骨的一般结构和各部椎骨的特殊结构、脊柱和胸廓结构,然后组织学生进行观察,最后教师归纳 。本过程要求学生要保持安静,如有问题等教师讲解完毕再行询问。 3.观察并记录结果 每位同学需认真观察标本,结合理论知识理解椎骨的一般结构和各部椎骨的特殊结构、重点理解脊柱侧面观、椎间盘结构和胸骨角,最后绘图,书写实验报告。 4.还标本,打扫卫生 实验完成后将标本还给组长或课代表,检查物品是否有损坏,如有问题及时向代教教师反映情况,按实验室相关规定提供赔偿。服从课代表分配搞好实验室卫生。 ( 四)实验内容 本实验主要是观察躯干骨的一般结构和特殊结构,观察躯干骨连接时,重点认识椎间盘的结构,椎骨间的韧带,脊柱侧面的生理弯曲和胸廓的组成及形态。认识胸骨角。 (五)实验结果 任务二观察颅骨及其连结 一、实验指导 (一)实验目的 1.能在骨标本上说出颅骨的组成、分类和名称。 2.能在骨标本上辨认颅骨侧面、颅底内、外面及颅骨前面的主要结构。 3.能指出颅骨的主要体表标志。 (二)实验器材 分离颅骨标本 完整颅骨标本 (三)实验步骤 1.分组取标本 每次实验前必须提前分组,每组成员需按照课代表及组长的分配确定座位,未经代教教师允许不得擅自更换桌位。各组组长到课代表处领取骨标本,分发给每位组员作好记录以便回收。 2.保持安静,听代教教师讲解颅骨的组成、分类和名称及颅骨的整体观,然后组织学生进行观察,最后教师归纳总结。本过程要求学生要保持安静,如有问题等教师讲解完毕再行询问。 3.观察并记录结果 每位同学需认真观察标本,结合理论知识理解颅骨的组成、分类和名称,重点理解颅的侧面观、前面观及颅底内、外面观,最后绘图,书写实验报告。 4.还标本,打扫卫生 实验完成后将标本还给组长或课代表,检查物品是否有损坏,如有问题及时向代教教师反映情况,按实验室相关规定提供赔偿。服从课代表分配搞好实验室卫生。 ( 四)实验内容 本实验主要是观察颅骨,重点辨认颅骨侧面观、顶面观、前面观及颅底内、外面观的主要结构。 (五)实验结果 任务三 观察四肢骨及其连结 一、实验指导 (一)实验目的 1.能在骨标本上说出上肢骨及下肢骨的组成和名称。 2.能在骨标本上辨认肩胛骨、肱骨、尺骨、桡骨的主要结构。 3.能在骨标本上辨认髋骨、股骨、胫骨的主要结构。 4.能指出四肢骨的主要体表标志。 (二)实验器材 四肢骨标本 完整骨架 (三)实验步骤 1.分组取标本 每次实验前必须提前分组,每组成员需按照课代表及组长的分配确定座位,未经代教教 师允许不得擅自更换桌位。各组组长到课代表处领取骨标本,分发给每位组员作好记录以便回收。 2.保持安静,听代教教师讲解四肢骨的组成和名称及四肢主要骨的主要结构,然后组织学生进行观察,最后教师归纳总结。本过程要求学生要保持安静,如有问题等教师讲解完毕再行询问。 3.观察并记录结果 每位同学需认真观察标本,结合理论知识理解四肢骨的组成和名称,重点理解肩胛骨、肱骨、尺骨、桡骨和髋骨、股骨、胫骨的主要结构,最后绘图,书写实验报告。 4.还标本,打扫卫生 实验完成后将标本还给组长或课代表,检查物品是否有损坏,如有问题及时向代教教师反映情况,按实验室相关规定提供赔偿。服从课代表分配搞好实验室卫生。 ( 四)实验内容 本实验主要是观察四肢骨的主要结构。 (五)实验结果 任务四观察躯干肌、四肢肌 任务五观察消化系统 任务六观察呼吸系统 任务七观察泌尿系统 任务八观察心血管系统 一、 实验指导 (一)、实验目的 1、能在标本上说出躯干骨的组成,胸廓的组成; 2、能在标本上辨认四肢骨和躯干骨的形态结构; 3、能指出人体骨骼的主要体表标志; 4、观察膈的位置、形态和功能; 5、熟悉三角肌、肱二头肌、肱三头肌、臀大肌、梨状肌、股四头肌、缝匠肌、 小腿三头肌的位置和起止点,并在活体上验证它们的功能; 6、熟悉消化系统的组成; 7、辨认消化管各段的位置、形态和连通关系; 8、熟悉呼吸系统的组成; 9、掌握气管和主支气管的位置、形态和特征; 10、掌握泌尿系统的组成; 11、掌握肾的位置、形态; 12、熟悉输尿管的行程和狭窄部位; 13、熟悉膀胱的形态、位置和毗邻,膀胱三角位置; 14、熟悉掌握心的位置、外形和心腔内部结构; 15、学会心的传导系统和血管; (二)实验器材 1、分离躯干骨标本; 2、完整脊柱和胸廓标本; 3、分离颅骨标本; 4、完整颅骨标本; 5、四肢骨标本; 6、完整骨架 7、腹腔解剖标本; 8、各类牙的标本或模型; 9、呼吸系统概观标本或模型; 10、头颈部正中矢状切面标本、模型; 11、气管、左右主支气管标本; 12、左右肺标本; 13、胸腔标本; 14、男女性泌尿生殖系统概观标本及模型; 15、男女骨盆和正中矢状切面标本及模型; 16、完整的心脏离体标本或模型; 17、心的血管标本; (三)、实验内容 本次实验只要是观察人体骨骼的主要结构及各系统的形态结构。 (四)、实验方法 通过触摸、精讲、启发、引导和讨论的教学方法 (五)、实验结果 通过本次实验,让学生们了解人体各部的形态、结构和功能;通过观察和讲解,使学生们更为深刻的了解到人体的神秘,也使同学们明白解剖学在医学中的低位和重要性。 2012-1-11 蒙红亮 篇二:人体解剖学实验考试 坐骨神经——腓肠肌标本和腓肠肌标本制备 二、实验原理 三、1、蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,而其离体组织生活条件易于掌握,在任氏液的浸润下,神经肌肉标本可较长时间保持生理活性。因此,在生理学实验中常用蛙或蟾蜍坐骨神经腓肠肌离体标本来观察神经肌肉的兴奋性、兴奋过程以及骨骼肌收缩特点等。 2、细胞的静息膜电位为外正内负,电刺激可改变可兴奋细胞的膜电位差。膜电位减小时,细胞去极化,细胞兴奋;膜电位增大时,细胞超极化,细胞兴奋性被抑制。蘸有任氏液的锌铜弓接触活组织时,可产生沿锌片—活组织—铜片流向的电流对细胞产生 刺激效应。 四、实验步骤 1、洗净实验动物?毁髓?剥制后肢?分离坐骨神经?游离腓肠肌?游离股骨头?标本检验?电刺激极性法则的验证 2、双毁髓 一只手握住牛蛙,使其背部向上。用拇指压住牛蛙背部,食指按压其头部前端,另一只 手持毁髓针,由两眼之间沿中线向下触划,触及凹陷处即为枕骨大孔。将毁髓针垂直刺入枕 骨大孔。将针尖向前刺入颅腔内搅动,此时为单毁髓;将毁髓针退回枕骨大孔,针尖转向后 方,与脊椎平行刺入椎管内捣毁脊髓,完成双毁髓。 3、坐骨神经-腓肠肌标本制备(1)剥制后肢标本:轻提双毁髓蛙,自背面耻骨联合上方约1公分处横向剪断脊柱。轻轻托起后肢,看清坐骨神经位置,沿脊柱两侧横向切口剪断体壁,去除断口以上肢体和内脏放入污物缸。剥去后肢皮肤后放入任氏液中备用。(2)分离两后肢,一只用于剥制标本,一只放入任氏液中保存。(3)分离坐骨神经:将后肢标本脊柱端腹面向上,趾端向外侧用蛙钉将标本固定在蛙板上。先在腹腔面用玻璃分针沿脊柱游离坐骨神经,然后在标本的背侧于股二头肌与半膜肌的肌肉缝内将坐骨神经与周边的结缔组织分离直到腘窝。(4)游离腓肠肌:同样用玻璃分针将腓肠肌与其下的结缔组织分离并在其跟腱处穿线、结扎;(5)分离股骨头:捏住股骨,剪去并刮净周围肌肉,保留 股骨的后2/3,剪断股骨; (6)检验标本:用手术镊轻提标本的脊椎片,再用经任氏液蘸湿的锌铜弓接触坐骨神经,如腓肠肌发生收缩,则表示标本机能正常。轻提腓肠肌上的结扎线,将标本放入任氏液中保存15-20分钟后进行实验。(7)电刺激的极性法则验证:用棉线在神经干中间部位进行结扎,以阻断神经传导兴奋的能力。用锌铜弓跨越结扎线刺激坐骨神经干。 五、注意事项 1、避免血液污染标本,压挤、损伤和用力牵拉标本,不可用金属器械触碰神经干。 2、在操作过程中,应给神经和肌肉滴加任氏液,防止表面干燥,以免影响标本的兴奋性。 3、标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使标本兴奋性稳定再开始实验效果会较好。 六、实验结果 通过任氏液浸泡,刺激后,看到肌肉有收缩的反应,调换电极进行刺激后也同样有收缩 反应。通过铜—锌与锌—铜的两种刺激比较后,铜—锌更强。 八、思考题 1、剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗,为什么, 答:不能。因为自来水中还有例如氯离子、钙离子等许多离子,它们会影响细胞膜的点 位分布,最终就会影响到刺激反应现象的观察;另外自来水里有许多微生物如果它们附着与 誓言材料上, 也会影响实验效果的。 