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小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测方法的初步建立

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小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测方法的初步建立小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测方法的初步建立 小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测 方法的初步建立 中国农业科学2006,39(4):819—824 ScientiaAgriculturaSinica—— 小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测方法的初步建立 张永强1..,吴晓东2刘雨田2张海涛,,王志亮2鲍恩东 ('南京农业大学动物医学院,南京210095:农业部动物检疫所/国家外来动物疾病诊断中心,青岛266032) 摘要:【目的】通过表达羊PrP核心片段,单抗制备,最后建立免疫组织化学检测羊痒病方法.【...
小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测方法的初步建立
小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测的初步建立 小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测 方法的初步建立 中国农业科学2006,39(4):819—824 ScientiaAgriculturaSinica—— 小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测方法的初步建立 张永强1..,吴晓东2刘雨田2张海涛,,王志亮2鲍恩东 ('南京农业大学动物医学院,南京210095:农业部动物检疫所/国家外来动物疾病诊断中心,青岛266032) 摘要:【目的】通过达羊PrP核心片段,单抗制备,最后建立免疫组织化学检测羊痒病方法.【方法】用PCR 方法从小尾寒羊基因组DNA中扩增编码PrP核心片段DNA,并克隆到硫氧还原蛋白融合表达载体pET一32a(+)上, 转化至EcoliBL21,IPTG诱导融合表达.以纯化的重组小尾寒羊PrP核心片段免疫PrP基因敲除小鼠,利用淋 巴细胞杂交瘤技术,制备羊核心片段单克隆抗体.【结果】通过上述方法,得到相对分子质量约为35kD的重组小 尾寒羊PrP核心片段,筛选出六株能稳定分泌针对小尾寒羊PrP核心片段特异单抗的杂交瘤细胞株.免疫组化试 验表明,其中4株可特异性识别羊痒病脑组织切片中耐PK酶消化的PrP,经5次重复试验表明:所制备单抗与对 照单抗F89结果完全一致.【结论】利用原核表达,单抗制备等技术制备出PrP特异性单克隆抗体,用笔者自己研 制的单抗作为核心试剂初步建立了羊痒病免疫组化检测方法. 关键词:小尾寒羊;痒病;单抗;免疫组化 EstablishmentoftheMethodofImmunohistochemistryAssayforthe DetectionofScrapiebyMonoclonalAntibody ZHANGYong.qiangl?, WUXiao.dong,LIUYu.tian,ZHANGHai.taol', WANGZhi.1iang,BAOEn.dongl (CollegeofVeterinaryMedicine,NanjingAgriculturalUniversity,Nanfing210095;2NationalDiagnosticCenterforExoticAnimal Disease/NationalAnimalQuarantineInstituteofMinistryofAgriculture,Qingdao266032) Abstract:[Objective]ThemethodofimmunohistochemistryassayforthedetectionofScrapiebymonoclonalantibodyWas established.