为了正常的体验网站,请在浏览器设置里面开启Javascript功能!

试论羊水细胞染色体核型分析在产前诊断中的应用

2017-11-28 9页 doc 25KB 25阅读

用户头像

is_005190

暂无简介

举报
试论羊水细胞染色体核型分析在产前诊断中的应用试论羊水细胞染色体核型分析在产前诊断中的应用 试论羊水细胞染色体核型分析在产前诊断中的应用 作者: 代云才 郭渝 胡伟 罗立 张琳琳 【摘要】 目的 探讨羊水细胞培养染色体核型分析技术在细胞遗传学产前诊断中的应用价值。 方法 普通培养法对350例羊水标本进行细胞培养染色体核型分析。结果 350例羊水标本一次培养成功340例,一次培养成功率约97.1%。其中引产羊水标本60例,染色体核型分析未见异常;35岁或35岁以上的高龄孕妇羊水标本158例,染色体核型分析发现异常核型有1例47,XY,+21,1例47,XXX;...
试论羊水细胞染色体核型分析在产前诊断中的应用
试论羊水细胞染色体核型在产前诊断中的应用 试论羊水细胞染色体核型分析在产前诊断中的应用 作者: 代云才 郭渝 胡伟 罗立 张琳琳 【摘要】 目的 探讨羊水细胞培养染色体核型分析技术在细胞遗传学产前诊断中的应用价值。 普通培养法对350例羊水标本进行细胞培养染色体核型分析。结果 350例羊水标本一次培养成功340例,一次培养成功率约97.1%。其中引产羊水标本60例,染色体核型分析未见异常;35岁或35岁以上的高龄孕妇羊水标本158例,染色体核型分析发现异常核型有1例47,XY,+21,1例47,XXX;1例46,XY,15p+。异常核型约 1.9%;产前筛查唐氏高风险孕妇132例,核型分析结果异常有2例47,XY,+21;1例46, XY ,t(6;19)(q12;q134)。异常核型约2.3%。结论 羊水细胞培养染色体核型分析技术在细胞遗传学产前诊断中具有较高的应用价值。 【关键词】 细胞遗传学 产前诊断 羊水细胞培养 染色体核型分析 【Abstract】 Objective To discussion amniotic fluid cell raise karyotype analysis technology in cytogenetics pre-natal diagnosis application value.Methods The ordinary culture bottle law carries on the cell culture chromosome analysis to 350 example amniotic fluid specimen.Results 350 cases example amniotic fluid specimen one time raises the successful 340 examples, a raise success rate of about 97.1%.And induces labor the amniotic fluid specimen 60 examples, the chromosome karyotype analysis has not seen exceptionally; 35 year-old or 35 year-old above advanced age pregnant woman amniotic fluid specimen 158 examples, chromosome karyotype analysis abnormal result: 1 example is 47,XY,+21, 1 example is 47, XXX; 1 example is 46, XY,15p+, Abnormal karyotype approximately 1.9%; Prenatal screening DownSyndrome high risk pregnant woman 132 examples, karyotype analysis abnormal result: 2 example are 47,XY,+21,1 example is 46, XY, t (6; 19) (q12; q134). Abnormal karyotype approximately 2.3%.Conclusion The amniotic fluid cell raise karyotype analysis technology has the high application value in the cytogenetics pre-natal diagnosis. 