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豚鼠肠道肌间神经丛内胆碱能神经元的分布

2017-12-19 8页 doc 23KB 13阅读

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豚鼠肠道肌间神经丛内胆碱能神经元的分布豚鼠肠道肌间神经丛内胆碱能神经元的分布 豚鼠肠道肌间神经丛内胆碱能神经元的分 布 1{8ChinJNeurosci,1999|Vo115'2)-l48,1,50 豚鼠肠道肌问神经丛内胆碱能神经元的分布 巡量叠兀二殷光甫胡道松林传友茹立强' (同济医科大学神经生物学教研室武汉430030) ;?每够(- 摘要应用免疫组织化学技术.研究了不同肠段胆碱乙酰化酶(ChAc)免疫反应性(IR)神经元的分布,拟阐 明胆碱能神经元分布与肠道运动功能的相互关系.结果发现t十二指肠,空肠,回肠,结肠及直肠的ChAc阳性 细胞占...
豚鼠肠道肌间神经丛内胆碱能神经元的分布
豚鼠肠道肌间神经丛内胆碱能神经元的分布 豚鼠肠道肌间神经丛内胆碱能神经元的分 布 1{8ChinJNeurosci,1999|Vo115'2)-l48,1,50 豚鼠肠道肌问神经丛内胆碱能神经元的分布 巡量叠兀二殷光甫胡道松林传友茹立强' (同济医科大学神经生物学教研室武汉430030) ;?每够(- 摘要应用免疫组织化学技术.研究了不同肠段胆碱乙酰化酶(ChAc)免疫反应性(IR)神经元的分布,拟阐 明胆碱能神经元分布与肠道运动功能的相互关系.结果发现t十二指肠,空肠,回肠,结肠及直肠的ChAc阳性 细胞占总细胞数的百分比分别是:26%.2g,32,l4和l6.小肠胆碱能神经元胞体密度明显高于其他 肠段.小肠胆碱能神经元分布密度较高与肠动力密切相关. 关键词肠神经系统胆碱乙酰化酶免疫组织化学豚鼠齐1}筑 DISTRIBUTIoNoFCHoLINERGICNEURoNSINTHE MYENTERICPLEXUSoFGUINEA—PIGINTESTINAL TRACT YANG13o,CAOFu—Yuan,YINGuang—Fu,HUDgo—Song,LINChuan—You,RULi—Qiang (DepartmemofNeurobiology,Tong~MedicalUniversz'ty,Wu~an430030) ABSTRACTEntericnervoussystem(ENS)isinvolvedindependentlyintheregulationofga stroenteric motility,sensationandendocrine-immunity.Usingimmunohistochemicaltechniques,wee xploredthedistri— butionofcholineacetylase(ChAc)immunoreactivity(IR)neuronsineachsegmentofguinea —pigintestinal tractandtherelationbetweenthedistributionmodelofcholinergicneuronsandentericmotility.Results showedthatthesizeanddensityofmyentericplexusineachintestinalsegmentwerequitedifferent.Theposi— fivecellsdistributingratioofduodenum,jejunum,ileumcolonandrectumwere26%.29,32,14and 16,respectively.Thedensityofcholinergicneuronsinsmallintestinewashigherthanthatinotherseg— meritsofintestinaltractanditsenteticmotilitywasmoreactive.whichhadcloserelationwithentericmotili— ty. KEYWORDSentericnervou~system(ENS)cholineacetylase(ChAc)immun.h15t.chemi8trv guinea—ptg 肠神经系统(entericnervoussystem,ENs)是自 主神经系统的第三成分,它由胃肠道壁内微小神经 节及其神经元组成.ENS可独立参与调节胃肠运 动,感觉,内分泌一免疫等功能.