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啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸腺苷的研究

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啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸腺苷的研究啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸腺苷的研究 啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸 腺苷的研究 2008No.17 ?24?SerialNo.194ChinaBrewingR esearchReport 啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸腺苷的研究 常景玲,任敏2,张军霞, (1.河南科技学院生物工程系,河南新乡453003;2.新乡学院应用生物系,河南新乡453000; 3.河南省食品药品检验所生化室,河南郑州450003) 摘要:啤酒厂废酵母经培养可转化次黄嘌呤核苷酸(IMP)生成三磷酸腺苷(ATP)...
啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸腺苷的研究
啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸腺苷的研究 啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸 腺苷的研究 2008No.17 ?24?SerialNo.194ChinaBrewingR esearchReport 啤酒酵母转化次黄嘌呤核苷酸生成三磷酸腺苷的研究 常景玲,任敏2,张军霞, (1.河南科技学院生物工程系,河南新乡453003;2.新乡学院应用生物系,河南新乡453000; 3.河南省食品药品检验所生化室,河南郑州450003) 摘要:啤酒厂废酵母经培养可转化次黄嘌呤核苷酸(IMP)生成三磷酸腺苷(ATP).研究了初始葡萄糖,磷酸盐,M,IMP底物浓 度,pH值等主要参数对转化率的影响以及纯化过程中洗脱液的选择.利用酵母体内的酶成功地对IMP进行了转化,结果表明,在优化 条件下ATP转化率稳定在90%以上,含量超过85%,纯度超过99%. 关键词:黄嘌呤核苷酸;三磷酸腺苷;啤酒酵母;转化 中图分类号:TQ926.4,0524文献标识码:A文章编号:0254—5071(2008)17—0024-03 StudyOntheprocessofconvertingIMPtoATPbybrewer’syeast CHANGJingling,RENMin,ZHANGJunxia (1.BioengineeringDepartmengHenanInstituteofScienceandTechnology,Xinxiang453003,China;2. AppliedBiologyDepartmengXinxiang Universi~Xinxiang453000,Cln’na;3.Biochemis己abo斌0ofHenanPmvinciamstimteofFbodan’lDmgC0n昀’Zhengzhou450003,China) Abslxa~:Wasteyeastinbeerbrewingcanbeusedtoconveghypoxanthinenucleotide(IMP)toAdenosin etriphosphate(ATP)aftercultivation.This studyfocusedontheeffectsofconcentrationsofinitialglucose,phosphate,Mg,substra~ofIMPandvalu eofpHontransformratioofBrewer’yeast convertingIMPtoATP.Besides,selectionoflotionamplifiedinpufific~ionprocesswasalsodiscussed.I MPwasconvertedtoATPsuccessfullyby usingenzymesinboayofyeast.Underoptimaltheconversioncondition,theresultsindicatedthatthecon vertingratioofATPkeptabove90%,the contentreached85%andthepuritywas99%. Keywords:IMP;ATP;brewer’syeast;conversion 三磷酸腺苷(ATP)又称腺嘌呤核苷三磷酸,为一种辅 酶.参与体内脂肪,蛋白质,糖,核酸及核苷酸的代谢,同时 又是体内能量的主要来源[1].次黄嘌呤核苷酸(IMP)近年 来国内产量增加,市场售价大幅降低,造成企业亏损.为此 课组利用酵母菌体内丰富的酶系统,由葡萄糖分解时 获得的能量,将IMP转化为一磷酸腺苷(AMP)通过底 物磷酸化获得ATP.就发酵而言,以高浓度磷酸抑制磷 酸酯酶的作用,利用IMP解除高盐浓度对发酵的障碍[2-3]. 本实验采用啤酒厂废酵母泥经冷冻,发酵培养分离出酵 母体内的酶对IMP进行转化,成功获得ATP.