2、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌,可能引起哪些不良后果, 答:金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌会损伤腓肠肌细胞膜,使肌肉中的神经收到过 度刺激,而过度兴奋最终失活,刺激时候就没有现象。 3、如何保持标本的机能正常, 答:首先在制备腓肠肌的过程时,金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌,以及实验者不要触碰到肌肉;其次,过程中要保持腓肠肌的湿润,常加任氏液,最好先泡一会;另外,在第一次电刺激后,需要让肌肉休息一段时间,在进行下一次刺激。 实验三 骨骼肌收缩特性和收缩形式的观测 二、实验原理: 1、腓肠肌有许多肌纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激程度会引起肌肉不同的反应、当刺激强度过小时肌肉不会发生收缩反应,此时的刺激为阈下刺激,而能够引起肌肉发生收缩反应的最小刺激强度为阈刺激,当全部肌纤维同时收缩时则出现最大收缩反应这时即使在增大刺激强度肌肉收缩的力量也不会随之加大,可以引起肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度为最适刺激强度。 肌肉组织对于一个与上强度的刺激,发生一次迅速的收缩反应,即单收缩,单收缩反应过程包括三个时期潜伏期 收缩其 舒张期 五、思考题 1、同一标本的阈刺激强度与最适刺激强度是否会发生变化,为什么, 答:会的。由于实验过程中的电刺激会使得肌肉标本发生变化,神经的兴奋性也会相应的收到一定影响;任氏液的浸泡也会对兴奋性造成影响的。 2、刺激骨骼肌与刺激神经的单收缩曲线有何不同, 答:神经收缩和肌肉兴奋都是一种电活动,都是以细胞膜上的动作电位的产生与传导为标志的坐骨神经干兴奋是诱发骨骼肌细胞膜产生兴奋的刺激因素坐骨神经干动作电位发生在腓肠肌动作电位发生之前两种电活动的幅度持续时间以及不应期等各方面的不同肌细胞膜动作电位是骨骼肌兴奋的根本标志。他通过兴奋——收缩偶联才引发骨骼肌的机械收缩活动,肌电发生在先,机械活动发生在后,从曲线的幅度上说,肌肉收缩的曲线与肌电兴奋的曲线完全不是一个概念,没有可比性。从曲线的持续时间来说,骨骼肌收缩的机械收缩曲线远比其动作电位时程长。骨骼肌的兴奋活动具有不应期,骨骼肌收缩的机械不存在不应期,因此骨骼肌收缩曲线可以发生部分融合,甚至完全融合,但是骨骼肌兴奋动作电位是无法融合的。 ABO血型鉴定与交叉配血 ABO血型鉴定与交叉配血血型就是红细胞膜上特异抗原的类型。在ABO血型系统中,红细胞膜上抗原分A和B两种抗原,而血清 抗体分抗A和抗B两种抗体。A抗原加抗A抗体或B抗原加抗B抗体,则产生凝集现象。血型鉴定是将受试者的红细胞加入标准A型血清(含有抗B抗体)与标准B型血清(含有抗A抗体)中,观察有无凝集现象,从而测知受试者红细胞膜上有无A或/和B抗原。在ABO血型系统,根据红细胞膜上是否含A、B抗原而分为A、B、AB、O四型。 交叉配血是将受血者的红细胞与血清分别同供血者的血清与红细胞混合,观察有无凝集现象(见图4-3-1-1)。输血时,一般主要考虑供血者的红细胞不要被受血者的血清所凝集;其次才考虑受血者的红细胞不被供血者的血清所凝集。前者叫交叉配血试验的主侧(也叫直接配血),后者叫交叉配血的次侧(也叫间接配血)。只有主侧和次侧均无凝集,称为“配血相合”,才能进行输血;如果主侧凝集,称为“配血不合”或“配血禁忌”,绝对不能输血;如果主侧不凝集,而次侧凝集,可以认为“基本相合”,但输血要特别谨慎,不宜过快过多,密切注视有无输血反应。本实验的目的是学习ABO血型鉴定的原理、方法以及交叉配血方法。 蛙心起搏点、收缩与电兴奋地关系及期外收缩与代偿 间歇的观测 二、实验原理 两栖类动物的心脏为两心房、一心室,心脏的起搏点是静脉窦。静脉窦的节律最高,心房次之,心室最低。正常情况下,心脏的活动节律服从静脉窦的节律,其活动顺序为:静脉窦、心房、心 室。这种有节律的活动可以能过张力传感器在生理信号采集系统中记录下来,称为心搏曲线。心脏收缩的机械活动,与心脏兴奋的产生、传导和恢复过程中的生物电变化,是两个不同的生理过程。心脏收缩的机械活动可以通过心搏曲线记录下来,而心脏的生物电变化可以能过心电图表现了来。