[Method]GenomicDNAwasisolatedfromtheovinewholeblood.Usingthepolymerasechainreactiontoamplifythe corepartofPrPfromtheovineGenomicDNA.ByusingtherecombinantDNAtechnology,therecombinantproteinofcorepartof PrPWasobtained.Thenusingstandardmethodologyofmyelomacellfusion,monoclonalantibodieswereobtainedtodetectScrapie byimmunohistochemistry.[Result]耵 lerecombinantproteinofCOrepartofovinePrPWas0btainedandapanelofsixhybridomacell linessecretingspecificantibodiestocorepartofPrPrelatedtoScrapiewereestablishedfromonefusionbetweenmyelomaSp2/0 andspleencellsfrommiceimmunizedwiththepurifiedrecombinantprotein.FourhybridomaeellfinesCanbeUSedin immunohistochemistryassayforthedetectionofScrapie.[ConclusionI111erecombinantcorepartofPrPandspecialMabsWas obtainedbyusingrecombinantDNAandmyelomacellfusiontechnology.Sothespecialmonoclonalantibodydevelopedinauthors universitycanbeusedtodetectofScrapiebyimmunohistochemistry. KeyWOrds:Ovine;Scrapie;Monoclonalantibody;Immunohistochemistry 0引言 【本研究的重要意义】传染性海绵状脑病 (transmissiblespongiformencephalopathies,TSE)是 存在于人类和动物界的一类中枢神经系统慢性退化性 致死性疾病,又称朊毒体病.羊痒病(scrapie)的发现 已有二百多年的历史,是最先(1936年)被认识的 TSE.,.免疫组化(immunohistochemistry,IHC)检 收稿日期:2005—10一O5;接受日期:2006—02—15 基金项目:国家自然科学基金项目(C02030606)和农业部948项目(2001—366)资助 作者简介:张永强(1977一)男,山东邹平人,博士研究生,研究方向为羊痒病的研究.通讯作者王志亮(1966一),男,山东莱阳人,研究员,博士, 研究方向为动物传染病研究与检测工作.Tel,Fax:0532—7839922;E—mail:Zlwang111@yahoo.tom.cn.通讯作者鲍恩东(1963一),男,内蒙 古赤峰人,教授,博士,研究方向为动物病理解剖和免疫病理学的教学和研究.Tel:025—84395316;E—mail:bendong@njau.edu.cn (注:l,2同为第一合作单位,不分先后,共同享有知识产权) 中国农业科学39卷 测为目前最有效的检测方法,其原理是:组织切片经 PK酶消化以后prpc被全部消化,而PrPsc中耐PK酶 消化的部分(PrP27—30)保留下来『2】.由于PrW核心 片段与PrPs具有相同的蛋白序列,制备PrW核心片 段的单克隆抗体,可用于痒病的免疫组化检测.而中 国没有自主知识产权的羊prpc核心片段的单克隆抗 体,常规检测需要购买国外昂贵的核心试剂,成本较 高.本研究目的在于研制羊核心片段单克隆抗体取代 进口昂贵单抗作为核心试剂,进行普查.【前人研究进 展】引起TSE的蛋白质称为朊蛋白或朊毒体(pfion), 分为细胞型(PrW)和致病型(PrP)Ill~TSE是由于 prpc转变成PrPs,PrP在中枢神经系统沉积所致.PrW 作用于中枢神经系统,引起神经元的细胞调亡,导致 朊毒体病.王志亮等『4】通过将牛PrP重组蛋白免疫PrP 基因敲除小鼠得到单抗4C11,并且建立了中国牛海绵 状脑病免疫组化检测方法;赵丽,王健伟等l5研究PrP 多肽的抗原性以及不同偶联方法对多肽免疫原性的影 响,认为PrP多肽可作为半抗原刺激小鼠强烈的免疫 反应,不同偶联方法.不同肽段抗原性不同.李运敏 等『6】用大肠杆菌表达的牛朊病毒成熟蛋白免疫新西兰 白兔,获得了抗体T1,可检出羊搔痒因子263K毒株 感染金黄地鼠的鼠脑中PrPsc蛋白.