CXCR4_在肺癌转移中的作用及其机制研究
· ll9O· 匡堂盘盍 生 旦筮堕鲞筮 !塑 丛 丛 11
, 2005.Vol 85.N 17
CXCR4在肺癌转移中的作用及其机制研究
苏丽萍 张进平 徐焕宾 陈晋 王缨 储以微 熊思东
【摘要】 目的 探讨CXCR4在肺癌转移中的作用及其机制。方法 将CXCR4不同表达水平
的肺癌细胞(95C、95C-pC、95C-X4、95D、95D-pC、95D-ASX4)接种于裸鼠皮下并分析其转移能力。分
别通过趋化侵袭实验、明胶酶谱法、黏附实验、RT-PCR法检测 CXCR4/SDF-1对肺癌细胞迁移、基质
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· ll9O· 匡堂盘盍 生 旦筮堕鲞筮 !塑 丛 丛 11
, 2005.Vol 85.N 17
CXCR4在肺癌转移中的作用及其机制研究
苏丽萍 张进平 徐焕宾 陈晋 王缨 储以微 熊思东
【摘要】 目的 探讨CXCR4在肺癌转移中的作用及其机制。方法 将CXCR4不同
达水平
的肺癌细胞(95C、95C-pC、95C-X4、95D、95D-pC、95D-ASX4)接种于裸鼠皮下并
其转移能力。分
别通过趋化侵袭实验、明胶酶谱法、黏附实验、RT-PCR法
CXCR4/SDF-1对肺癌细胞迁移、基质
金属蛋白酶(MMP-2)活性、黏附能力、生长相关癌基因-ot(GRO-a)表达的调控;通过流式细胞术和共
聚焦显微镜观察肺癌细胞内纤维肌动蛋 白的合成和聚合情况;Western印迹分析 CXCR4/SDF.1对
ERK1/2磷酸化的影响。结果 CXCR4不同表达水平的肺癌细胞在裸鼠体内具有不同的转移能力,
95D.ASX4组有2/5的小鼠发生了转移,其肺转移结节的数目明显少于95D、95D-pC组(P=0.044)。
CXCR4特异配体 SDF.1ot可以诱导肺癌细胞的迁移和细胞骨架蛋 白纤维肌动蛋 白的合成和聚合;
SDF.1et促进肺癌细胞 MMP-2活性、黏附能力和 GRO-a表达的增加;CXCR4中和抗体可以在一定程
度上抑制这些作用。SDF.1a可以诱导 ERK1/2的磷酸化。结论 肺癌转移在一定程度上依赖于
CXCR4/SDF.1的相互作用,他们通过调控肺癌细胞的运动性、MMP活性、黏附能力及 GRO-a的表达
参与肺癌的转移。
【关键词】 肺肿瘤; 肿瘤转移; 受体,CXCR4
The role of CXCR4 in lung~811o~r metastasis and its possible mechanism SU H-ping.ZHANG Jin-
ping,XU Huan-bin,CHEN Jin,WANG Ying,XIONG Si-dD, Department of Immunology,Shanghai
Medical College ofFudan University,Shanghai 20032,China
Corresponding author:XIONG Si-dong
【Abstract】 0bjc~2tive To investigate tlle role of CXCR4 in tlle metastasis of human lung cancer and
its possible mechanism.Me~ods Lung cancer cells of tlle lines 95C and 95D witll hish or low metastatic
ootendal were transfeted witll CXCR4 antisense plasmid pcDNA-ASX4,whole length eukaryotic expression
plasmid pcDNA-CXCR4(95D-ASx4 and 95C-x4 cell lines),and corresponding plasmid pcDNA3(95C-pC
and 95D.pC cell lines).95C,95C-pC,95C-x4,95D,and95D-pC cells were i~ected subcutaneously into
Balb/c nu/nu mice.4~5 mice in a group.The mice were observed twice a week.Ten weeks later tlle mice
were killed and tlle tumor in situ and tlle lungs were taken out to undego histological examination.Th e effect
of CXCR4 expression on tlle cell migration,MMP-2 activity,adhesion and GRO-a expression of lung cancer
cells were detected by chemotaxis and chemoinvasion assay,zymography,adhesion assay and RT-PCR
respectively. I e polymerization of F-actin was measured by FACS and confocal microcopy.Western blotting
