猫血巴尔通体研究概况
动物医学进展,2007,28(3):78—81
ProgressinVeterinaryMedicine
猫血巴尔通体研究概况
庄庆均.,张浩吉?,朱兴全,王秋泉.
(1.华南农业大学兽医学院,广东广州510642;2.佛山科学技术学院动物医学系.广东佛山528231)
摘要:猫血巴尔通体是引起猫发生传染性贫血的病原之一,在分类学上归属于立克次体目,无形体科.
最近有很多新的研究指出这类病原体应归属于支原体目,”血巴尔通体”和”附红细胞体”也应该合称为”血营
养性支原体”(Hemotrophicmycoplasmas).猫血巴尔通体作为血营养性支原体的重要代表,已经被广泛深
入地研究,文章对其病原学,流行病学,发病机制,防治等方面的研究成果进行回顾与总结,以期对本病有进
一
步认识,对其他血营养性支原体的研究提供参考.
„
关键词:血巴尔通体;附红细胞体;猫
中图分类号:S852.64;S858.293文献标识码:A文章编
号:1007—5038(2007)03—0078-04
血巴尔通体(Haemobartonella)是一类寄生于
红细胞外的多形性病原,革兰氏染色呈阴性,在分类
学上曾归属于立克次体目,无形体科.1984年出版
的《伯氏细菌鉴定手册》中记载的血巴尔通体属的病
原有3种,它们分别是猫血巴尔通氏体(H.lis),
犬血巴尔通体(H.canis)及鼠血巴尔通体(H.
muris)[1].猫血巴尔通体,有人也称之为”猫附红细
胞体”,是世界范围内引起猫发生传染性贫血的病原
之一.近年来,随着分子生物学技术的应用和发展,
对该类病原的种类,流行病学特点,疾病形式,发病
机理和检测手段等方面进行了深入研究,现概括如
下.
1病原学
猫血巴尔通体是附着在红细胞表面的多形性病
原,革兰氏染色呈阴性,没有细胞壁.病原体表现出
蓝染,呈球形,环形,棒状附着于红细胞表面.用扫
描电镜(放大5000倍)观察,猫血巴尔通体呈圆锥
形或球形,直径大小约为0.5m,部分呈锯齿状的
包埋入红细胞表面,红细胞外寄生的现象相当明
显.
1953年,FlintJC等首次报道了猫血巴通氏
体,并证实它是引起猫发生传染性贫血的病原[3].
SplitterE等[4发现在猫体内有两种形态不同的血
巴尔通体,后来被称之为大型猫血巴尔通体(H.
fells/Large—form)和小型猫血巴尔通体(H.felis/
Small—form),其代表株分别为H.lis-Ohio-Flor-
ida株(简称H.一OH株)和H.lis—Califor—
nia株(简称H.lis—CA株).H.lis-0H株具有
较强的致病性,是引起猫发生传染性贫血的主要病
原;H.li—CA株的致病性弱,受感染猫往往不表
现临床症状或仅表现出轻微的症状,多呈潜伏感
染[.
近年来,通过对H.一OH株和H.一
CA株及其相近病原的16SrRNA基因序列比较及
种系进化关系研究指出,以往归属于立克次体目无
形体科的猫血巴尔通体在种系发生关系上与支原体
目的病原相近,应划归人支原体].H.一OH株
和H.lis—CA株16SrRNA基因序列的同源性只
有839,6,是两个独立的种[7],并分别命名为
“Candidatusmycoplasmahaemofelis”和
“Candidatusmycoplasmahaemominutum”.WilliB
(2005)又报道了一株新的猫血巴尔通体,命名为
“Candidatusmycoplasmaturicensi”,并指出该病
原体可以引起猫发生温和性贫血,其在种系发生关
系上与啮齿动物的血营养性支原体较近].
研究证实,H.一OH株为双链,环形的
DNA,其基因组大小为1199kb,正好处于肺炎支原
体的基因组大小范围内,其中219,6的基因与转运和
新陈代谢有关,约5O9,6的基因主要用于编码蛋白用
执行复制,转录,翻译等功能.为了适应寄生生活,
收稿日期:2006-12-01
基金资助:广东省自然科学基金项目(020388);广东省农业攻关项目
(2OO582O2OlO88)
作者简介:庄庆均(1982一),男,重庆綦江人,硕士研究生,主要从事猫
血巴尔通体研究.*通讯作者
庄庆均等:猫血巴尔通体研究概况79
H.zs—OH株还有部分基因表达可变抗原,用以
逃避宿主的免疫攻击.它还含有一些独特的基因表
达保护性蛋白对抗氧化性应激,确保氨基酸在特殊
条件下的生物合成[g].