为IMP生 物转化ATP探索了一条新途径,同时提高了啤酒厂废酵 母泥的综合利用价值. 1和方法 1.1试剂 废啤酒酵母泥:新乡啤酒厂提供;IMP(质量分数? 98%):新乡制药股份有限公司;ATP(纯):北京双鹭 药业股份有限公司;201X7型阴离子交换树脂:上海华镇 科技贸易公司. 基础培养基:200mmol/L葡萄糖,250mmol/L磷酸二氢钾, 15mmol/L氯化镁,15mmol/L硫酸铵,pH7.0. 1.2仪器 50L发酵罐:江苏达森发酵设备工程有限公司;板框 压滤机:上海建华板框压滤机公司;树脂柱:自制;高效液 相色谱仪:日本岛津LC.10AS双泵系列;751.GW型紫外 可见分光光度计:安捷伦科技上海分析仪器有限公司;超 滤膜:英泰恒源膜工业公司;真空抽滤机,真空干燥箱. l-3方法步骤 1-3.1发酵酵母及酶液提取 以基础培养基为依据,分别设定KH2FO浓度50mmol/L, 15(knmol/L,250mmol/L,350mmol/L,450mmol/L,550mmol/L 6个梯度,葡萄糖浓度为50mmol/L,lOOmmol/L,150mmol/L, 20(~nrnol/L,250rnmol/L,300mmol/L,350mmol/L,400mmol/L 8个梯度,MgC12浓度为0mmol/L,5mmol/L,lOmmol/L, 5mmol/L20mmol/L25mmol/L,30mmol/L35mmol/L, 40mmol/L9个梯度,用HC1和NaOH分别调pH值为 2.0,3.0,4.0,5.0,6.0,7.0,8.0,9.08个梯度,配制培养基.50L 发酵罐121oC空消30min,按80%投料量,32%接种量接入 冷冻啤酒酵母泥,36?发酵培养至酵母菌自溶释放出酶 系,时间约2h.培养液用板框压滤机压滤分离酵母菌 残体,收集酶液. l-3.2酶促转化 分别取浓度为lOmmol/L,20mmol/L,30mmol/L, 收稿日期:2008.05.14 基金项目:河南省教育厅自然科学研究计划项目(2007180019) 作者简介:常景玲(1963.),女,河南新乡人,副教授,研究方向为发酵与生物药物. 研究中国酿造2008年第17期 总第194期?25? 40mmoFL,50mmol/L,60mmol/L,70mmol/L的IMP加入酶 液中,36%转化,用DEAE.纤维素薄板层析跟踪检查ATP 转化率,当转化率超过90%时,用工业盐酸调pH值为3.0, 3.5,灭酶终止反应,时间约5h.按1.7%~JH入硅藻土,板框 压滤收集转化液. 1-3-3提取纯化 上柱吸附ATP:转化液用NaOH调pH值为6.7,加纯 水稀释至0值为300左右,电导率9ms/cm,以流速70 mL/min上201X7型阴离子交换树脂柱,当流出液0 值为40左右,即上样饱和. 洗涤杂质:吸附饱和的树脂用流速80mL/min,pH2.0 的纯水冲洗,除去其中的葡糖糖,无机离子,杂蛋白等杂 质.当流出液pH值为2.0后换用流速0.31mL/min,pH2.0, 0.025mol/LNaC1缓冲液继续冲洗2h左右,除去IMP,中问 产物ADP,至流出液含60%的ATP时换用流速15mL/min~ 20mL/min,pH2.0,0.05mol/LNaC1缓冲液冲洗,进一步除 去IMP,ADP.流出液0值>70,ATP纯度>99%,此时 有大量ATP被洗脱下来,收集洗脱液,回收上柱. 洗脱ATP:采用流速3mL/min~5mL/min,pH2.0, lmol/LNaC1缓冲液洗脱去热原,收集0D28o/26o值>2.0,纯 度>99%的洗脱液.纯度<99%的洗脱液分段回收,以便 二次上柱,提高收率. 1.3.4活性炭脱色与超滤 按2gmATP洗脱液加药用粉末活性炭,搅拌30min, 真空抽滤脱色.脱色后的ATP原液用截断分子量为10000 超滤膜超滤除热原和大分子杂质等. 1_3.5酒精沉淀与研磨干燥 超滤后的ATP原液用NaOH调节pH值为4.0~4.5, 加3倍ATP原液体积95%vol冷冻酒精,使混合后酒精 浓度>70%vol,醇沉24h,收集ATP沉淀.ATP沉淀加 0.5倍沉淀物体积的无水乙醇研磨成粉末状小颗粒,用 砂芯漏斗抽滤至无水乙醇流下,用无水乙醚洗滤2,3次. P:O作干燥剂真空干燥10h. 1.3.6分析 IMP转化率测定:DEAE.纤维素薄板层析跟踪检查[6]. ATP含量及纯度测定:高效液相色谱(HPLC)法. 2结果与分析 2.1初始葡萄糖浓度对转化率的影响 发酵培养基不同初始葡萄糖浓度对转化率的影响结 果见图l. 由图l可知,初始葡萄糖浓度为50mmol/I~150mmol/L 时,转化率呈增长趋势,浓度150mmol/L时,转化率随葡 萄糖浓度增加而大幅度降低.葡萄糖浓度过高,产生葡萄 糖效应.在浓度为150mmol/L时转化率最高,随着啤酒酵 母菌的增殖而达到自溶,释放出足够量的能量和酶系供 IMP转化利用. 料 葡萄糖浓度/(retool?L-) 图1葡萄糖浓度与转化率的关系 Figure1.Relationshipbetweenglucoseconcentrationand conversionratio 2.2磷酸盐浓度对转化率的影响 发酵培养基添加不同KH2PO浓度对转化率的影响 见图2. 褂 磷酸盐浓度/(mmol~L) 图2不同磷酸盐浓度与转化率的关系 Figure2.Relationshipbetweenphosphateconcentrationand conversionratio 由图2中可知,KH2PO4浓度为0mmol/~100mmol/L 时,IMP转化率随磷酸盐浓度逐渐增大.