was used to detect the phospharylation of ERK1/2 in 85D cells Results Metastasis was not found in the
Il1ice iniected witll 95C and 95C.pC cells,and was seen in 2/5 ofthe mice injected with 95C-x4 cells,3/4
0ftlle mice injected witll 95D and 95D.pC cells,2/5 of tlle mice i~ected with 95D-ASx4 cells,however,
tlle number of metastatic nodes in tlle lun gs of 95 D.ASX4 group was significantly less than tllose in tlle 95 D
and 95D.pC groups(P=0.O44).SDF-1a,aCxCR4 specific hgand,inducedthemigratory responseand F-
actin"polymerization in tlle lung cancer cells:SDF.1 a promoted tlle MMP-2 activity,tlle adhesion to vasc~
endothelial cells and GRO.a expression:and neutralizing CXCR4 antibody inhibited these effects to some
degre e_Moreover.SDF.1a induced tlle phosphorylation of ERK1/2 in human lung cancer cells.Conclusion
Metastasis of human lun g cancer depends on,to some degee,tlle interaction of CXCR4 and SDF-1 that are
involved in t}Iis proeess by regulating the active locomotion,MMP-2 activity,adhesion ability or GRO-a
expression.
【Key words】 Lung neoplasms; Neoplasms metastasis; Receptors,CXCR4
基金项目:国家教育部科学技术重点资助项目(O3o63);国家杰
出青年科学基金资助项目(39925031)
作者单位:200032复旦大学上海医学院免疫系 教育部分子医学
重点实验室 上海基因免疫和疫苗研究中心
通讯作者:熊思东
. 论 著 .
趋化因子是一大类具有趋化作用的细胞因子,
根据其 N端前两个半胱氨酸(Cys)的数目和排列方
式不同分为 CC、CXC、C和 CX3C四个家族,相应地
趋化因子受体依据结合的趋化因子类型不用,划分
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. N。.17
为 CCR、CXCR、XCR和 CX3CR L1]。CXCR4是近年
来倍受关注的一个受体,除了在造血生成、机体发育
和HIV感染中发挥着重要作用外,最近的研究显示
CXCR4与其配体SDF一1的相互作用与某些肿瘤的
进展和抑制有关 。我们已有的工作发现CXCR4
在发生转移的肺癌组织中高表达,同时在不同转移
潜能的肺癌细胞株中也发现CXCR4的差异表达,这
均提示了CXCR4与肺癌转移有关 J。本研究借助
于裸鼠人肺癌皮下移植瘤 自发转移模型研究了
CXCR4表达对肺癌细胞转移能力的影响并对其参
与肺癌转移的相关机制进行探讨。
材料与方法
一
、材料
逆转录酶(MBI),TaqDNA多聚酶(Biostar,加拿
大);Fibronectin、Matrigel、TRITC—phalloidin(Sigma,
美国);SDF.1 (Cytolab,以色列);CXCR4抗体
(MAB173)(R&D,美国);ERK1/2和 P—ERK1/2抗
体(Cell Signaling,美国);6~8周龄雄性BALB/c裸
小鼠购自中科院上海动物实验中心。高、低转移潜
能肺癌细胞株95C、95DL6' 由本校分子遗传室提
供。95D.ASX4和95C.X4分别为转染 CXCR4反义
质粒 pcDNA.ASX4和全长真核表达质粒 pcDNA—
CXCR4(图 1),并经 G418筛选而获得的稳定转染细
胞株,95C.pC和 95D—pC为其相应的 pcDNA3转染
质粒对照细胞株,以上细胞株均由本室建立。
二、方法
1.RT.PCR:(1)细胞制备:将95D细胞按 5×
10 /孔预先接种在6孔板中,加入新鲜的无血清培
养基,培养24 h后,加入终浓度 100 rig/ml SDF一1 ,
分别于0⋯1 3 6 h后收集孔内细胞,然后提取细胞
总RNA,进行GRO.仪表达分析。(2)RT—PCR:采用
异硫氰酸胍.酸性一步法提取细胞总RNA,按说明
B
进行 cDNA第一链的合成。然后以cDNA为
进
行 PCR。根据 GeneBank中 CXCR4、GRO. 的基因
序列 设 计 引 物,CXCR4上 游:5 AATCTI'CCT.