2流行病学
感染猫血巴尔通体的猫是本病的传染源.本病
主要通过血液传播,其传播方式主要是通过静脉接
种病猫血液或是蚤类等昆虫进行吸血传播.GaryA
T等[1.指出用常规方法保存带有本病病原体的供
体血液1月后,将此血液输入到无本病病原体的猫,
猫会获得大型和小型猫血巴尔通体感染.WoodsJ
E等[1妇指出,猫栉首蚤(Ctenocephalidesfelis)可
以通过吸血的方式在猫之间传播大型血巴尔通体,
但不能传播小型血巴尔通体;猫通过摄食携带有本
病原病体的猫栉首蚤(及其粪便,幼虫,虫孵等)并不
能获得感染[1引.
所有年龄段的猫都可以感染本病,其易感性,症
状表现与猫的年龄,健康状况,感染病原的种类有
关.年老的公猫或血细胞压积(packedcellvolume,
PCV)值较低的猫更易检测出小型猫血巴尔通体感
染[1.];小型猫血巴尔通体被认为致病性较弱,感染
猫不表现明显的临床症状,但伴发免疫介导性疾病
或者逆转录病毒感染时会暴发本病.Candidatus
mycoplasmaturicensis可以引起猫发生温和性贫
血,但当动物机体出现免疫抑制时会出现严重的贫
血症状[8].一般认为,猫血巴尔通体只感染猫,但是
HaefnerM等口妇用PCR方法检测大型猫血巴尔通
体时发现,2只虎的血样PCR扩增呈阳性,提示虎
也可能是猫血巴尔通体的宿主之一.
本病在英国,美国,瑞士,澳大利亚,南非,日本
等国家都有发病报道[5,13,15-24].在健康猫和出现贫
血的猫中都可能检测出本病病原体,小型猫血巴尔
通体的感染率远比大型猫血巴尔通体高,部分猫还
同时感染两种猫血巴尔通体,但没有发现同时感染
三种猫血巴尔通体的病例.TaskerS等[1.用实时
定量PCR方法检测了147只悉尼地区的猫,发现其
中34只(23.1)单独感染小型猫血巴尔通体,6只
(4.1)单独感染大型猫血巴尔通体,只有1只
(O.7)出现双重感染.williB用实时定量PCR
方法对瑞士境内出现的3种猫血巴尔通体作了分
析,结果在713份猫血样中,小型血巴尔通体在出现
贫血症状的猫有7.0检出率,而无临床症状的猫
仅有8.7的检出率;大型血巴尔通体在出现贫血
症状的猫中有2.3检出率,而无临床症状的猫仅
有0.29,6的检出率;新发现的病原株Candidatus
mycoplasmaturicensis有6只(1.1)出现阳性感
染,其中有3只同时感染小型猫血巴尔通体[2引.
3发病机理
猫血巴尔通体感染对宿主红细胞具有较强的破
坏作用.一方面,病原体的附着使宿主红细胞受损,
生活周期变短;另一方面,黏附于红细胞的病原通过
暴露隐藏的红细胞抗原或是引起宿主红细胞表面抗
原的改变,导致机体免疫系统不能识别自身,从而产
生抗红细胞的抗体,使动物出现更为严重的免疫介
导性贫血.病猫可以表现出温和的感染,显着的贫
血或是致死性贫血.本病发生的过程分为菌血症前
期,急性发病期,恢复期三个时期[2].
3.1茵血症前期
这个过程包括病原体感染动物到动物机体首次
出现较大范围的菌血症.在这一阶段,由于病原数
量较少,通常不能用外周血液镜检的方法发现病原
体.
3.2急性发病期
这个过程是指动物体首次到末次出现较大范围
的菌血症的时期,可长达一个月甚至更久.在此阶
段,动物机体的红细胞受到严重破坏,血细胞压积值
快速降低,动物常出现严重的贫血,导致快速死亡.