【Key words】 Cytogenetics Prenatal Diagnosis Amniotic Fluid Cell Culture Karyotype Analysis 羊水细胞培养染色体分析技术是细胞遗传学产前诊断的金。但在羊水细胞培养过程中,存在易污染、染色体标本片的制备难度大,分裂相较少,对操作人员的素质和技术要求高等问题,难以在基层临床实验室普及和应用。羊水细胞培养染色体核型分析是产前诊断胎儿染色体病的主要手段,我们为了掌握该分析技术,经两年的研讨,已将该技术运用于细胞遗传学产前诊断。现将结果报道如下。 1 材料与方法 1.1试剂 (1)羊水培养基; (2)25cm2羊水培养瓶; (3)低渗液; (4)秋水仙素为10μg/ml; (5)其他试剂为磷酸盐缓冲液、牛胰蛋白酶、吉姆萨染液。 1.2仪器 (1)CO2恒温培养箱; (2)BCM-1000型生物净化工作台; (3)离心机; (4)恒温干燥箱; (5)恒温水箱;(6) YJTF-2A型通气柜; (7) OLYMBUS BX51型倒置显微镜; (8)显微成像染色体分析系统。 1.3羊水标本 (1)羊水标本均来自我院2017年12月-2017年12月经引产、产前筛查和产前诊断的孕妇,年龄19-45岁,共350例。其中引产孕妇60例,孕期19-28周;高龄孕妇(年龄?35岁)158例,孕期17-24周;产前筛查高风险孕妇132例,孕期17-24周。 (2)羊水采集:经B超定位后,常规消毒,采用22号PIE穿刺针穿刺,最初用5ml注射器抽取约2ml羊水弃去,再换20ml注射器抽取羊水约20ml,无菌操作注入2个一次性使用无菌刻度离心管中,盖好管帽,立即送实验室接种培养。 (3)羊水标本状态: 严重血性羊水标本15例,正常羊水标本335例。 1.4方法 普通培养法:将采集的羊水离心沉淀,再将其沉淀物转入羊水培养瓶内,并加入一定量的羊水培养基进行培养。经更换培养液、再培养后,羊水细胞生长良好,此时,向培养瓶内加入一定量的秋水仙素,使羊水细胞的分裂停止在其分裂中期,再经低渗、固定、制片、显带、染色处理,即可得到可用于染色体核型分析的羊水细胞标本片。羊水细胞传代: 用无菌吸管吹打待传代的培养瓶内的活细胞,使其在外力作用下脱离培养瓶底,并悬浮于培养液里,然后将该培养液直接转入新的培养瓶内进行传代培养,培养3-5天后即可换液,再培养3-5天后羊水细胞生长良好,收获可得到理想的染色体分裂相。 2 结果 共350例羊水标本,一次培养成功340例,一次培养成功率97.1%。其中引产60例,一次培养成功59例,一次培养成功率98.3%。羊水细胞核型分析结果未见异常;唐氏筛查高风险132例,一次培养成功128例,一次培养成功率97.0%。羊水细胞核型分析结果2例47,XY,+21, 1例46,XY,t(6;19)(q12;q134);35岁或以上158例,一次培养成功153例,一次培养成功率96.8%。羊水细胞核型分析结果1例47,XY,+21,1例47,XXX,1例46,XY,15p+。 3 讨论 羊水细胞培养、染色体标本片的制备难度大,技术要求高。要制作出较好的羊水细胞染色体标本片,首先要保证羊水培养成功。我们的一次培养成功率约为97.1%。要保证羊水培养具有较高的成功率,必需掌握下列关键技术: (1)无菌操作技术: 实验室微生物污染是细胞培养中的难题之一,所以从羊水标本的采集、离心沉淀细胞、接种培养、换液、传代等每一操作步骤都须要严格无菌操作,避免微生物污染才能保证羊水细胞培养成功。 (2)被血液稀释的羊水标本的处理技术: 据文献报道,不同的实验室处理方法也不尽相同。我室对血液严重稀释的羊水标本加入适量抗凝剂以防止红细胞凝集而不做其他任何特殊处理,与一般羊水标本一样培养到6-8天后换液,用无菌生理盐水洗涤2-3次后,再加羊水培养基3ml,3-5天后羊水细胞生长良好,收获可得到理想的染色体分裂相。据文献报道红细胞的存在会影响羊水细胞的生长,但我们的检测结果未证实这点。 (3)羊水细胞传代技术: 一般采用胰酶消化法传代。我室采用无菌吸管吹打法传代。这可避免因过多的操作环节造成的污染。 (4)羊水细胞的收集: 一般采用胰酶消化法收集羊水细胞。我们采用一次性使用弯曲吸管吹打、刮取贴壁生长的羊水细胞,使其脱落,然后将其收集于刻度离心管内。 作者: 代云才 郭渝 胡伟 罗立 张琳琳 【摘要】 目的 探讨羊水细胞培养染色体核型分析技术在细胞遗传学产前诊断中的应用价值。 普通培养法对350例羊水标本进行细胞培养染色体核型分析。结果 350例羊 方法 水标本一次培养成功340例,一次培养成功率约97.1%。其中引产羊水标本60例,染色体核型分析未见异常;35岁或35岁以上的高龄孕妇羊水标本158例,染色体核型分析发现异常核型有1例47,XY,+21,1例47,XXX;1例46,XY,15p+。异常核型约 1.9%;产前筛查唐氏高风险孕妇132例,核型分析结果异常有2例47,XY,+21;1例46, XY ,t(6;19)(q12;q134)。异常核型约2.3%。结论 羊水细胞培养染色体核型分析技术在细胞遗传学产前诊断中具有较高的应用价值。 【关键词】 细胞遗传学 产前诊断 羊水细胞培养 染色体核型分析 【Abstract】 Objective To discussion amniotic fluid cell raise karyotype analysis technology in cytogenetics pre-natal diagnosis application value.Methods The ordinary culture bottle law carries on the cell culture chromosome analysis to 350 example amniotic fluid specimen.Results 350 cases example amniotic fluid specimen one time raises the successful 340 examples, a raise success rate of about 97.1%.And induces labor the amniotic fluid specimen 60 examples, the chromosome karyotype analysis has not seen exceptionally; 35 year-old or 35 year-old above advanced age pregnant woman amniotic fluid specimen 158 examples, chromosome karyotype analysis abnormal result: 1 example is 47,XY,+21, 1 example is 47, XXX; 1 example is 46, XY,15p+, Abnormal karyotype approximately 1.9%; Prenatal screening DownSyndrome high risk pregnant woman 132 examples, karyotype analysis abnormal result: 2 example are 47,XY,+21,1 example is 46, XY, t (6; 19) (q12; q134). Abnormal karyotype approximately 2.3%.Conclusion The amniotic fluid cell raise karyotype analysis technology has the high application value in the cytogenetics pre-natal diagnosis. 【Key words】 Cytogenetics Prenatal Diagnosis Amniotic Fluid Cell Culture Karyotype Analysis 羊水细胞培养染色体分析技术是细胞遗传学产前诊断的金标准。但在羊水细胞培养过程中,存在易污染、染色体标本片的制备难度大,分裂相较少,对操作人员的素质和技术要求高等问题,难以在基层临床实验室普及和应用。羊水细胞培养染色体核型分析是产前诊断胎儿染色体病的主要手段,我们为了掌握该分析技术,经两年的研讨,已将该技术运用于细胞遗传学产前诊断。现将结果报道如下。 