【doc】 传染性法氏囊病病毒五个抗原表位短肽的鉴定与序列分析
传染性法氏囊病病毒五个抗原表位短肽的
鉴定与序列分析
第20卷第5期
2005年10月
中国病毒学
VIR0L0GICASINICA
20(5):503-506
Oetober2005
传染性法氏囊病病毒五个抗原表位短肽的鉴定与序列分析
王永山h,范红结,李银.,周宗安,施正良,王选年,张改平
*
(1.南京军区军事医学研究所,江苏南京210002;2.南京农业大学动物医学院,江苏南京210095;3.江苏省农业科学院兽医研究所,江苏南京
210014;4.河南省农业科学院生物技术研究所,河南郑州450002)
IdentificationandSequencingofFivePeptidesContainingEpitopesof
InfectiousBursalDiseaseVirus
WANGYong—shan,FANHong—jie,LIYin.,ZHOUZong—an,SHIZheng—liang,
WANGXuan—nian,ZHANGGai—ping
(1.Milit”rMedicalInstit”teinNanjingMilitaryArea,Nanjing210002,China
;2.CollegeofVeterinaryMedicine,Nanjing
AgriculturalUniversity,Nanjing210095,China;3.InstituteofVeterinaryScience,JiangsuAcademyofAgriculturalSciences,
Nanjing210014,China;4.InstituteofBiotechnology,HenanAcademyofAgriculturalSciences,Zhengzhou450002,China)
Abstract:FivemonoclonalantibodiestoInfectiousbursaldiseasevirus(IBDV),HNF1,HNF7,
B34,2B1and2G8wereusedtoscreenforbindingpeptidesfrompeptide12一
merphagedisplayli—
brary.Afterthreeroundsofpanning(absorption—elution—amplification),s
ixtypositivemono—
clonalphages(twelveforeachmonoclonalantibody)wereselectedandthephagedisplayed12一
peptidesweredetectedandidentifiedwithindirectELISA(Avalue>1.OO)andcompetitiveinhi—
bitionELISA(inhibitionrate>409/6).Theresultsindicatedthat12一
peptidescontainedepitopes
ofIBDV.Thirty—fivepositivemonoclonalphagesweresequenced,andthesequencesofnucleo—
tidesandaminoacidsofthefivedifferentepitopesonIBDVweredeterminedandanalyzed.Com—
parisonwithsequencesofIBDVregisteredinGenBank,fourcontinuousamin
oacidresiduesLeu—
Ala-Ser—Proof2B1selectedpeptidewashomologywiththesequenceencodedbygenomefragment
Afrom536to539.ButHNF1,HNF7,B34and2G8selectedpeptideshadnomorethanthree
continuousaminoacidresiduessimilaritywiththesequencesofIBDV.Theresultsindicatedthat
theepitope2B1waslinearandtheotherswereconformation—dependent.
Keywords:Infectiousbursaldiseasevirus(IBDV);Epitope;Analysis
摘要:以5株传染性法氏囊病病毒(Infectiousbursaldiseasevirus,IBDV)单克隆抗体HNF1,HNF7,B34,2B1和
2G8作为筛选分子,对噬菌体展示12肽库进行3轮”吸附一洗脱一扩
增”淘洗,从每株单克隆抗体筛选到的噬菌斑中
随机挑取12个单克隆蓝色噬菌斑,合计6O个,用间接ELISA
,A
值大于1.00;用竞争抑制ELISA分析,单克
隆抗体和IBDV抗原均能竞争抑制筛选12肽与固相包被单克隆抗
体的反应,抑制率大于4O,表明在该12肽内
含有IBDV抗原表位.选取35个单克隆噬菌斑,测定噬菌体gill部分
基因的核苷酸序列,确定了这5个含有不同
IBDV抗原表位12肽的核苷酸和氨基酸序列.进一步将其与
GenBank中IBDV基因组编码蛋白的氨基酸序列进
行比较,发现2B1筛选肽有4个连续氨基酸残基Leu—Ala—Ser—Pro
与IBDV基因组A片段编码多聚蛋白的第536—
599氨基酸残基一致,推测2B1为线性表位;而HNF1,HNF7,B34和2G8筛选肽均没找到有3个以上连续氨基酸
残基与IBDV蛋白序列相同之处,推测可能是构象依赖性表位.