GCCCACCATCT 3 ,下游:5 GACGCCAACATAGAC.
CACCT 3 ,产物大小为 367 bp。GRO. 上游:5
GCCCAAACCGAAGTCATAG 3 ,下 游:5 TAA
GCGATGCTCAAACACATFA 3 ,产物大小为249 bp。
同时 以人 GAPDH 为 对 照,上 游:5 CTGCAC.
CACCAACTGC,rrAG 3 ,下游 :5 CCACTGACACGTo
TGGCAGTG 3 ,产物大小为 275 bp。PCR产物采用
凝胶图象扫描仪拍照并进行条带灰度分析(天能
UV一2000,上海),以与 GAPDH的比值表示其相对
含量。
2.流式细胞术分析细胞表面 CXCR4表达:用
抗CXCR4抗体孵育细胞,4℃孵育30 min,PBS洗3
遍,加入荧光素异硫氰酸酯(FITC).羊抗鼠IgG,4℃
孵育30 rain,PBS洗3遍,流式细胞仪分析。设置同
型对照。
3.细胞体内转移能力测定:收集处于指数生长
期 的 95C、95C—pC、95C—X4、95D、95D-pC和 95D—
ASX4细胞,以8×10。/400 接种于裸小鼠肩胛部
皮下,每组4~5只,每星期观察2次,10周后统一
处死。分离裸小鼠原位肿瘤和肺脏,解剖显微镜下
观察肺转移情况,然后将肿瘤和肺脏固定于中性缓
冲福尔马林液中,制成 5 m厚的石蜡切片,HE染
色。
4.趋化侵袭实验:用48孔趋化小室,参照文献
[4]。抑制实验时,细胞分别与 CXCR4中和抗体
(50 g/m1)37~C孵育30 min,然后按文献方法作趋
化侵袭试验。每组设置3个复孔。趋化膜固定后行
HE染色,计数光学显微镜下 5个视野(×100)的细
胞数。
5.明胶酶谱实验:将 5×10 /孔细胞预先接种
图1 CXCR4反义和全长表达质粒图谱 A.CXCR4反义表达质粒;B.CXCR4真核全长表达质粒
于96孔板中,加入新鲜的
含有或不含有 SDF一1 (1130
ng/m1)无血清培养基,继续
培养 24 h,收集细胞上清,
根据细胞计数调整各组细
胞培养上清液中的蛋白浓
度。参照文献[8]检测细胞
明胶酶活性。
6.黏附实验:将 ECV一
304细胞预先接种于96孔
板中,加入100 含SDF—
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let(100 ng/m1)新鲜培养液,于室温下作用20 min。
洗涤备用。收集95D细胞,按4×10 /ml悬浮于1
ml RPMI一1640培养液 中,加入 5 (10 mg/m1)
calcein AM,于37℃孵育30 min后,洗涤3次,分别
于每孔中加入100 l,每组3个复孔,37oC、5%CO
孵箱中孵育20 min后,轻轻洗去未黏附细胞。收集
细胞,用流式细胞仪检测。
7.细胞骨架蛋白含量和聚合分析:将95D细胞
按5×10 /孔接种在 0.01%多聚赖氨酸处理或未处
理的6孔板中,加入新鲜的无血清培养基,继续培养
24 h,加入终浓度 100 ng/ml SDF—let,作用 5~15
min后,参照文献[4]进行纤维肌动蛋白检测。
8.Western印迹检测 ERK1/2磷酸化:将 95D
细胞预先接种于6孔板中,于无血清培养液中过夜
培养,加入 100 ng/ml SDF—let,分别在 0、5、15 min
于每孔中加入 200 上样缓冲液,收集细胞裂解