【本研究切入点】 农业部动物检疫所王志亮等已经用自己制备的单抗建 立了BSE检测方法,但羊痒病检测方法中国还没有自 己的核心试剂.本研究正是此基础上在王志亮,鲍恩 东,吴晓东等人的指导下进行此项研究的.【拟解决的 关键问题】通过PCR从小尾寒羊基因组中扩增PrP核 心片段基因,构建小尾寒羊prpc核心片段表达重组质 粒PrP-pET-32a(+),在大肠杆菌中原核表达,分离纯 化融合蛋白,以纯化的重组小尾寒羊prpc核心片段免 疫PrPc基因敲除小鼠(PrPc.nullmice),利用淋巴细 胞杂交瘤技术,制备针对小尾寒羊PrPc核心片段的单 克隆抗体,并用Western—blot检测羊脑组织中的PrPc 以及免疫组化方法检测羊痒病阳性脑组织切片中的 PrP,为建立羊痒病免疫组化检测提供实践依据. 1与方法 1.1PrP.核心片段在大肠杆菌中的表达 1.1.1菌种和试剂菌株E,coliDH5Q,EcoliBL2l (DE3),质粒pET-32a(+)为农业部动物检疫所外 来病检测中心实验室保存;TaqDNA聚合酶,T4DNA 连接酶以及限制性内切酶购自大连宝生物公司.DNA 纯化试剂盒(SpinPrepGelDNAKit),Ni+离子柱亲和 层析纯化试剂盒(Ni—NTAHiBindPurificationKit),测 序通用引物(1_7promoter)均为Novagen公司产品. 鼠抗羊朊蛋白单克隆抗体F89由农业部动物检疫所外 来病检测中心刘雨田提供;辣根过氧化物酶标记羊抗 鼠IgG+IgM为SIGMA公司产品.显色底物DAB为 华美公司进口分装;其余常规试剂为国产分析纯试剂. 1.1.2引物根据已报道小尾寒羊PrPc基因序列rjJ, 用PrimerPremier5.O0软件设计引物,并分别在基因 的5端和3端引入EcoRI和HindHI位点,下游引物将 原序列TATrAC突变为TAATAA,产生两个终止密码 子: 上游引物5'-TCGGAATI'CGGTCAAGGTGGT. AGC.3EcoRI 下游引物5,-GGCAAGC1TrGTI'ATI~AAGCCT- GGGA13HindIII 1.1.3小尾寒羊PrPc核心片段表达质粒PrP-pET-32a (+)的构建取新鲜的小尾寒羊血液20rnl,提取基 因组DNA.用PCR方法扩增小尾寒羊prpc核心片段 基因.扩增反应条件为:94?,7min;94?,1min; 55?,0.5min;72?,0.5min,30个循环;72?,10 min.碱裂解法提取质粒pET-32a(+).用限制性内切 酶EcoRI和HindIII酶切pET-32a(+)和PCR产物, 试剂盒SpinPrepGelDNAKit纯化酶切产物.按载体 与插入片段比为l3混合,T4DNA连接酶连接,构 建表达质粒PrP-pET-32a(+),TSS法转化E,coliDH5tz. 使用测序通用引物T7promoter菌落PCR筛选 PrP-pET-32a(+)阳性克隆,序列分析. 1.1.4小尾寒羊prpc核心片段Trx—PrP27—30的诱导 表达PrP-pET-32a(+)转化表达菌E.coliBL21 (DE3),挑取10个菌落接种LB培养基(100g.ml. 氨苄青霉素),37~C活化过夜,按1:10的比例接种新 鲜TB培养基(100lag,ml氨苄青霉素),25"C培养至 OD600约为1.5.加入IPTG诱导1h,3h,4h,5h 和过夜,分别取菌液8Hl进行12%SDS—PAGE电泳鉴 定. 取1rnlE,coliBL21表达菌超声波裂解,按 Novagen公司((pETSys~mManua1))提供的方法,研 究融合蛋白Trx—PrP27—30在细胞周质,细胞质和包涵 体中的分布.12%SDS—PAGE电泳分析,Quantity One一4.40软件灰度扫描,计算融合蛋白Trx—PrP27—30 占总蛋白的相对含量. 1.1.5重组融合蛋白的纯化及蛋白切割,回收按 1.1.4方法用100ml菌体,诱导4h,收集菌体,M 4期张永强等:小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检垦生垄! 离子亲和层析纯化试剂盒裂解菌体,提取包涵体蛋白, 裂解包涵体,纯化,回收融合蛋白Trx?PrP27—30,冻 干保存.12%SDS.PAGE凝胶电泳分析. 1.1.6Western—Blot鉴定融合蛋白Trx.PrP27?30参 照文献[6】的方法将融合蛋白Trx.PrP27—3O进行 SDS—PAGE电泳,转移蛋白至NC膜,5%脱脂奶封闭, 与F89单抗一起40C孵育2h,洗涤,加入兔抗鼠酶标 二抗进行反应,DAB显色. 