关键词:传染性法氏囊病病毒(IBDV);抗原表位;序列分析
中图分类号:R373文献标识码:A文章编号:1003—5125(2005)05—0503,04
收稿日期:2005—03—17,修回日期:2005—04—11
*基金项目:江苏省自然科学基金(BK2003011);国家自然科学基金(30571371)
**通迅作者:王永山(1963一),男,山东省籍,研究员,博士,主要从事动物病毒学与分子生物学研究.
Correspondingauthor.Tel:025—86050698;E—mail:wangyongshan2OO
1@yahoo.corn.cn
504中国病毒学第2O卷
传染性法氏囊病(IBD)是由传染性法氏囊病病
毒(Infectiousbursaldiseasevirus,IBDV)所致,以
侵害雏禽淋巴组织尤其是中枢免疫器官——法氏囊
为主要特征的传染病.
IBDV属双RNA病毒科,基因组包括大(A)小
(B)两个片段,有五种病毒蛋白:VP1,VP2,VP3,
VP4和VP5.VP1由B片段编码,为病毒自身编码
的依赖RNA的RNA聚合酶.其它四种病毒蛋白
由A片段编码的多聚蛋白加工而成,VP2和VP3
是病毒的主要结构蛋白,构成病毒衣壳,VP2相对
含量较多,中和抗原表位主要存在于VP2上,且多
为构象依赖性,用构象依赖性中和抗原表位诱导的
中和抗体能被动地保护宿主不受IBDV感染,VP4
为病毒自身蛋白酶,VP5的功能尚不明确_】.大
肠杆菌表达的VP2免疫原性较差,表明VP2的后
加工过程对VP2的结构形成至关重要口].
对IBDV的抗原表位分析已有进展.目前,在
VP2上至少已经发现了3个构象依赖性中和抗原
表位,在VP3上也发现了1个线性中和抗原表位
c4-63
,更多的表位有待进一步分析.
本研究旨在运用国内建立的5株IBDV单克隆
抗体(mAb),从噬菌体展示随机12肽库中筛选含
有IBDV抗原表位的短肽,分析其序列,为IBD多
表位疫苗的研制奠定基础.
1
与方法
1.1单克隆抗体
IBDV单克隆抗体HNF1和HNF7由河南省
农业科学院生物技术研究所制备;B34由中国兽药
监察所陈光华研究员惠赠;2B1和2G8由本课题组
制备;B34和2G8对IBDV具有中和作用口.;单
克隆抗体腹水经盐析和DEAE一纤维素纯化.HRP一
羊抗M13单克隆抗体为AmershamPharmaciaBio—
tech公司产品.
1.2随机肽库
噬菌体展示随机12肽库试剂盒(Ph.D.一12
PhageDisplayPeptideLibraryKit)购自美国NEW
ENGLANDBioLabs~公司.随机肽库噬菌体滴度
1.5×10”pfu/mL,随机多样性2.7×1O.转化子,
受体菌E.coliER2738,测序引物(一96gIIIsequen—
cingprimer):5’-CCCTCATAGTTAGCGTAACG一
3.
1.3肽库的生物淘洗
所用溶液无菌处理,并在空气净化条件下进行.
分别用纯化单克隆抗体HNF1,HNF7,B34,2B1和
2G8包被微孔板,浓度100/~g/mL,15%L/~L,4?过
液,用1牛血清白蛋白(BSA)封闭,PBST(含
0.1Tween一20)洗涤6遍,加入含2×10pfu噬
菌体的肽库原液,室温置1h;PBST洗涤10遍;用
100/~L0.2mol/LGly-HC1(pH2.2)洗脱8min;加入
15L1mol/LTris—HC1(pH9.1)中和洗脱液.用常
规方法滴定洗脱液中的噬菌体,计算噬菌体的产出
率:产出率()一洗脱噬菌体数(Output)/淘洗用
噬菌体数(Input)×100.将洗脱液接种到20mL
新鲜培养的E.coliER2738培养液中,37?振荡培
养4.5h,4.C,10000r/min离心10min,收集上清
液,加入1/6体积的PEG/NaC1溶液(含20
PEG8ooo和2.5mol/LNaC1),4?过液,4?,10000
r/min离心15min,用1mLTBS重悬沉淀,按照上
述方法用PEG/NaC1再次沉淀,最终用200~LTBS
重悬沉淀,滴定后置4?保存.将单克隆抗体的包
被浓度降低至50~g/mL,洗涤用的PBST中
Tween一2O的浓度提高到0.5,按上述步骤再淘洗
2次.经过3次淘洗后,从每株单克隆抗体筛出的
噬菌斑中随机挑取单克隆蓝色噬菌斑12个,5株单
克隆抗体合计60个(12个单克隆噬菌斑×5株单克
隆抗体),扩增.用免疫学方法分析筛选肽与IBDV
抗原表位的相关性.