1 材料与方法 1.1试剂 (1)羊水培养基; (2)25cm2羊水培养瓶; (3)低渗液; (4)秋水仙素为10μg/ml; (5)其他试剂为磷酸盐缓冲液、牛胰蛋白酶、吉姆萨染液。 1.2仪器 (1)CO2恒温培养箱; (2)BCM-1000型生物净化工作台; (3)离心机; (4)恒温干燥箱; (5)恒温水箱;(6) YJTF-2A型通气柜; (7) OLYMBUS BX51型倒置显微镜; (8)显微成像染色体分析系统。 1.3羊水标本 (1)羊水标本均来自我院2017年12月-2017年12月经引产、产前筛查和产前诊断的孕妇,年龄19-45岁,共350例。其中引产孕妇60例,孕期19-28周;高龄孕妇(年龄?35岁)158例,孕期17-24周;产前筛查高风险孕妇132例,孕期17-24周。 (2)羊水采集:经B超定位后,常规消毒,采用22号PIE穿刺针穿刺,最初用5ml注射器抽取约2ml羊水弃去,再换20ml注射器抽取羊水约20ml,无菌操作注入2个一次性使用无菌刻度离心管中,盖好管帽,立即送实验室接种培养。 (3)羊水标本状态: 严重血性羊水标本15例,正常羊水标本335例。 1.4方法 普通培养法:将采集的羊水离心沉淀,再将其沉淀物转入羊水培养瓶内,并加入一定量的羊水培养基进行培养。经更换培养液、再培养后,羊水细胞生长良好,此时,向培养瓶内加入一定量的秋水仙素,使羊水细胞的分裂停止在其分裂中期,再经低渗、固定、制片、显带、染色处理,即可得到可用于染色体核型分析的羊水细胞标本片。羊水细胞传代: 用无菌吸管吹打待传代的培养瓶内的活细胞,使其在外力作用下脱离培养瓶底,并悬浮于培养液里,然后将该培养液直接转入新的培养瓶内进行传代培养,培养3- 5天后即可换液,再培养3-5天后羊水细胞生长良好,收获可得到理想的染色体分裂相。 2 结果 共350例羊水标本,一次培养成功340例,一次培养成功率97.1%。其中引产60例,一次培养成功59例,一次培养成功率98.3%。羊水细胞核型分析结果未见异常;唐氏筛查高风险132例,一次培养成功128例,一次培养成功率97.0%。羊水细胞核型分析结果2例47,XY,+21, 1例46,XY,t(6;19)(q12;q134);35岁或以上158例,一次培养成功153例,一次培养成功率96.8%。羊水细胞核型分析结果1例47,XY,+21,1例47,XXX,1例46,XY,15p+。 3 讨论 羊水细胞培养、染色体标本片的制备难度大,技术要求高。要制作出较好的羊水细胞染色体标本片,首先要保证羊水培养成功。我们的一次培养成功率约为97.1%。要保证羊水培养具有较高的成功率,必需掌握下列关键技术: (1)无菌操作技术: 实验室微生物污染是细胞培养中的难题之一,所以从羊水标本的采集、离心沉淀细胞、接种培养、换液、传代等每一操作步骤都须要严格无菌操作,避免微生物污染才能保证羊水细胞培养成功。 (2)被血液稀释的羊水标本的处理技术: 据文献报道,不同的实验室处理方法也不尽相同。我室对血液严重稀释的羊水标本加入适量抗凝剂以防止红细胞凝集而不做其他任何特殊处理,与一般羊水标本一样培养到6-8天后换液,用无菌生理盐水洗涤2-3次后,再加羊水培养基3ml,3-5天后羊水细胞生长良好,收获可得到理想的染色体分裂相。据文献报道红细胞的存在会影响羊水细胞的生长,但我们的检测结果未证实这点。 (3)羊水细胞传代技术: 一般采用胰酶消化法传代。我室采用无菌吸管吹打法传代。这可避免因过多的操作环节造成的污染。 (4)羊水细胞的收集: 一般采用胰酶消化法收集羊水细胞。我们采用一次性使用弯曲吸管吹打、刮取贴壁生长的羊水细胞,使其脱落,然后将其收集于刻度离心管内。
/
本文档为【试论羊水细胞染色体核型分析在产前诊断中的应用】,请使用软件OFFICE或WPS软件打开。作品中的文字与图均可以修改和编辑, 图片更改请在作品中右键图片并更换,文字修改请直接点击文字进行修改,也可以新增和删除文档中的内容。
[版权声明] 本站所有资料为用户分享产生,若发现您的权利被侵害,请联系客服邮件isharekefu@iask.cn,我们尽快处理。 本作品所展示的图片、画像、字体、音乐的版权可能需版权方额外授权,请谨慎使用。 网站提供的党政主题相关内容(国旗、国徽、党徽..)目的在于配合国家政策宣传,仅限个人学习分享使用,禁止用于任何广告和商用目的。

历史搜索

    清空历史搜索