1.2PrW核心片段单克隆抗体及腹水单抗的制备 1.2.1实验动物PrW一基因敲除小鼠引自瑞士L5J; Balb/c小鼠购自山东中医药大学实验动物中心. 1.2.2试剂弗氏完全佐剂,弗氏不完全佐剂,高糖 型DMEM粉,融合用PEG(MW4000)均为sIGMA 公司产品;次黄嘌呤,胸腺嘧啶核苷和氨基喋呤为 Gibco公司产品;其余常规试剂为国产分析纯试剂. 1.2.3骨髓瘤细胞SP2/0的准备细胞融合前一周 复苏冻存于液氮中的SP2/0,在20%IJ~牛血清HT培 养基和5%co~培养箱中培养,每天观察生长状况,融 合前调整至对数生长期. 1.2.4动物免疫与细胞融合将纯化的重组小尾寒 羊PrPc核心片段与等量弗氏完全佐剂充分乳化后,腹 部皮下多点注射6周龄PrP基因敲除小鼠,20g/只; 2周后腹部皮下多点注射相同剂量弗氏不完全佐剂充 分乳化的纯化重组蛋白;14d后腹腔追加注射5g纯 化重组蛋白,3d后无菌取脾脏进行细胞融合I7】. 1.2.5阳性杂交瘤细胞的筛选与腹水单抗制备参 照文献【8],采用间接ELISA方法对长有杂交瘤细胞的 孔进行筛选,纯化的重组小尾寒羊Pr]Pc核心片段为包 被抗原.初步检测为阳性的孔,进行24孔板扩大培养; 检测仍为阳性的孔,采用有限稀释法进行2次亚克隆; 取形态良好,生长旺盛的单克隆细胞6孔板扩大培养, 一 部分用于液氮冻存,另一部分用于单抗腹水的生产. 取青壮年Balb/c小鼠,制备腹水单抗. 1.2.6单抗特异性鉴定Western—Blot参照文献【6】, 重组小尾寒羊PrW核心片段SDS—PAGE电泳,转印至 NC膜,5%脱脂奶4"C封闭过夜,在腹水单抗中孵育2 h,酶标二抗中孵育1h,DAB显色.腹水单抗做1: 2000稀释.酶标二抗做1:8000稀释. 1.2.7单抗检测牛羊脑组织中的PrW参照文献[6】, 提取羊脑组织中的蛋白质,进行SDS.PAGE电泳并转 印至PVDF膜;5%脱脂奶4"C封闭过夜,TBST洗涤 5次,3rnjn/次;加入腹水单抗1.5h,TBST洗涤1O 次,3rnjn/次;加入生物素标记二抗1h,TBST洗 涤10次,3min/次,采用化学发光法进行X底片曝光. 1.3免疫组化检测羊痒病方法的初步建立 1.3.1试剂免疫组织化学显色系统,封片剂为 DAKO公司产品;蛋白酶K及其阻断剂为SIGMA公 司产品;对照用单抗F89为美国农业部动物病研究所 传染性海绵状脑病实验室赠送;其余为常规国产分析 纯试剂. 1.3.2阳性及阴性样品羊痒病阳性脑组织样 品引自美国农业部动物病研究所传染性海绵状脑病实 验室,阴性脑组织样品采自国内健康小尾寒羊. 1.3.3免疫组化检测羊痒病方法的操作规程方法 参照农业部动物检疫所外来病检测中心制定的国家标 准(GB,1rl9l80—2003). 采样:固定牛头,使脑部暴露,取出整脑. 固定:将脑组织浸入l0倍体积固定液中,7d后 更换固定液, 制备石蜡切片:将固定好的组织块修整,选取脑 闩部放入流水中漂洗24h;脱水:75%乙醇中2h,85% 乙醇中2h,95%乙醇I中2h,95%乙醇II中,100% 乙醇I中2h,100%乙醇II中2h;透明:香柏油12h, 二甲苯I中1h,二甲苯II中1h;浸蜡:软蜡中4Omin, 硬蜡中2h;放入包埋盒包埋,冷却过夜;切片;载玻 贴片. 脱蜡:二甲苯I,II依次10min,100%乙醇I, II,95%乙醇,85%乙醇,75%乙醇依次2min,自来 水2min,PBS洗3次(5min/次). 蛋白酶K消化:将切片放入蛋白酶K中37?消 化,15min. 水化高压:121?,20min,自然冷却,PBS洗3 次(5rain/次). 内源酶灭活:甲醇一双氧水中室温处理5min, PBS洗3次(5min/次). 封闭:加5%猪血清到切片上,湿盒中室温20min. 单抗孵育:将切片放入1:12000稀释的单抗溶 液中37~C孵育4h或4?过夜;PBS洗3次(5min/次). 显色:操作按DAKO试剂盒. 封片:DAKO公司专用封片剂封片. 结果判定:光学显微镜下观察切片.阳性结果: 脑闩部的迷走神经背核,孤束核和三叉神经脊束核等 处出现对称性紫红色染色颗粒,则该样品判为Scrapie 阳性.反之为阴性. 2结果与分析 中国农业科学39卷 2.1重组小尾寒羊PrP.核心片段在大肠杆菌中的表 达 诱导表达结果显示出1条约35kD的蛋白条带. 随时间的增加表达量逐渐增加,4h融合蛋白可占细菌 总蛋白的40%,过夜诱导融合蛋白表达产量最高可占 细菌总蛋白的46.9%. 2.1.1融合蛋白Trx—PrP27—30的分布融合蛋白 Trx—PrP27—30几乎全部分布于包涵体中,细胞周质和 细胞质中几乎无Trx-PrP27—30(图1). 