同时记录心脏的机械活动与电变化,可以清梦地观察到两个生理过程之间对应关系。心肌的机能特性之一是具有较长的不应期,整个收缩期都处于有效不应期内。在心室收缩期给以刺激,心室都不发生反应,在心室舒张中后期给以单个阈上刺激,则产生一次正常节律以外的收缩反应,即期前收缩。当静脉窦传来的节律性兴奋恰好落在期外收缩的收缩期时,心室不再发生反应,须静脉窦传来下一个兴奋才会收缩。因此在期外收缩之后,就会出现一个较长时间的舒张间歇期,即代偿间歇。 四、实验方法及步骤 暴露动物心脏——观察心脏的结构——观察心搏过程——记录心搏曲线——观察心脏电活动与机械收缩运动的时相关系——观察心室肌的期外收缩和代偿间歇的产生。 实验名称:人体动脉血压测定及影响因素 1、 实验原理: 通常血液在血管中流动时没有声音,但当外加压力使血管变窄形成血液涡流时,则可发生声音。因此,可以根据血管音的变化来测量动脉血压。测定人体动脉血压最常用的方法是使用血压计 间接测量。测压时,用压脉带在上臂或手腕加压,当外加压力超过动脉的收缩压时,动脉血流完全被阻断,此时在动脉处听不到声音。当外加压力等于或稍低于动脉内的收缩压时而高于舒张压时,则在心脏收缩时,动脉内有少量血流通过,而心室舒张时而无血流通过。血液断续地通过血管时,会发出声音。故恰好可以完全阻断血液的最小外加压力(即发生第一次声音时的压力)相当于收缩压。当外加压力等于或小于舒张压时,血管内的血液连续通过,所发出的音调会突然降低或声音消失。在心室舒张时有少许血流通过的最大管外压力(即音调突然降低时的压力)相当于舒张压。 在正常情况下,人或哺乳动物的血压是通过神经和体液调节保持其相对的稳定性(健康成年人的正常血压范围:收缩压90,140mmHg,舒张压60,80mmHg)。但是血压的稳定性是动态的,是在不断连续的变化而不是静止不变的。人体的体位、运动、呼吸、温度以及大脑的思维活动的等因素对血压均有一定的影响。 2、 实验方法和步骤: 1、受试者取坐位,心脏与血压计零点同一水平。静坐5分钟,待肢体放松,呼吸平稳与情绪稳定; 2、打开血压计开关,松开打气球上的螺丝,将压脉带内的空气排空后再将螺丝旋紧; 3、受试者脱左臂衣袖,将压脉带裹于左上臂距肘窝3cm上方处,压脉带应与心脏同一水平,使其松紧适度,手掌向上放在实验台 上。 4、在压脉带下方,肘窝上方找到动脉搏动处,将听诊器的胸具置于动脉上。 5、 听取血管音变化。 向压脉带充气加压,同时注意倾听声音变化,在声音消失后再加压30mmHg,然后稍稍扭松打气球上的螺丝,缓慢放气,仔细倾听听诊器内血管音的一系列变化;声音先是由无到有,次之由低到高,而后突然变低,最后完全消失。如此反复进行2-3次。 6、测量正常动脉的血压。 重复上一操作,同时注意检压计读数。但徐徐放气时,第一次听到的血管音即代表收缩压;最后声音消失之前的血管音代表舒张压。记下血压读数,放空压脉带,使压力降低为零,重复测压2-3次,记录测压均值。 7、实验观察 1)受试者加深呼吸加快呼吸频率对血压的影响 记录正常的血压后,令受试者加快加深呼吸1min测压 2)情绪对血压的影响 待血压恢复正常后,令受试者回忆起最气愤的往事1分钟测量 3)肢体运动对血压的影响 让受试者作原地蹲起运动,1分钟内完成50-60次,共做1-2分钟,运动后立即坐下测压,并将变化最大的血压值记录下来 4)冰水刺激对血压的影响 受试者取坐位,测量正常血压,然后让受试者的手浸入并冰水中1分钟测压。 8、实验结束后,将实验纪录填入表 实验结论和小结: 实验结论:在正常情况下人和哺乳动物是通过神经和体液保持其相对的稳定性。但血压稳定是动态的,是在不断变化的,不是静止不变的。在理论上,人在加快呼吸,气愤,运动后、环境变冷后都会引起血压的变化,通过血压来维持机体的正常的生理功能和活动已获得充足的供血需求,为机体提供氧和各种营养。但是实验数据分析表明,人在加快呼吸、气愤、环境变冷后都没有引起血压的显著性变化,这一方面由于实验数据很少,造成很大的误差,另一个就是同学们在做实验是没有严谨地完成实验, (3)注意事项: ?、测压时室内需保持安静,以利于听诊。 ?、戴听诊器时,务使耳具的弯曲方向与外耳道一致,即接耳的弯曲端向前。 ?、压脉带裹绕要松紧适宜,并与心脏同一水平。 ?、重复测压时,须将压脉带内空气放尽,使压力降至零位,而后再加压测量。 