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婴儿游泳注意事项

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婴儿游泳注意事项EASYspinPlantRNAKitEASYspin植物RNA快速提取试剂盒目录号:RN09试剂盒组成、储存、稳定性:试剂盒组成保存50次(RN0902)裂解液RLT室温50ml去蛋白液RW1室温40ml漂洗液RW室温10ml第一次使用前按说明加指定量乙醇RNase-freeH2O室温10mlPLANTaid室温5mlRNase-free吸附柱RA和收集管室温50套本试剂盒在室温储存12个月不影响使用效果。储存事项:1.不合适的储存于低温(4℃或者-20...
婴儿游泳注意事项
EASYspinPlantRNAKitEASYspin植物RNA快速提取试剂盒目录号:RN09试剂盒组成、储存、稳定性:试剂盒组成保存50次(RN0902)裂解液RLT室温50ml去蛋白液RW1室温40ml漂洗液RW室温10ml第一次使用前按说明加指定量乙醇RNase-freeH2O室温10mlPLANTaid室温5mlRNase-free吸附柱RA和收集管室温50套本试剂盒在室温储存12个月不影响使用效果。储存事项:1.不合适的储存于低温(4℃或者-20℃)会造成溶液沉淀,影响使用效果,因此运输和储存均在室温下(15℃-25℃)进行。2.避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、PH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。注意事项1.所有的离心步骤均在室温完成,使用转速可以达到13,000rpm的传统台式离心机。2.需要自备乙醇,研钵(可选)。3.裂解液RLT和去蛋白液RW1中含有刺激性化合物,操作时戴乳胶手套,避免沾染皮肤,眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时,要用大量清水或者生理盐水冲洗。4.关于DNA的微量残留:一般说来任何总RNA提取试剂在提取过程中无法完全避免DNA的微量残留,本公司的EASYspin系列RNA提取产品,由于采取了本公司独特的缓冲体系和选择了特殊吸附能力的吸附膜已经清除了绝大部分的DNA残留,在大多数RT-PCR扩增过程中极其微量的DNA残留影响不是很大,如果要进行严格的mRNA表达量分析如荧光定量PCR,我们建议在进行模板和引物的选择时:1)选用跨内含子的引物,以穿过mRNA中的连接区,这样DNA就不能作为模板参与扩增反应。2)选择基因组DNA和cDNA上扩增的产物大小不一样的引物对。3)将RNA提取物用RNase-free的DNaseI处理。本试剂盒还可以用于DNaseI处理后的RNA清洁(cleanup),请联系我们索取具体操作。4)在步骤去蛋白液RW1漂洗前,直接在吸附柱RA上进行DNaseI柱上消化处理。购买DNA酶柱上消化试剂盒(货号:RN34)前可先索取具体操作说明书。5.关于复杂植物样品提取残留较多DNA的情况有两个选项:1)在步骤去蛋白液RW1漂洗前,直接在吸附柱RA上进行DNaseI柱上消化处理。购买DNA酶柱上消化试剂盒(货号:RN34)前可先索取具体操作说明书。2)部分较复杂的植物样品提取时,可能残留较多DNA,可以尝试本公司的RN38EASYspinPlus植物RNA提取试剂盒。RN38在RN09EASYspin植物RNA提取试剂盒基础上,又独家研发成功基因组DNA清除柱技术可以有效清除DNA残留,在大多数情况下,可以将DNA残留清除到紫外下观测不可见。6.关于特别复杂难提取植物样品提取失败或者产量低的情况:一些特别复杂的植物样品提取,如葡萄果实,蓝靛果果实等,RN09裂解液RLT无法提取,需选择RN53EASYspinPlus多糖多酚/复杂植物RNA提取试剂盒。一些样品产量较低,也可以尝试RN53EASYspinPlus多糖多酚/复杂植物RNA提取试剂盒。RN53配有强力裂解液CLB选项,在很多情况下,可以提取复杂样品或者明显提高产量(详情请看RN53说明书)。操作步骤:(实验前请先阅读注意事项)提示:⇨第一次使用前请先在漂洗液RW瓶加入指定量无水乙醇!1.直接研磨法(推荐):a. 新鲜植物组织称重后取100mg迅速剪成小块放入研钵(冰冻保存或者液氮保存样品可直接称重后取100mg放入研钵),加入10体积(1ml)RLT和1体积(100μl)PLANTaid室温下充分研磨成匀浆,注意应该迅速研磨让组织和裂解液RLT立刻充分接触以抑制RNA酶活性。注:PLANTaid是提取多糖多酚次级代谢产物色素含量丰富的困难样品不可缺少成分。b. 将裂解物转入离心管,剧烈摇晃振荡15秒,13,000rpm离心5-10分钟,沉淀不能裂解的碎片和结合有多糖多酚的PLANTaid。c. 取480μl裂解物上清(在不超过RNA吸附柱能力的情况下可以取更多或者全部上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上清体积一半的无水乙醇(0.5体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。d. 立刻接操作步骤的步骤3。2.液氮研磨法(提取复杂,易降解样品时推荐此法):a. 取500μl裂解液RLT,转入1.5ml离心管中,加入50μlPLANTaid混匀备用。b. 液氮中研磨适量植物组织成细粉后,取50mg细粉转入上述装有RLT和PLANTaid的离心管,立即用手剧烈振荡20秒,充分裂解。c. 用吸头吹打混匀帮助裂解或者剧烈涡旋震荡直到得到满意匀浆结果(或者电动匀浆30秒),可以剪切DNA,降低粘稠度和提高产量。d. 将裂解物13,000rpm离心5-10分钟,沉淀不能裂解的碎片和结合有多糖多酚的PLANTaid。e. 取裂解物上清(在不超过RNA吸附柱能力的情况下可以取更多的上清,这样可以提高产量)转到一个新离心管。加入上清体积一半的无水乙醇(0.5体积),此时可能出现沉淀,但是不影响提取过程,立即吹打混匀,不要离心。f. 立刻接操作步骤的步骤3。注意:以上液氮研磨法用户可以根据需要加倍处理,可以提高产量。也就是使用1ml的裂解液RLT和100μlPLANTaid和100mg的样品。3.将混合物(每次小于720μl,多可以分两次加入)加入一个吸附柱RA中,(吸附柱放入收集管中)13,000rpm离心2分钟,弃掉废液。