1.4噬菌体短肽的ELISA检测
分别以5株单克隆抗体HNF1,HNF7,B34,
2B1和2G8包被ELISA板,包被浓度5~tg/mL,1
BSA封闭,加入对应单克隆抗体筛出的单克隆噬菌
体扩增培养物,室温放置60min,洗涤,加入HRP一羊
抗M13单克隆抗体,进行间接ELISA.检测在筛
选12肽内是否存在IBDV单克隆抗体结合位点.
1.5单克隆抗体竞争抑制检测
为验证筛选肽的特异性,分别以5株单克隆抗
体包被ELISA板,以对应游离的单克隆抗体作为竞
争抑制物,分别与对应单克隆抗体筛出的噬菌体培
养物共同反应60min,洗涤,加入HRP一羊抗M13单
克隆抗体,进行竞争抑制ELISA.计算抑制率,分
析筛选12肽与单克隆抗体结合的特异性.
1.6IBDV竞争抑制检测
与上述单克隆抗体竞争抑制检测相似,只是以
游离的IBDV作为竞争抑制物,分别与对应单克隆
抗体筛出的噬菌体培养物共同反应.计算抑制率.
进一步验证筛选12肽内的IBDV抗原表位.
1.7序列分析
根据ELISA和竞争抑制试验分析结果,从每株
单克隆抗体挑出的12个单克隆蓝色噬菌斑中选定
王永山,等:传染性法氏囊病病毒五个抗原表位短肽的鉴定与序列分
析505
7个,5株单克隆抗体合计35个(7个单克隆噬菌斑
×5株单克隆抗体),制备单链DNA模板,测序,分
析.进一步将其与GenBank注册的IBDV基因组
编码蛋白的氨基酸序列…:进行比较.测序由上海
博亚公司完成.
2结果
2.1肽库的生物淘洗
分别以HNF1,HNF7,B34,2B1和2G8作为筛选
分子,对噬菌体12肽库进行3轮”吸附一洗脱一扩增”淘
洗.3轮淘洗的产出率呈指数增加,从第3轮淘洗得
到的噬菌斑中随机挑取12个,合计6O个(12个单克
隆噬菌斑×5株单克隆抗体),扩增,扩增后的噬菌体
滴度均在10pfu/mI以上.5株单克隆抗体在肽库
的生物淘洗过程中没有明显的差异(表1).
表1用IBDV单抗对噬菌体展示12肽库的生物淘洗
Table1Bio—panningofphagedisplay12-peptidelibraryby
monoclona1antibodytoIBDV
#Approximately(Unit:pfu).Withoutevidentdiversityinthe
panningforfivemonoclonalantibodyHNF1,HNF7,B34,2B1and
2G8.
2.2噬菌体短肽的ELISA检测
用5株单克隆抗体作为筛选分子,分别从第3
轮淘洗得到的噬菌斑中随机挑取12个扩增,合计
6O个单克隆噬菌斑(12个单克隆噬菌斑×5株单克
隆抗体),用问接ELISA检测,A值均大于1.O0.
表明,在5个筛选12肽内均含有单克隆抗体结合位
点.
2.3单克隆抗体竞争抑制检测
5株单克隆抗体在试验中的抑制率均可达到
4O.表明,游离单克隆抗体可以竞争抑制筛选肽
与固相包被单克隆抗体的反应.由此证明:在5个
筛选12肽内均含有单克隆抗体特异结合位点.
2.4IBDV竞争抑制检测
IBDV抗原在试验中的抑制率达到4O以上.
表明,游离IBDV也可以竞争抑制筛选12肽与固相
包被单克隆抗体的反应.进一步证明:在5个筛选
12肽内均含有IBDV抗原表位.