3、 思考题: (1)实验结果表明什么问题,为什么, 答:实验结果表明,人的血压并稳定并不是一直保持恒定静止不变,而是一种动态的稳定,是在不断变化的。人体的运动、呼 吸、温度以及大脑的思维活动等因素对血压均有一定的影响。因为人体的血压稳定是通过神经和体液等因素的调节实现的,人生活的环境是在不断变化的,机体要维持内环境的稳定就必须改变某些理化值。在温度降低,运动等情况下人体的耗氧量增加,机体为了保证身体的供氧量就通过升高血压加快心率等方式来增加血流量,从而为机体运输更多的氧,以保证机体对氧的需求,维持机体正常的生命活动。所以,人在某些因素的影响下,血压会有变化。 (2)情绪变化对人体血压影响的可能原因是什么,试说明两三点。 答:在愤怒与痛苦时,由于动脉外围阻力增加,可使舒张压明显升高。在恐惧时,由于心输出量增加,造成收缩压升高。情绪变化引起血压波动,由于紧张和焦虑导致神经系统功能失调,使血管紧张性增加,阻力加大,血压升高;同时,交感神经兴奋使肾小球动脉持续收缩,而使血压增高。 反射时、反射弧和脊髓反射的抑制测试 [基本原理] 反射是指对某一刺激无意识的应答。反射活动的结构基础为反射弧,包括感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器。从皮肤接受刺激至机体出现反应的时间为反射时。反射时是反射通过反射弧所用的时间。反射弧的任何一部分缺损,原有的反射不再出现。由于脊髓的机能比较简单,所以常选用只毁脑的动物 (如脊蛙或脊蟾蜍)为实验材料,以利于观察和分析。中枢的兴奋和抑制同时存在又相互影响。在脊髓反射的中枢之间或高位脑和脊髓对低位脊髓反射中枢均存在抑制作用。这些抑制作用保证了机体活动的协调性。 篇三:人体解剖生理学实验——解剖生理学实验要求 生理学实验课的目的与要求 一、生理学实验课的重要性 从1628年英国医生威廉?哈维(WillianHarvcy)的《心血运动论》一书的问世开始,生理学便成为一门独立的学科。生理学是建立在实验和观察基础上的学科,生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。因此,生理学的创立和发展离不开生理学实验。生理学实验课的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法,有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。本课程是医学和生命科学专业学生的必修课程。对于其他专业学生,选学生理学实验课,将对个人科学素养的提高十分有益。 二、生理学实验课的目的要求 1(目的 使学生逐步掌握生理学实验的基本方法和基本技术,了解生理学实验设计的基本原则,进而掌握获取生理学知识的技能,提高对实验中各种生理现象的观察、分析能力,以及独立思考和解决问题的能力。同时培养学生的创新意识、科学素养与科研能力。 培养学生科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风。 通过书写实验报告,提高学生分析、归纳问题及文字表达能力, 2、要求 提高实验课的教学质量,需要师生共同努力。因此,实验课的要求包括对教师和学生两个方面。 (1)实验前 生理学实验是在具有生命活性的机体上进行的,实验结果易受多方面因素的制约和影响,教师在备课中,明确实验目的要求、统一实验方法步骤、统一实验项目和实验内容,同时要求教师操作熟练。 学生必须认真预习实验指导,了解实验的目的要求、实验设计原理、简要的操作步骤和注意事项,还应复习与本实验有关的理论部分,以提高实验的目的性和主动性,达到进一步巩固有关理论知识的效果。 (2)实验中 教师传授知识要耐心细致,对学生负责。要求学生必须掌握的生理学实验方法和基本操作技术一定要教会,一丝不苟,逐步提高学生的多种能力与综合素质。同时鼓励学生与指导教师自由交换意见,注意引导学生丰富想像力、增强探索与创新意识。 学生应认真听教师讲课,按教师要求进行各项实验操作,仔细观察、认真记录实验中出现的各种生理现象,并对引起生理现象的原因、意义进行分析和思考。 实验用器材、物品要摆放整齐,便于操作。注意保持实验桌面的清洁卫生,随时清除污物。实验桌上不得放置与实验无关的物 品。 