用血涂片镜检的方法观察,病原周期性的不连续地
在血液中显现.病原体数量可以在1d,5d内达到
一
个峰值,接着又快速(可能在数小时内)同步地消
失,然后经过几天间隔期,再显现出周期性的菌血
症.在两次菌血症之间的间隔期,通常也很难用外
周血液镜检的方法观察到病原体.周期性的菌血症
的出现,是由于病原体在感染过程中出现了抗原变
异(发生自身表型的转换)和黏附位相的转换(暂时
与红细胞分离),从而快速同步地从宿主红细胞中消
失并且周期性的重新显现,这样有利于躲避机体直
接的免疫性损伤.新出现的菌血症表明一个新的感
染周期又将开始.
3.3恢复期
动物体有足够的免疫力,红细胞的再生能力也
较强(能够完全抵消受损伤的红细胞),最后一次菌
血症结束后,患病动物将逐渐进入恢复期,动物的
PCV也逐渐变得稳定,但药物并不能将病原从感染
动物体内完全清除,感染的动物将长期保持带
菌[2引.在这个阶段,由于病原数量较少,通常不能
用血液涂片镜检发现病原体.
猫血巴尔通体与其他病原混合感染可增强其致
病性,例如,与逆转录病毒(包括猫免疫缺陷病毒,猫
白血病病毒)混合感染,这些病毒的入侵破坏了动物
80动物医学进展2007年第28卷第3期(总第162期)
机体的免疫器官,使之不能产生正常的免疫应答.
感染小型血巴尔通体的猫通常并不表现临床诊状,
但是在
条件下混合感染猫白血病病毒会发生
更加严重的贫血引.感染猫白血病病毒的猫再继
发感染小型血巴尔通体将产生骨髓增生的症状,感
染有猫白血病病毒的猫再慢性感染大型血巴尔通
体,将导致造血细胞的肿瘤化生[2”.
4检测方法
猫血巴尔通体最主要的检测方法是光镜镜检,
血清学方法及PCR方法.
4.1光镜镜检
外周血液光镜镜检是猫血巴尔通体常用的检测
方法,但该方法往往只适合处于急性发病的严重菌
血症时期病原的检测,其他时期通常不易检测到病
原.LobettiRG等对78份通过血片镜检确诊为
阳性的猫血样,用实时定量PCR作重新检测,发现
43只(55)并非由本病病原体感染,25只(32.1)
为小型猫血巴尔通体感染,5只(6.49,6)为大型猫血
巴尔通体感染,另外5只(6.4OA)为双重感染.由此
可见,外周血镜检准确性较低,可能出现假阳性.
4.2血清学检验方法
已建立血清学检测的方法包括补体结合试验,
间接血凝试验及酶联免疫吸附试验.该病病原体在
感染过程中通常要出现抗原变异等现象,并且温和
感染的猫体内病原数量较少,产生的抗体的数量也
较少.因此,用血清学的检测方法适合于进行流行
病学调查,但不宜用于疾病的确诊.
4.3PCR检测方法
目前的研究表明,PCR检测方法是诊断本病的
有效方法.FoleyJE等首次用PCR方法对400多
只猫感染本病原体的情况进行了调查[5].JensenW
A等[16]设计的PCR方法可同时诊断大型或小型猫
血巴尔通体感染.在定量PCR检测方面,CopperS
K等首先建立了猫血巴尔通氏体的竞争定量PCR
检测方法[2引.TaskerS等[2]实时定量PCR检测方
法用于实验感染猫血样中两种猫血巴尔通体的定量
检测,用该方法能成功地检测出实验感染猫两种病
原在体内的动态变化,掌握不同病原在血液数量的
变化与临床症状和血液生理参数变化的关系,评价
药物的治疗效果,是一种快速而敏感的检测方法.
5防治
在猫血巴尔通体的防治方面,消灭吸血昆虫蚤
类是控制本病传播的重要方法.对出现严重贫血症
状的猫,可以用输血的方式对其进行治疗,但输血前
应对供体血液作本病病原体的检测,以防止该病通
过血液传播].
目前研究认为,四环素,土霉素,氯霉素,强力霉
素等药物是控制本病的有效药物,但药物并不能将
病原从感染动物体内完全清除;猫在发病过程中可
能出现免疫介导性贫血,在用抗生素治疗的同时,也
可以配合使用运用糖皮质激素(如氢化可的松等药
物)对抗机体自身的免疫性损伤引.