物,样品定量后,沸水煮5 min,然后用 10% 十二烷
基磺酸钠一聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS—PAGE)分离后
电转移至硝酸纤维素膜,5%脱脂牛奶室温封闭1 h,
弃去封闭液,加入1:1000稀释的兔抗人ERK1/2和
磷酸化ERK1/2,4~C反应过夜,TBST漂洗3次。加
入羊抗兔IgG—HRP(1:50稀释),室温作用1 h,TBST
漂洗3次。加入 DAB显色液,等阳性区带显色清晰
后,于 PBS缓冲液终止反应,拍照记录。
9.统计学 分析:数据 以 -4-s表 示,应 用
SPSS10.0统计软件进行数据分析。多组间均数检
验采用q检验,两组间均数检验采用 t检验。
结 果
1.流式细胞仪检测不同细胞株 CXCR4的表
达 :95C、95C—pC、95C—X4、95D—ASX4、95D和 95D—
pc细胞表面CXCR4表达水平不同,CXCR4在高转
移潜能肺癌细胞株95D的表达(49.38%)高于95C
(21.94%);95C、95D细胞转染空质粒 pcDNA3后,
均不影响其表面 CXCR4的表达;95C细胞转染
CXCR4全长真核表达质粒 (95C—X4)后,其表面
CXCR4表达(49.50%)显著升高,达到95D细胞水
平;相反地,95D细胞转染 CXCR4反义真核表达质
粒(95D—ASX4)后,表面 CXCR4表达(20.83%)显
著降低。
2.不同细胞株体内接种后肿瘤转移能力分析:
将上述CXCR4不同表达水平的肺癌细胞分别接种
至裸鼠肩胛部皮下后发现,多数裸小鼠在3周左右
于接种部位皮下长出肿瘤,并逐渐增大,10周后,各
组肿瘤细胞在裸鼠体内具有不同的转移能力。
95C、95C—pC组裸鼠体内未见转移,而95C.X4组有
2/5的小鼠发生了转移(图2);95D、95D—pC组的裸
鼠分别有 3/4的小鼠发生了转移,而 95D—ASX4组
有2/5的小鼠发生了转移,而且其肺转移结节的数
目明显小于95D、95D—pC组(P=0.044)(图3)。
3.CXCR4/SDF一1对 MMP_2活性的调控:未经
SDF—let活化 的 95D分泌一定活性的 MMP_2,经
SDF—let刺激24 h后其 MMP-2活性高于前期活性
(P=0.0072),而CXCR4中和抗体在一定程度上可
以抑制这种作用(P=0.0075)。
4.CXCR4/SDF一1对肺癌细胞运动能力 的调
控:与对照组相比,SDF—let可以诱导细胞发生迁移、
侵袭,而抗CXCR4中和抗体可以明显抑制这种作用
(图4)。SDF—let刺激后,细胞内纤维肌动蛋白含量
由10.55%上升至55.56%,提示 SDF—let可以诱导
细胞纤维肌动蛋白的合成。进一步通过激光共聚焦
显微镜观察发现细胞内肌动蛋白排列方式发生了显
著改变,在无血清培养液中过夜培养的细胞,其肌动
蛋白排列紊乱,而SDF—let作用后,纤维肌动蛋白的
合成增加,表现为细胞内纤维肌动蛋白聚合重排,排
列有序呈束状(图5)。
5.CXCR4/SDF一1对肺癌细胞黏附能力的调
控:与对照组相比,ECV~04细胞经 SDF—let处理
后,95D细胞与其相对黏附率由22.4%4-1.3%升
至50.9%-4-2.6%(P<0.01)。肺癌细胞与CXCR4