爱护仪器和实验动物,注意节约实验材料。不经教师许可,不得动用他人或他组的仪器用品,公用物品在使用完后应放回原处,以免影响他人使用。 遵守实验室规则。保持实验室安静,不得大声喧哗,以免影响他人实验。 实验结束前请教师审查实验结果。如有错误,及时补救。未经教师许可,学生不得擅自终止实验或离开实验室。 (3)实验后 学生应将实验用具整理就绪,放回原处。所用手术器械、手术桌和其他手术用品擦洗干净,仪器用干布擦干净。实验用具如有破损或缺少,及时报告指导教师。作好实验室的清洁卫生工作。 按教师要求妥善处理实验动物,不可自行处理。尤其不能将未处死的动物(尤其鼠类)随手丢弃。实验后,关闭水源、电源,经教师允许方可离开实验室。 整理实验记录,按教师要求书写实验报告并及时交给教师批阅。 教师应认真批改实验报告。如发现不合要求的应指明问题,退回重写。 三、实验报告的撰写 书写实验报告是生理学实验课的基本训练之一,师生都应认真对待,以便为日后撰写科研打下良好的基础。为了帮助学生写好实验报告,现将其格式和内容要求简述如下: 1(格式 生理学实验报告 姓名 专业 组别 日期 室温 2(内容要求 (1)实验题目 实验题目应与实验报告的内容一致。一次实验课可能完成多个实验,但教师只要求写一两个实验的报告,有的实验要求学生自行命名。这就要求学生独立思考,选择实验题目应与报告内容相符,题目的文字要简而明、概括性强。 (2)目的要求 目的要求应与实验题目密切相关,不写与之无关的内容。文字力求简练。 (3)实验方法 实验方法应按教师的要求写。一般常规实验不必写,而自行设计的实验必须写明实验方法。 (4)实验结果 实验结果是实验报告的重要部分,实验过程中所观察或记录的生理指标,都应如实、正确地在实验结果中剪贴、记述或说明。如果要求用描记图表示,则需要将原始记录进行合理的剪贴、加工,并在图的下方写明图号、图名、图注及必要的文字说明。不得将记录原封不动地附在报告上。如果记录需要用表格形式表示,其两端是开放而不封口的。表号、表名写在表的上方。凡是定量测量资料,均应以正确的单位和数值准确地写在报告上。有些实验结果需要作统计学处理,求出均值、标准差以及显著性检验。为了便于说明和比较,有些实验结果可以列表或绘图表示。 (5)分析讨论 分析讨论是根据所学的理论知识,对实验结果进行科学的分析和解释,并判断实验结果是否与理论相符合。如果出现矛盾,应分析其中的原因。讨论是实验报告的核心部分,必须独立完成。对实验结果进行认真的分析讨论,有助于提高学生分析、思考和文字表达能力。报告不应盲目抄袭书本,要用自己的语言表达(但应注意使用专业术语)。提倡学生根据实验结果提出自己的独到见解与认识,以及需深入探索的课题。 (6)结论 结论是从实验结果和讨论中归纳出来,有高度概括性的结语,也是实验所验证的基本概念、基本原理的简要总结。结论的文字应突出重点、简明扼要。写好结论部分,有助于提高学生归纳、综合问题的能力。 活体解剖技术 生理学实验是以活的动物或人体作为观察对象和实验材料。在动物实验中,活体解剖技术对生理学实验的成败起着至关重要的作用。在实验过程中,学生应着重于学习、掌握这些操作技术,以提高自己的动手能力。 生理学实验方法虽然多种多样,但一般可分为离体实验法和在体实验法两类。离体实验法是将要研究的器官或组织从活的或刚处死的动物体上取出,置于接近正常生理条件的人工环境中,以观察、研究其生理功能。如离体心脏灌流、离体肠段活动及坐骨神经—腓肠肌标本等实验。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。急性在体实验法是动物在麻醉或毁坏脑(或脊髓)的状态 下,用手术的方法暴露某一器官,便于观察、研究其机能及变化规律。如在体心脏活动的观察、肾脏泌尿机能的研究等。急性实验法只能在一定时间内进行观察研究,而且实验后动物不能存活。慢性实验法是在特定条件下,以完整而清醒的动物为对 象的实验方法,可以在较长的时间内,连续地反复观察动物的某一生理机能。此法常需要先在动物体上施行某种无菌外科手术,如胃肠道瘘管术,或在机体的一定部位埋藏电极、切除某一器官等,须待动物恢复健康后方可进行实验。这种实验花费时间较长,动物需要特殊的护理,在基础生理学实验中较少安排。 