6结语
随着分子生物学技术的发展,人们对猫血巴尔
通体的认识也逐渐加深,但目前的研究仍处于起步
阶段,一些人们非常关注的问题现在尚无定论,如病
原的繁殖和传播方式,病原对机体免疫功能影响的
分子基础,疫苗特别是基因工程疫苗在疾病控制中
的前景等.因此,还需要借助新的研究手段,进行广
泛而深入的研究.
参考文献:
[-13布坎南RE,吉本斯NE.伯杰细菌鉴定手册(第18版)[M].北
京:科学出版社,1984:1268-1270.
[2]GreeneCE.Infectiousdiseasesofthedogandcat(SecondEdi—
tion)[M].Philadephia:WBSaundersCompany,1998:166—
171.
[3]FlintJC,MossLD.Infectiousanemiaincats[J].JAmVet
MedASSOC,1953,122l45-48.
[4]SplitterE,CastroE,KanawyerW.Felineinfectiousanemia
[刀.VetMed,1956,51l17—22.
[5]FoleyJE,HarrusS,PolandA,eta1.Molecular,clinical,and
pathologiccomparisonoftwodistinctstrainsof
Haew~bartonellafelisindomesticcats[J].AmJVetRes,
1588. 1998,59l1581—
[6]NeimarkH,JohanssonK,RikihisaY,eta1.Proposaltotrans—
fersomemembersofthegeneraHaemobartonellaand
EperythrozoontothegenusMycoplasmawithdescriptionsof
CandidatusMycoplasmahaeraofelis??Candidatus
Mycoplasmahaemomuris?,CandidatusMycoplasmahaemosuis
andCandidatusMycoplasmaw.cnyonii.[J].IntJSystEvol
Microbiol,2001,51l891—899.
[7]FoleyJE,PedecsmNCCandidatusMyroi~srna珊?西,
alow-virulenceepierythrocyticparasiteofcats[J].IntJSyst
EvolMicrobiol,2001.51l815-817.
[8]WilliB.BorettiFStCattoriV,eta1.Identification,molecular
characterization,andexperimentaltransmissionofanewhe—
moplasmaisolatefromacatwithhemolyticanemiainSwitzer—
land[J].JClinMicrobiol,2005,43(6)l2581—2585.
[9]BerentLM,MessickJB.Physicalmapandgenomesequen—
clngsurveyofMycoplasmahaeraofelis(Haemobartonella
fells)[J].InfectImmun.2003,71l3657—3662.
[1O]GaryAT,RichmondHL,TaskerS,eta1.Survivalof
MycoplasmahaemofelisandCandidatusMycoplasma
haemominuturainbloodofcatsusedfortransfusions[J].J
FelineMedSurg,2006,8(5)i321-326.
庄庆均等:猫血巴尔通体研究概况81
[11]WoodsJE,BrewerMM,HawleyJR.Evaluationofexperi一[19]
mentaltransmissionofCandidatusMycoplasma
haemominutumandMycoplasrnahaemofelisby
Ctenocephalideslistocats[J].AmJVetRes.2005,66
(6)1008—1012.[2o3
[12]WoodsJE,WisnewskiN,LappinMR.Attemptedtransmis—
sionofCandidatusMycoplasmahaemominutumand
Mycoplasmahaemofelisbyfeedingcatsinfected
Ctenocephalideslis[J].AmJVetRes,2006,67(3)I494?[21]
497.
[13]TaskerS,BinnsSH,DayMJ,eta1.UseofaPCRassayto
assesstheprevalenceandriskfactorsforMycoplasma[223
haemo和lisandCandidatusMycoplasmahaemominutumin
catsintheUnitedKingdom[J].VetRec,2003,152;193—
198.
[14]HaefnerM,BurkeTJ,KitehellBE,eta1.Identificationof[23]
Haemobartonellafclis(Mycoplasmahaemofelis)incaptive
nondomestiecats[J].JZoowildlMed,2003,34(2){139—
143.
[15]LobettiRG,Tasker&Diagnosisoffelinehaemoplasmain一[24]
fectionusingareal-timePCRassay[J].JSAfrVetAssoe,
2004,75(2)I94-99.
[16]JensenwA,LappinMR,KamkarS,eta1.Useofapoly—
merasechainreactionassaytodetectanddifferentiatetwo[25]
strainsofHaemobartonellafclisinnaturallyinfectedcats
[J].AmJVetRes.2001,62I604—608.