图2 不同细胞株体内转移能力分析 2A.95C、95C-pC组裸鼠肺组织未见转移结节 HE×100;
2B.2C.95D、95D.pC.95D.ASX4和95C-X4组裸鼠肺组织,有明显转移灶(箭头) HE×100
中和抗体预先孵育后,与
SDF—let处理后的血管内皮
细胞的黏附率明显降低(P
= 0.0003)。
6.CXCR4/SDF.1对促
血管生成趋化因子 GRO·0【
的调控:与未处理组相比,
在 SDF—let刺激后 1 h时细
胞内GRO—amRNA表达开
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95C 95C——pC 95C-X4 95D 950-pC 95D-ASX4
注:’与95D、95D—pC组比较,P=0.044
图3 不同细胞株体内肺转移结节数目比较
250
200
藿15o
募
授 100
5O
O 0 SDF一1Ⅱ CXCR4Ab Isotype
注:’SDF—la组与对照组相比,P<0.01; SDF.1a组与
CXCR4组相比,P<0.01
图4 CXCR4/SDF·1对肺癌细胞趋化侵袭作用的影响
图5 SDF—la诱导肺癌细胞内纤维肌动蛋白聚合 图5A.SDF—la作用前肌动蛋白的排列杂乱
无序;图5B,5C.SDF—la作用后肌动蛋白的排列呈束状
0 5 15 (min)
_ 睡 赣
瓣
图6 CXCR4/SDF.1诱导肺癌细胞内ERK1/2磷酸化
始升高,3 h达高峰(P=0.0017),并持续到6 h。抗
CXCR4中和抗体在一定程度上抑制这种作用,表现
为SDF—lot刺激后,抗 CXCR4中和抗体预先孵育的
细胞内GRO一0【mRNA表达未发生明显改变 (P<
0.01)。这表明 CXCR4/SDF一1可以调控 GRO一0【的
表达。
7.CXCR4/SDF一1诱导肺癌细胞内ERK1/2磷
酸化:SDF—lot作用后 5和 15 min时,ERK1/2均发
生了磷酸化,其中15 min时磷酸化较明显(图6)。
表明SDF一1 0【与肺癌细胞表面 CXCR4的相互作用
可以活化细胞信号传导通路分子MAPK通路。
讨 论
肿瘤转移发生取决于肿瘤细胞特性、宿主特性
以及二者的相互作用,本研究结果显示 CXCR4不同
表达水平的肺癌细胞在裸鼠
体内具有不同的转移能力。
CXCR4介导的肺癌转移需要
其特异性配体 SDF一1浓度梯
度的存在,我们在发生转移的
裸鼠肺淋巴结中检测到较高
水平SDF一1,并证明了人与小
鼠的 SDF一1无论核苷酸序列
或氨基酸序列均高度同源,其同源性达到99%(结
果未显示)。在这种情况下,从原发肿瘤部位脱落
的CXCR4 细胞沿着 SDF一1的浓度梯度发生特定器
官的转移。尽管在裸鼠的肝、骨髓中同样检测到了
较高水平的SDF一1,但肺癌细胞并未发生这些部位
的转移,这可能是肿瘤转移过程中,宿主特定器官内
局部微环境中其他分子如黏附分子、生长因子等并
不支持肿瘤细胞在这些部位的定居和生长。
肺癌的侵袭转移在某种程度上是由于 CXCR4/
SDF一1的相互作用导致,但目前CXCR4/SDF一1参与
肺癌侵袭转移的机制仍未完全阐明清楚。许多研究
表明肿瘤转移和炎症细胞浸润有着相似的形成过
程,如均涉及到细胞滚动、黏附和跨内皮迁移等 J。
趋化因子在炎症细胞活化、迁移和准确定位中的重
要作用,提示趋化因子及其受体可能通过与炎症细
胞浸润相似的机制参与了肿瘤的进展和侵袭转移。