一、手术器械及其用途 (一)常用手术器械 根据生理学实验的需要,常用手术器械包括手术刀、手术剪、金冠剪、手术镊、眼科剪、蛙类毁髓针、玻璃分针等。 1(手术刀 主要用于切开皮肤或脏器。常用手术刀为刀柄和刀片组合式,也有刀柄和刀片相连的。根据手术的部位与性质,可以选用大小、形状不同的手术刀片。常用的执刀方法有4种: (1)执弓式 这是一种常用的执刀方法,动作范围广而灵活,用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。 (2)执笔式 此法用力轻柔而操作精巧,用于切割短小而精确的切口,如解剖神经、血管,作腹膜小切口等。 (3)握持式 常用于切割范围较广、用力较大的切口,如切开较 长的皮肤、截肢等。 (4)反挑式 此法多使用刀口向弯曲面的手术刀片,常用于向上挑开组织,以免损伤深部组织。 2(手术剪 主要用于剪皮肤或肌肉等粗软组织。此外,也可用来分离组织,即利用剪刀的尖端,插入组织间隙,分离无大血管的结缔组织等。手术剪分尖头剪和钝头剪。其尖端还有直、弯之别。生理学实验中常习惯于用弯型手术剪剪毛。另外,还有一种小型手术剪,称眼科剪,主要用于剪血管或神经等柔软组织。眼科剪也有直头与弯头之分。 3、手术镊 主要用于夹持或牵拉切口处的皮肤或肌肉组织。眼科镊用于夹持细软组织。手术镊有圆头、尖头两种,又有直头和弯头、有齿和无齿之别,而且长短不一,大小不等,可根据手术需要选用。通常,有齿镊主要用于夹持较坚韧或较厚的组织,如皮肤、筋膜、肌腱等;无齿镊主要用于夹持较细软的组织,如血管、黏膜等。 4(金冠剪 金冠剪尖端粗短,易于着力,可用于剪开皮肤、内脏、肌肉、骨骼及绳线等。持剪姿势同一般手术剪。 5(毁髓针 专门用来毁坏蛙类脑和脊髓的器械。分为针柄和针部,持针姿势一般采用执笔式。 6(玻璃分针 专用于分离神经与血管的工具。尖端圆滑,直头或弯头,分离时不易损伤神经与血管。玻璃分针尖端容易碰断,使用时要小心,如尖端破碎时会损伤组织,不可再使用。持玻璃分针的姿势同执笔式。 (二)哺乳类动物用手术器械 主要作用是分离组织和止血,不同类型的止血钳又有不同的用途。执止血钳的姿势均与执剪刀的姿势相同。常用止血钳有以下3种: (1)直止血钳 分长短两种类型,又有有齿和无齿之别。无齿止血钳主要用以夹住浅层出血点,以便止血,也可用于浅部的组织分离。有齿止血钳主要用于强韧组织的止血,提起 皮肤等。 (2)弯止血钳 与直型的大同小异,也分长短两种,主要用于深部组织或内脏出血点的止血。 (3)蚊式止血钳(蚊嘴钳)此种止血钳头端细小,又称小止血钳,适用于细嫩组织的止血和分离,不宜钳夹大块或坚硬组织。 2(持针器 主要用于夹持缝针,缝合组织。持针器的头端较短,口内有槽。使用时,用持针器的尖端夹持缝针近尾端1,3处。 3,咬骨钳 主要用于咬切骨组织,如打开颅腔或骨髓腔等。咬骨钳有剪刀 式和小蝶式及双关节咬骨钳,前者适用于剪开骨片,后者适用于咬断骨组织。 4(颅骨钻 颅骨钻有多种类型。主要用于开颅时钻孔。 5,缝针 用于缝合各种组织。缝针有圆针和三棱针两种,又有直型和弯型之别,而且其大小不一。圆针多用于缝合软组织,三棱针用于穿皮固定缝合,弯针用于缝合深部组织。 主要用于短期阻断动脉血流,如动脉插管时使用。 二、活体解剖技术 1(动物的选择 常用的实验动物有狗、猫、兔、大白鼠、小白鼠、豚鼠、鸽、鸭、蟾蜍或蛙等。无论选用哪种动物,均需健康。一般地说,健康的哺乳动物毛色光泽、两眼明亮、眼和鼻五分泌物、鼻端潮而凉、反应灵活、食欲良好。健康的蛙或蟾蜍则皮肤湿润、喜爱活动,静止时后肢蹲坐、前肢支撑、头部和躯干挺起等。 动物种类的选择需根据实验内容而定,使其解剖和生理特点适合于预定实验的要求。如研究主动脉神经传人冲动的作用时,常选用兔作为实验对象,因为兔的主动脉神经在颈部自成一束,与迷走神经伴行,易于寻找和分离;观察心脏传导组织的电活动时,常选用狗的浦肯野氏纤维及兔的窦房结作为实验材料,因为狗的浦肯野氏纤维在心室内较为粗大,很容易解剖分离。在生理学的研究中,特别是基础理论研究中,合理地选择实验动物,常常是 实验成败的关键,但并非越是高等动物越好。在选择实验动物时,应根据实验需要,因地制宜地加以考虑。 2(动物的麻醉 在慢性实验或急性在体实验中,施行手术之前必须将动物麻醉。麻醉可使动物在手术或实验过程 中减少疼痛,保持安静,保证实验的顺利进行。