2.5序列分析
将测定的35个单克隆噬菌体(7个单克隆噬菌
体×5株单克隆抗体)gIII基因部分核苷酸序列用
生物信息学软件DNASIS(DNASISforWindows
V2.5,HitachiSoftwareEngineeringCo,Ltd.)分
析并进一步推导筛选12肽的氨基酸序列.5个含
有不同IBDV抗原表位12肽的序列分别如下:
HNFlCCTAAGACTCATAATTCTGGTCGTTCTAATGTGGAT
ProLySWhrHiSAsnSerGlyArgSerASIIValAsp
HNF7ACGCTTCAWCTGCCGCAWTTGTGGCGGCCTCTTTCT
WhrLeUHiSLeUProHiSLeUTrpArgProLeuSer
B34CATAATGCGAAGWATGTGTCGGCTGAGTCTTGGGGG
HiSAsnAlaLysWYrValSerAlaGlUSerTrpG1Y
2B1CATCCGGATAGTATTCATCCGTTTCTGGCGWCTCCT
HiSProASPSerIleHiSProPheLeuAlaSerPro
2G8GATACTCTTCATGGGCATGGWWWWACWAATTGGTTT
ASPWhrLeuHiSG1YHiSG1YPheWhrAS1/WrpPhe
将上述5个12肽的氨基酸序列分别与GenBank中
IBDV基因组A片段(GenBank登录号:AF443294,
AF362776,AF454945)和B片段(AF362774,
AF455136)编码蛋白的氨基酸序列进行比较,发现
2B1筛选肽有4个连续氨基酸残基Ieu—Ala—Ser—
Pro与IBDV基因组A片段编码多聚蛋白的第536—
599氨基酸残基一致,推测2B1为线性表位;而
HNF1,HNF7,B34和2G8筛选肽均没找到有3个
以上连续氨基酸残基与IBDV基因组编码蛋白氨基
酸残基相同之处,推测可能是构象依赖性表位.
3讨论
IBD是危害养鸡业的主要传染病之一,变异株
和超强毒株的出现使该病的防控难度加大,目前虽
然研制了多种商品化的弱毒疫苗和灭活疫苗,但其
安全性和制造工艺尚有不尽人意之处,如为抵抗超
强毒的攻击,使用中强毒力的毒株研制活疫苗,给
IBD的防控带来极大的隐患,灭活疫苗存在着抗原
制备的困难.因此,国内外学者一直在探索免疫原
性好且安全性高的新型疫苗,从重组亚单位疫苗[3]
506中国病毒学第2O卷
到病毒载体疫苗和核酸疫苗u,均存在着表达
量低,保护率低,免疫程序复杂以及难以工业化生产
等缺点.
蛋白质分子上的抗原表位(亦称抗原决定簇)是
蛋白质抗原性的物质基础.近年来研究发现的模拟
抗原表位,本质上是构象依赖性表位,虽然模拟表位
的氨基酸顺序与蛋白质分子一级结构的氨基酸顺序
截然不同,却可以引起特异性的免疫反应,因此,在
免疫应答中的地位极为重要.用常规基因克隆表达
方法研制的重组亚单位疫苗,尽管人们采用多种方
法进行复性,仍然难以完全恢复到天然的构象,导致
部分构象依赖性抗原表位丢失,其中可能是中和抗
原表位,从而影响到机体产生完全有效的保护性免
疫应答,这是影响其免疫效果的重要原因.
噬菌体展示技术已经广泛用于病毒的抗原表位
分析,随着对病毒抗原表位研究的进展,已经发现在
一
些分子量较大的病毒保护性免疫原中除与免疫保
护有关的中和表位外,还有非中和表位,抑制性表位
甚或是毒性表位,这些表位会影响疫苗的免疫效果.
已有实验l_1显示,单一中和表位的免疫原性较弱且
保护活性不完全,串联的抗原表位可以增强抗原的
免疫原性,因此发展多表位疫苗有利于提供更完全
和更有针对性的免疫保护.但并不是拷贝数越多越
好,只有串联适量的拷贝数,才能够刺激机体产生最
大量的中和抗体.此外,抗原表位,连接方法以及表
达系统等都会影响到多表位疫苗的免疫效力,表位
的加工效率也是影响多表位疫苗免疫原性的重要变
量.待这些问题解决后,该技术将成为研制基因工
程疫苗的新方法.