本研究发现CXCR4/SDF一1的相互作用可以触发与
肿瘤转移有关的多个事件的发生,如肿瘤细胞的侵
袭能力、肿瘤细胞的运动能力、与血管内皮的黏附能
力等。
肿瘤细胞转移过程中的一个必需步骤是穿越基
底膜和侵入周围基质。这一过程有许多的蛋白溶酶
参与,基质金属蛋白酶 (MMP)是其中重要的一
加 5 O
赫 姆簿毒睾餐
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种 ⋯¨。CXCR4/SDF一1的相互作用调控了肺癌细胞
MMP-2活性,使得肿瘤细胞易于从原发部位脱落,
侵袭人细胞外基质和血管,发生远处转移。肿瘤细
胞分散后必须获得足够的运动能力才能侵人基底
膜,因此运动性是评价肿瘤细胞体外转移潜能的指
标之 一。本研 究 结 果显 示,SDF—lot可 以诱 导
CXCR4 肺癌细胞发生迁移、侵袭,并能诱导肺癌细
胞内纤维肌动蛋白的合成和重排,表明了CXCR4/
SDF一1的相互作用调控肺癌细胞的运动性,从而参
与肺癌细胞的转移过程。肿瘤细胞到达远处后,最
早期最重要的一个步骤是肿瘤细胞黏附至血管内皮
细胞,近年来越来越多的证据表明转移能力与黏附
力呈正相关 ¨ 。本研究进一步研究结果显示,
CXCR4/SDF一1通过调控肺癌细胞与血管内皮细胞
的黏附这一机制而参与了肺癌的侵袭转移。有研究
表明CXCR4/SDF一1通过调控造血干细胞、淋巴细胞
表面的某些黏附分子如 VLA4、VLA-5、LFA一1等的
表达,而介导了他们的归巢和再循环过程 ¨" 。本
研究中 CXCR4/SDF—I相互作用可能是通过调控这
些细胞表面某些黏附分子的表达或者活性,影响了
肺癌细胞与血管内皮细胞的黏附,从而影响了肿瘤
细胞的侵袭转移能力。这也是 CXCR4/SDF一1参与
肿瘤细胞转移的可能机制之一。对于 CXCR4/SDF-
1的相互作用调控了肺癌细胞表面何种黏附分子的
变化及其确切的分子机制仍需进一步深入研究。
研究表 明,CXCR4/SDF一1可 以促血管生成,
SDF一1或CXCR4敲除小鼠胃肠血管形成异常,并有
心脏膜性室间隔缺损 。因此 CXCR4/SDF一1可
能通过促进新生血管形成而参与肺癌的转移。肺癌
细胞表达一定水平的GRO一0【,作为ELR+CXC家族
的一员,GRO一 与肿瘤细胞的转化、生长和新生血
管的形成有关 。本研究发现 CXCR4/SDF一1的相
互作用可以调控95D细胞中GRO一0【的表达,这可能
是CXCR4/SDF。1参与肺癌转移的一个新的机制。
SDF一1与T细胞表面的CXCR4结合后,通过激
活ERK1/2分子而介导了细胞迁移 。本研究发
现SDF—lot可以诱导肺癌细胞内ERK1/2分子磷酸
化,提示 CXCR4/SDF一1的相互作用可能通过激活
MAPK通路的机制,从而进一步活化下游分子而参
与了肺癌细胞的侵袭和迁移。
总之,肺癌转移在一定程度上依赖于 CXCR4/
SDF一1的相互作用,他们通过不同机制在多水平上
参与了肺癌侵袭转移的过程,提示了以CXCR4为靶
分子进行干预在肺癌转移治疗中的潜在应用价值。
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(收稿日期:2004—10—11)
(本文编辑:吕小东)
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