确保离心后液体全部滤过去,膜上没有残留,如有必要,可以加大离心力和离心时间。4.加700μl去蛋白液RW1,室温放置1分钟,13,000rpm离心30秒,弃掉废液。5.加入500μl漂洗液RW(请先检查是否已加入无水乙醇!),13,000rpm离心30秒,弃掉废液。加入500μl漂洗液RW,重复一遍。6.将吸附柱RA放回空收集管中,13,000rpm离心2分钟,尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。7.取出吸附柱RA,放入一个RNasefree离心管中,根据预期RNA产量在吸附膜的中间部位加30-50μlRNasefreewater(事先在70-90℃水浴中加热可提高产量),室温放置1分钟,12,000rpm离心1分钟。8.如果预期RNA产量>30μg,加30-50μlRNasefreewater重复步骤7,合并两次洗液,或者使用第一次的洗脱液加回到吸附柱重复步骤一遍(如果需要RNA浓度高)。洗脱两遍的RNA洗脱液RNA浓度高,分两次洗脱合并洗脱液的RNA产量比前者高15–30%,但是浓度要低,用户根据需要选择。附录1:DNA酶柱上消化(详细请参考RN34DNaseI柱上消化试剂盒说明书)1.按照前面所列RN09试剂盒操作步骤操作,直到做完操作步骤3。2.取45μlDNaseIbuffer和5μlRNasefreeDNaseI在离心管轻轻吹打混匀成工作液(处理多个离心柱子要按照比例放大制备工作液)。3.向吸附柱RA中加入350μl去蛋白液RW1,12,000rpm离心30秒,弃废液,将吸附柱放回收集管中。4.向吸附柱RA中央加入50μl的DNaseI工作液,室温(20℃-30℃)放置15分钟。注意直接将工作液滴在膜中央上向膜四周浸润充分和膜接触,不要让工作液滴在O型垫圈或是离心柱管壁上挂壁或者挂在垫圈上不能充分和膜接触。5.向吸附柱RA中加入350μl去蛋白液RW1,12,000rpm离心30-60秒,弃废液,将吸附柱放回收集管中。6.接操作步骤5完成后续步骤。附录2:使用EASYspin/EASYspinPlus系列植物RNA快速提取试剂盒发表的部分文章100多篇:1.桃果实、花、根、叶:Isolation,characterisationandphylogeneticanalysisofresistancegene  analoguesinawildspeciesofpeach(Prunuskansuensis).CanadianJournalofPlantScience,  2011,91(6):961-9702.樱桃花、叶、颚等各部位:Over-expressionofthePaAP1genefromsweetcherry(Prunusavium  L.)  causesearlyfloweri.JournalofPlantPhysiology,2012,Availableonline1December  20123.洋葱根、茎、蕾、叶、雌雄蕊等各部位:CloningandExpressionAnalysisofAPutativeBClassMADS-box  GeneofAcPIinOnion.ScientiaAgriculturaSinica,2012,45(23):4759-47694.芜菁:IsolationandFunctionalCharacterisationoftheGenesEncodingΔ8-Sphingolipid   DesaturasefromBrassicarapa.JournalofGeneticsandGenomicsVolume39,Issue1,January  2012,  Pages47–595.芜 菁1:EXPRESSION,DIVERGENCEANDEVOLUTIONOFTHECALEOSINGENEFAMILYINBRASSICARAPA.Arch.Biol.Sci.,Belgrade,65(3),863-876,2013DOI:10.2298/ABS1303863H6.番茄叶:EffectofLowTemperatureStressontheExpressionofProDHGeneandtheActivitiesoftheProlineDehydrogenaseinLeavesofTomatoSeedling.ChineseAgriculturalScience Bulletin2012,28(10):132-1357.栀子叶:IsolationofHighQualityTotalRNAfromGardeniajasminoidesEills.ChineseAgricultural  ScienceBulletin.2012,28(27):194-1988.油桐果实:CuiQinqin,HanXiaojiao,ChenYicun,ZhanZhiyong,LinLiyuan,WangYangdong.  IsolationandExpressionCharacteristicsofBiotinCarboxylCarrierProteinCodingGene(VfBCCP) fromVerniciafordii.SCIENTIASILVAESINICAE.2012,48(8):AvailableonlineAugust9.油桐果实1:SelectionofReliableReferenceGenesforGeneExpressionStudiesUsingReal-Time  PCRinTungTreeduringSeedDevelopment.PLoSONE,2012,7(8):e4308410.紫菜:MolecularcloningandexpressionanalysisofribosomalproteinS7genefromPorphyra  haitanensis.JOURNALOFFISHERIESOFCHINA,2011,35(12):1814-182111.石斛:Molecularcharacterizationofamitogen-activatedproteinkinasegeneDoMPK1inDendrobiumofficinale.ActaPharmaceuticaSinica,2012,47(12):1703-170912.石斛1:ESTsAnalysisRevealsPutativeGenesInvolvedinSymbioticSeedGermin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