48 33 25 1为pET-32a(+)对照;2为渗透休克上清;3为全菌裂解上清;4和5 为全菌;6和7为包涵体;M为蛋白分子量标志;8和9为纯化融合蛋 白 1ispET-32a(+)control:2isosmoticshocksuspension~3iscelllysis suspension:4and5arewholecell:6and7areinsulionMispro~in illarklgr~8and9arepurificationoffusionproteins 图1融合蛋白Trx-PrP在细菌,coliBL21(DE3)内的 分布 Fig.1ThecellularlocalizationofTrx-PrP27-30inE.cofiBL21 (DE3) 2.1.2Western—Blot鉴定小尾寒羊P核心片段经 Western—Blot鉴定,在35kD处出现阳性条带,证明所 得蛋白为小尾寒羊P核心片段Trx-PrP27—30(图2). 2.2PrP.核心片段特异性单克隆抗体制备 2.2.1阳性杂交瘤细胞筛选结果经筛选,共选出6 株能稳定分泌针对重组小尾寒羊Pr]Pc核心片段特异性 单克隆抗体的杂交瘤细胞株(2H3,4C6,5Fll,7F1, 7F8和7Fl1).腹水单抗均具有很好的ELISA反应性. 2.2.2单抗特异性鉴定结果图3结果显示,在35 kD处出现阳性条带,与重组小尾寒羊Pr】Pc核心片段 相对分子质量一致,说明腹水单抗2H34C6,'5F11, 7F1,7F8和7Fll均可特异识别重组小尾寒羊Pr]Pc核 心片段. 2.2.3Western—Blot检测健康羊脑组织中Pr]Pc结果 图4结果显示,在相对分子质量37到27kD处 2H3,4C6,5Fll,7F1,7F8和7Fll均出现阳性条带, 说明6株单抗均可特异识别健康羊脑组织中的PdPc. 2.3单抗介导羊痒病的免疫组化检测方法 图5结果显示,在单抗2H3,4C6,5F11,7F11 检测的阳性切片中观察到脑闩灰质区出现成片红色染 色颗粒.在光镜下可观察到在脑闩灰质区呈对称分布, 与国际兽疫局(Ore)规定的TSE阳性描述【9]完全符 合,阴性对照切片此处无此现象.经5次重复实验, 结果一致.说明单抗2H3,4C6,5F11,7Fll可特异 性识别羊痒病脑组织中PdPsc. 12M3456M78 1和2为Western.Blot鉴定包涵体;3和4为We,stem.Blot鉴定纯化融合 蛋白;5和6为包涵体;7和8为纯化融合蛋白;M为蛋白分子量标志 1and2areinsuliondetectedbyWestem-Blot:3and4arepurificationof fusionproteindetectedbyWestern-Blot:5and6areinsulion:7and8are purificationoffusionprotein:Misproteinmarker 图2Western—blot鉴定重组小尾寒羊prp=核心片段 Fig.2Western-blotidentification 1【I) 48 33 25 1,2,3,4,5,6泳道分别为7F8,5Fll,4(26,2H3,7F1和7Fll 1,2,3,4,5.6are7F8,5Fll,4C6,2H3.7F1and7Fl1separately 图3Western—bIot鉴定腹水单抗 Fig.3Western-blotidentification D;.罟81 9 4期张永强等:小尾寒羊骚痒病单抗制备及免疫组化检测方法的初步建立823 图4Western-bIot检测健康羊脑组织中prp~ Fig.4Western—blotdetectionPrPcofovine 3讨论 目前,国际上权威的TSE检测方法为Western—blot 和IHC,都是以单抗介导的抗原,抗体反应,因此制 备PrPc核心片段的亲和力强,特异性好的单抗成为所 有工作的重点,然而PrP蛋白在很多动物中是一个非 常保守的蛋白,容易产生免疫耐受,因此单抗制备也 是一个难点.SilkeHarmeyer等【?】人工合成羊Pr】Pc16 段小肽,偶联载体抗原,利用淋巴细胞杂交瘤技术筛 选单抗,分别得到针对89—104,145—163,209—228肽 段的单抗.Alejandro等【】4]~lJ备的单抗2A11(针对牛 A.2H3单抗IHC40~;B,C,D.