在浓度> 100mmol/L,磷酸盐对转化率基本没有影响.即高磷酸盐 浓度对IMP转化生成ATP无抑制作用. 2_3M浓度对转化率的影响 发酵培养基中添加不同浓度MgC1:对转化率的影响 见图3. 糌 水 M浓度/(retool?L) 图3不同Mg浓度与转化率的关系 Figure3.RelationshipbetweenMgconcentrationandconversionratio ??????如加m0?????如加m??????如加 2008No.17 ?26?SerialNo.194ChinaBrewingR esearchReport 由图3可知,M浓度对转化率影响基本不大.通过 添加M可抑制ATP酶的活性,防止ATP的降解,实验 说明啤酒酵母泥中含一定量的Mg抖,培养基中添加少量 的M就能起到很好的效果. 2.4IMP浓度对转化率的影响 不同IMP底物浓度对转化率的影响结果见图4. 褂 辩 IMP浓度/(mmol?L-) 图4IMP浓度与转化率的关系 Figure4.RelationshipbetweenIMPconcentrationandconvemionratio 由图4可知,IMP浓度对酶促反应的影响较大,IMP 浓度为10mmol/I~30mmol/L时,转化率呈逐渐增高,浓度> 30mmol/L时转化率随其浓度增加而降低,浓度为30mmol/L 时转化率最高. 2.5pH值对转化率的影响 不同初始培养基pH值对转化率的影响见图5. 褂 辩 pH值 图5pH值与转化率的关系 Figure5.RelationshipbetweenpHandconvemionratio 由图5可知,pH值为2.0,7.0时,转化率随pH值增大 而增大,pH值>7.0时转化率逐渐降低.pH值影响反应体 系中一些必要营养物质和中间代谢产物的解离,引起酵母 代谢过程变化,使胞内酶系质量与比例发生变化,影响 转化率. 2.6优化转化实验 取上述各因素最优条件:发酵培养基为150mmol/L 葡萄糖,100lnrno1/LI~-I2PO4,10mmol/LMgC12,15mmo儿 (NH)SO,pH7.0,发酵温度36?,加入质量分数32%酵 母发酵培养,转化底物IMP浓度为30mmol/L.此条件 下进行5次平行实验,其平均转化率分别为92.5%,91%, 95%,94I3%,92%,优化实验结果稳定. 3结论 利用啤酒酵母转化IMP生成ATP,只要提供适量的 葡萄糖和磷酸盐,就能使转化ATP完成.很好地解决了 磷酸基团来源问题.转化ATP产物采用离子交换非连续 梯度洗脱法,杂质去除彻底,回收率稳定,可保证ATP 质量达国家注射用药标准.本工艺成本大幅度降低,废 啤酒酵母得到了很好的综合利用,为ATP工业化生产提 供了一条新的途径.通过对转化过程中的主要参数研究 和对洗脱液的选择,使ATP转化率稳定在90%以上,含 量超过85%,纯度超过99%. 参考文献: [1]段学辉,叶勤,张嗣良,增强细胞渗透性对酿酒酵母ATP合成活力 的作用研究[J].南昌大学学报:工科版,200l,23(3):86.91. [2]NAHALKAJ,L1UZ,GEMEINEPR,eta1.Nucleosidetriphosphams productionusingrecombinantEscherichiacoilentrappedincalcium pectategel[J].BiotechnolLett,2002,24:925-930. [3]KAZUYAI,TOSHITADAN.Methodforpmducingcytidine5’-triphosphate anditsapplication[P].PatentNumber:JP2002085087,2002—03-26. [4]SANTALUCIAJ,SHENLX,CAIZ,eta1.SynthesisandNMRof RNAwithselectiveisotopicenrichmentinthebases[J].NucleicAcids Res.1995,23(23):4913-4921. [5]SIMONES,GRABOWSKIs,WHITESIDESGM.PreparationofPhosp- hoenol-pyruvatefromD-O??3-PhosphoglyeerieAcidforUseinRegenera- tionofATP[~.JAmChemSoc.1989,Ill:8920—8921. [6]SIMONES,GRABOWSKIS,WHITESIDESGM.ConvenientSynthese ofCytidine5’-Triphosphate,Guanosine5’-Triphosphate,Uridine5’-Triph osphateandtheiruseinthepreparationofUDP-glucose,UDP-glucuronic acid.andGDP-marmose[J].JOrgChem,1990,55:1834—1841. [7]中华人民共和国卫生部药典委员会.中华人民共和国药典第二部[M]. 北京:化学工业出版社,2005:附录2O一85. ???加?如?如加m????如?如加m0
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