本试验用5株IBDV单克隆抗体从噬菌体展示
随机12肽库中获得了5个含有IBDV抗原表位的
短肽,其中1个线性表位,4个构象依赖性表位,佐
证了有学者认同的在病毒抗原中存在着大量的构象
依赖性表位.
参考文献
[1]FaheyKJ,McWatersP,BrownMA,etal,Virus—neutrali—
zingandpassivelyprotectivemonoclonalantibodiestoinfec—
tiousbursaldiseasevirusofchickens[-I].AvianDis,1991,
35:365-373.
I-2]MundtE,BeyerJ,MullerH.Identificationofanovelviral
proteinininfectiousbursaldiseasevirus—infectedcells[J].J
GenVirol,l995,76:437-443.
I-3]AzadA’A,FaheyKJ,BarrettSA,etal,ExpressioninEsch—
erichiacoliofcDNAfragmentsencodingthegeneforthehost—
protectiveantigenofinfectiousbursardiseasevirus1-.13.Virot—
ogy,1986,149(2):190—198.
[4]YamaguchiT,LwataK,KobayashiM,etal,Epitopemapping
ofcapsidproteinsVP2andVP3ofinfectiousbursaldiseasevi—
rus[J].ArchViro[,1996,141(8):1493—1507.
[5]Cuix,NageshaHS,HolmesIH.Mappingofconformational
epitopesoncapsidproteinVP2ofinfectiousbursaldiseasevi—
rusbyfdtetphagedisplay[J].JVirolMethods,2003,114
(1):109-112.
1-6]Cuix.NageshaHS,HolmesIH.Identificationofcrucial
residuesofconformationalepitopesonVP2proteinofinfec-
tiousbursaldiseasevirusbyphagedisplayl-J].JVirolMeth—
ods,2003,109(1):75-83.
[7]MacreadieIG,VaughanPR,ChapmanAJ,etal,Passive
protectionagainstinfectiousbursaldiseasevirusbyviralVP2
expressedinyeastl-J].Vaccine,1990,8(6):549—552.
WhereatSA,etal,Ac— [83SnyderDB,VakhariaVN,Mengel—
tivecross?-protectioninducedbyarecombinantbaculovirusex?-
pressingchimericinfectiousbursaldiseasevirusstructuralpro—
teinsl-J].AvianDis,1994,38(4):701-707.
r9]Shawl,DavisonTF.ProtectionfromIBDV—inducedbursal
damagebyarecombinantfowlpoxvaccine,fplBD1,isdepend—
entonthetitreofchallengevirusandchickengenotype[J].
Vaccine,2000,18(28):3230—324i.
[1o3DarteilR,BublotM,LaplaceE,etal,Herpesvirusofturkey
recombinantvirusesexpressinginfectiousbursaldiseasevirus
(IBDV)VP2immunogeninduceprotectionagainstanIBDV
virulentchallengeinchickensl-J].Virology,1995,211(2):
481—490.
[11]TsukamotoK,KojimaC,KomoriY,etal,Protectionof
chickensagainstveryvirulentinfectiousbursaldiseasevirus
(IBDV)andMarekSdiseasevirus(MDV)witharecombi—
nantMDVexpressingIBDVVP2[J].Virology,1999,257
(2):352—362.
[12]FodorI,HorvathE,FodorN,etal,Inductionofprotective
immunityinchickensimmunizedwithplasmidDNAencoding
infectiousbursaldiseasevirusantigensl-J].ActaVetHung,
1999,47(4):481-492.
[13]BroekhuijsenMP,BlomT,vanRijnJ,etal,Synthesisoffu—
sionproteinswithmultiplecopiesofanantigenicdeterminant
offoot—and—mouthdiseasevirus[J].Gene,1986,49(2):
189一l97.
[14]
search&DB=nucleotide
[15]陈光华,蒋桃珍,董琳琳,等.鸡传染性法氏囊病病毒单克隆
抗体的研究[J].中国兽药杂志,2000,34(3):9-13.
[16]王军,李银,范红结,等.传染性法氏囊病病毒抗原表位
分析一单克隆抗体的制备与鉴定l-J].中国预防兽医,
2005.27(3):l7l一174.