分别为4C6,5F11,7F11单抗IHC100×:E.F89单抗阳性 对照IHC100×;E阴性对照,IHC100× A.Detectedbymonoelonalantibody2H3,IHC40x;B,C.Dweredetectedbymonoelonalanti body4C6.5F11,7F11separately,IHC100x,EandFispositiveand negativecontrolseparately,positivecontrolsampledetectedbymonoelonalantibodyF89,ne gativecontrolsampledetectedwithoutmonoelonalantibody,IHC lOOx Fig.5 图54种单抗检测羊痒病脑组织中的PrP s仃ydetectionofPrP~bymonoclonalantibody2H3,4C6,5F11and7F11inScrapie PrP171—179,羊163—171)在mC中对经PK酶消化的 BSE切片敏感,但检测不到无PK酶消化的TSE切片 和正常牛脑中的PrP.另外,有人曾报道单抗15B3只 识别PrW,对PrPc不敏感【l51.EustacheParamithiotis 等[161认为因蛋白质结构改变而导致的疾病中,有些内 部的氨基酸序列可能会暴露,他们制备了能选择性识 别PrW的单抗(针对朊蛋白序列中在3个位置出现的 ryr-ryr-Arg).最近,AndreaMatucci等人【l71通过将人 PrP23—231免疫Prt~)/O基因敲除小鼠得到了两株单抗, SA65识别位点在ahelixl,特点是在包埋后用胶体金 进行的免疫检测成功后,能在超微结构下标记PrP, 利用此单抗可研究PrP在黏膜上亚细胞水平的定位, 建立更有效的诊断技术;SA21单抗识别位点在 ahelix2中的165,185之间,其特点是只可识别无糖 基化PrP和在第2位出现单糖基化的PrP,可用于研 究prion病中糖基化的作用和探索在不同的TSE中每 一 个位点如何糖基化的. 笔者通过PCR扩增,大肠杆菌表达,单抗制备, 免疫组化方法一系列试验,系统的建立了中国羊痒病 的检测方法.同时,由于制各单抗所用抗原为中国小 中国农业科学39卷 尾寒羊PrPc核心片段序列,因此单抗特异性更高,更 适合中国羊痒病的检测,而且由于被免疫动物用的是 瑞士的PrPc基因敲除小鼠,因此也保证了单抗的高亲 和力. 4结论 LiuXEApplicationofMonoclonalAntibodyinAgriculture.He fei:An'huiTechnologyPress,1994.(inChinese) [91刘雨田,邹艳丽,王志亮.免疫组化法检测我国疯牛病结果初报. 中国动物检疫,2002,l9(4):25-27. LiuYZouYL,WangZL.APreliminaryreportonBSEdetection 本实验通过PrPc核心片段原核表达,杂交瘤细胞 融合技术制备单抗,最后初步建立了中国羊瘁病的免… 疫组化检测方法,经5次重复免疫组化检测阳性和阴 性切片,以笔者所制备单抗为核心试剂与国际通用单 抗F89结果完全一致.初步建立了中国自主知识产权 的羊痒病免疫组化检测方法.为有效抵御羊痒病的入 侵提供了强有力的物质和技术保障. Reforoncos 【l】AguzziA,PolymenidouM.MammalianPrionBiology:Onecentury ofevolvingconcepts.Cell,2004.116:3l3-327. 【2】王小军,张海涛,鲍恩东.牛海绵状脑病(疯牛病)的诊断技术 和神经病理学研究现状.畜牧与兽医,2002,34:35—37. WangXJ,ZhangHBaoED.Diagnostictechnologyofbovine spongiformencephalopathy(madcowdisease)andtheresearchfor neuropathology.AnimalHusbandryandVeterinaryMedicine, 2002, 34:35-37.(inChinese) 【3】PontiW,SalaM,PolleraC,BraldaD,Poli1G.BareggiS.Invivo modelfortheevaluationofmoleculesactivetowardstransmissible spongiformencephalopathies.VeterinaryResearchCommunications, 2004,28:307—310. 【4】AguzziA.Understandingthediversityofprions.NatureCellBiology. 2004,6(4):290-292. [51RossiD,CozzioAEckhzarF'KleinMA.RiilickeAguzziA. 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