麻醉剂的种类繁多,作用原理不尽相凤除了麻痹中枢神经系统以外,还会引起其他生理机能的变化,因此,在应用时需根据动物的种类以及实验或手术的性质慎重加以选择。麻醉必须适度,过深或过浅均会给手术或实验带来不良影响。麻醉的深浅可从呼吸、某些反射的消失、肌肉的紧张程度和瞳孔的大小加以判断。人们常用刺激角膜以观察角膜反射、夹捏后肢股部肌肉等简易方法了解动物的麻醉深度。适度的麻醉状态是呼吸深慢而平稳,角膜反射与运动反应消失,肌肉松弛。 (1)常用麻醉剂的种类及用法 麻醉剂可分为局部麻醉剂和全身麻醉剂两种。局部麻醉剂0(5,,1(0,盐酸普鲁卡因或2,盐酸可卡因用作皮肤或黏膜表面麻醉。在生理学实验中,多采用全身麻醉剂,如挥发性的乙醚,氟烷和非挥发性的巴比妥类、氨基甲酸乙酯等,以下分别加以介绍。 乙醚(ether)是一种呼吸性麻醉剂,适用于各种实验动物。在用乙醚麻醉猫、兔或鼠类时,可将动物放在特制的玻璃钟罩内,同时放人浸有乙醚的脱脂棉,动物在吸人后的15—20 min 开始发挥作用。在麻醉狗时,可用特制的麻醉口罩套在动物嘴上,慢慢将乙醚滴在口罩上进行麻醉。 乙醚对呼吸道有刺激黏液分泌的作用,为防止呼吸道堵塞,可用硫酸阿托品皮下或肌肉注射。乙醚麻醉有易于掌握、比较安全和作用时间短等优点,但麻醉后也容易苏醒,需要专人管理麻醉,以防过早苏醒或麻醉过量。 戊巴比妥钠(pentobarbitalsodium)适用于各类实验动物。常配制成5,的水溶液。一般由静脉或腹腔注射。戊巴比妥钠作用开始快,一次给药的麻醉有效时间约2,4 h,不需要特殊护理。如在实验中需要补充注射时,可再由静脉注射1,5剂量,仍可维持l,2 h。麻醉过量时,动物可产生严重的呼吸和循环抑制而导致死亡。 硫喷妥钠(pentothalsodium)为淡黄色粉末,水溶液不稳定,一般需在使用前配制,常用的浓度为:2(5,,5,,静脉注射,不宜作皮下或肌肉注射。静脉注射后作用较快,但苏醒也快,麻醉时间较短,一般约1(5 h。实验过程中可重复注射,以维持麻醉的深度。 氨基甲酸乙酯(ethylcarbamate)又称乌拉坦或脲酯。氨基甲酸乙酯易溶于水,常用浓度为20,,25,,适用于多数动物:狗、猫、兔多用静脉或腹腔注射,鸟类多用肌肉注射,蛙类用皮下淋巴囊注射。 氯醛糖(ehloralose)溶解度较小,常用浓度为1,,使用前须加热促其溶解,但不可煮沸。常采用静脉或腹腔注射,可维持麻醉状态3,4 h。与氨基甲酸乙酯合并常用于电生理实验中。 非挥发 性麻醉剂使用简便,维持时间较长,实验中无需专人照管,麻醉深度也较易掌握,因此为大多数实验室采用。其缺点是苏醒缓慢。 (2)麻醉剂的给药途径及方法 静脉注射 腹腔注射 肌肉注射 皮下注射 淋巴囊注射 3(动物的固定 急性在体实验的手术过程中,必须将麻醉动物稳妥地加以固定,以限制动物的活动,保证实验或手术的顺利进行。一般使用各种动物的头夹和固定绑带将动物固定于手术台上,但随手术部位和实验内容的差别,动物的固定方法也不相同。生理学实验中最常使用的动物固定方法有两种:背位(仰卧位)固定法和腹位(俯卧位)固定法,其中关键性的固定部位是头部和四肢。 (1)背位(仰卧位)固定法 将动物的背部直接接触手术台的固定方法。在呼吸、循环,消化及泌尿等实验中均采用此法。各类哺乳动物(兔、狗、猫等)的背位固定法大同小异,现以免为代表加以说明。 头部的固定:头部的固定通常使用头部固定夹,有兔头夹、猫头夹和狗头夹之分。使用时可将相应的头夹固定于手术台前端的直棒上,然后将已麻醉的动将兔头夹的半圆铁圈由背部夹持于动物的颈部,然后将金属加以固定,但不可过分压迫鼻部,以免影响呼吸。部有一直铁棒,其上有一半圆铁圈,均可上下移动,固定时把内,半圆铁圈的下方,再将直铁棒插入上下颌之间,犬齿 之后圈下移,适度地压在动物的鼻梁上,若无动物头夹,也可取线绳代替,将线绳压紧动物的上颌,固定于手术台上,方法简便易行,也可达到固定头部的目的。 四肢的固定:在头部固定之后,即可固定四肢,四肢用绑带(或四肢夹)固定。先将绑带按图打活结,再套进动物前肢的腕关节和后肢踝关节,将绑带收紧,后肢的绑带可直接拉紧分别扎于手术台两侧的木钩上。除特殊要求外,前肢的固定方法应为:将两前肢平放在胸部
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