[17]HackettTB,JensenwA,LehmanTL,eta1.Prevalenceof[26]
DNAofMycoplasmahaemolis,?CandidatusMycoplasma
haemominutum,Anaplasmaphagocytophilum?andspecies
ofBartonella.Neorickettsia,andDlrlichiaincatsusedas
blooddonorsintheUnitedStates[J].JAmVetMedAssoc,[27]
2006,229(5)I700-705.
[18]TaskerS,BraddockJA,BaraIR,eta1.Diagnosisoffeline
haemoplasmainfectioninAustraliancatsusingareal-time
PCRassay[J].jFelineMedSurg,2004,6(6)I345—354.
InokumaH,TarouraS,OkudaM.eta1.Molecularsurveyof
Mycoplasmahaemo和lisand.Candidatusmycoplasma
haemominutuminfectionincatsinYamaguchiandsurround-
ingareas[J].JVetMedSci,2004,66(8):1017—1020.
KewishKE,AppleyardGD.MyersSL,eta1.Mycoplasma
haemoZandMycoplasmahaemominutumdetectionbypol—
ymerasechainreactionincatsfromSaskatehewanandAIher-
752. ta[J].CanVetJ.2004,45(9):749—
LuriaB,LevyJK,LappinMR,etakPrevalenceofinfec-
tiousdiseasesinferalcatsinNorthernFlorida[J].JFeline
MedSurg,2004,6(5):287-296.
WB,BorettiFS,BaumgartnerC,eta1.Prevalence,risk
factoranalysis,andfollow-upofinfectionscausedbythree
felinehemoplasmaspeciesincatsinSwitzerland[J].Jclin
Mierobio1.2006,44(3):961—969.
CopperSK,BerentLM,MessiekJBCompetitive,quanti-
tativePCRanalysisofHaemobartonellatclisinthebloodof
experimentallyinfectedcats[J].JMierobiolMethods,1999,
34l235-243.
TaskerS,HelpsCR,DayMJ,eta1.UseofreabtimePCR
todetectandquantifyMycoplasmahaemoZ
and”CandidatusMycoplasmahaemominutumDNA[J].J
ClinMierobiol,2003,41(1):439-441.
ShehonGH.LinenbergerML.Hematologicabnormalities
associatedwithretroviralinfeetionsinthecat[J].SeminVet
MedSurg,1995,10I220—233.
BerentLM,MessickJB,CooperSK.Detectionof
Haemobartonella,clisincatswithexperimentallyinduceda-
cuteandchronicinfections,usingapolymerasechainreac-
tionassay[J].AmJVetRes,1998,59I1215—1220.
GeorgeJW,RideoutBA,GriffeySM,eta1.Effectofpre-
existingFeLVinfectionorFeLVandfelineimmunodefieieney
viruscoinfectiononpathogenicityofthesmallvariantof
Haemobartonellazincats[J].AmJVetRes,2002,63{
1172—1178.
AdvancintheHaemobartonellafelis
ZHUANGQing-iun?,ZHANGHao_ji,ZHUXing-quan,WANGQiu-quan1
?
(1.CollegeofVeterinaryMedicine,SouthChinaAgriculturalUniversity,Guangzhou,Guangdong,510642.Chinal
2.DepartmentofVeterinaryMedicine,FoshanScienceandTechnologyCollege,Foshan,Guangdong,528231,China)
Abstract:HaemobartonellafelisisoD.eofthepathogensthatcancauseinfectiousanaemiaincats.Itis
classifiedasthememberoftheRickettsiales.Butmanystudiesindicatedthatthispathogenshouldbecon-
sideredasflmemberoftheMycoplasma.Also,HaemobartonellaandEperyth
rozoonsppshouldbereclassi—
fledashemotrophicmycoplasmas.Haemobartonellafellsisoneofthemostimportantmembersofhe-
motrophicmycoplasmas,whichhasbeenwidelyinvestigated.Etiology,epidemiology,pathogenesis,pre-
ventionandcontrolofthisdiseaseweresummarizedinthisarticle,withtheobjectivesoffurtherunder—
standingofthisdisease,alsoprovidingreferenceforstudiesofotherhemotrophicmycoplasmas.
Keywords:Haemobartonella;Eperythrozoon;cat