胆碱能神经元具有* 卫生部科学基金课题(99—1—139),负责^ Received1998—11-20Accepted1999r02—11 奋肠道运动的功能,胆碱乙酰化酶(cholineacety— lase,ChAe)是胆碱能神经元的特异标志酶.本文研 究不同肠段ChAc免疫反应性(immunoreactivity. IR)神盎元的分布.拟阐明胆碱能神经元与肠道功能 经丛149 活动的相互关系 供形态学依据. 为胃肠道动力的神经调节机制提攻,每次10rain. 材料和方法 豚鼠5只,雌雄不拘,体重约200g,水合氯醛 (300mg/kg)腹腔麻醉,经主动脉灌注温生理盐水 (37?)150ml冲洗血液,随后用砖的(4c)4多 聚甲醛缓冲液400ml灌注固定,立即切取距幽门5 cm处的十二指肠,肠系膜上动脉静脉支配区域中段 的空肠,距回盲部5cl'f1.处的回肠,升横结肠交界处 的结肠及齿状线上1cm处的直肠各约lcm的肠管 做全部纵肌层撕片,程入2O蔗糖溶液.4?过夜. 撕片标本经0.25TritonX一100预处理(37?)1 h,置入1:4000ChAc的大鼠源性单克隆抗体中 (Incstar公司),经37?2h后,转入4?48h.撕片 出一抗后,置入生物素标记的大鼠源性IgG(Sigma 公司,1;500)中孵育(37?)1h,放入ABC复合物 (Sigma,1:500)1h(37?),最后用硫酸镍铵一葡萄 糖氧化酵一3,3一二氪基联苯胺方法加强显色[]].以 上每一步骤之间均用0.0lmol/LPBS彻底漂洗三 阴性对照:用血清稀释液替代一抗,其余反应步 骤同上.结果对照组中的肠肌层内未见ChAe阳性 成分. ChAc—IR细胞计数:每只豚鼠随机取不同肠段 10个神经丛,分别算出阳性细胞数和经中性红复染 后神经节细胞总数的均数,随后得出5只豚鼠阳性 细胞占细咆总数的百分比.加以比较. 结果 肠撕片ChAc—IR神经元的分布和形态光镜下可 见肠撕片各神经丛大小不等.散在分布.丛与丛之间 有节问束相连神经丛内布满神经节细胞,阳性细胞 成群分布.呈圆形,核周质为蓝色,胞核不着色,有的 可见胞突.其神经纤维也呈蓝色;有的阴性细胞可见 有ChAc阳性纤维末梢围绕其周围.见(图l,5). 各肠段撕片ChAc-IR神经元的密度小肠撕片 ChAc—IR神经元的密度明显高于大肠.睬鼠肠道内 各段ChAc—IR细胞占丛内神经细胞总数的百分比 见表1 Fis1ChAc—lRr.nsinthe duodenumotgultteapig(?) bar=20"m Fig2ChAe—lRneuintheejunum ofguineap(?) bar=20"m Fig3CkAe—IRnsintheileumof guinea—pig(?) bar~20"【 Fig4(1eft)ChAc—lRneuTon~inthe ec,1Onoguineap(?) ' oar=:20 Fig5(right)ChAcIR?inthe rectuIn0guinea—p(?) bar=20"m 15O扬渡曹福元殷光 Totalnumberofganglionicceils NumberofChAc—lRcelts percentage() 4g7 l29 26 502 l46 29 425 137 32 468 66 14 4l9 67 l6 Calculatingrespectivelythe?ofganglionicceltsandChAc— IRcellsof10plexusin8guin~pigs 讨论 ChAc是ACh生物合成酶,也是胆碱能神经元 的特异标志酶,存在于所有胆碱能神经元.ChAc免 疫反应活性被用于鉴别各种组织中的胆碱能神经 元.本研究应用ChAc单克隆抗体免疫组化技 术证明了胆碱能神经元在各段腑道肌间神经丛内的 分布差异. 豚鼠腑道胆碱能及肽能神经的研究已有不少报 道叫】,但大多数局限在回腑,结腑,对腑道各段的 分布差异的比较研究较步本文用ChAc抗体探讨 了不同腑段胆碱能神经元的分布,结果显示小肠胆 碱能神经元的密度较高,结腑的较低.本室曾用 AChE组化法观察到腑道各段AChE强阳性神经元 占神经节细胞总数的百分比为:十二指腑30,空 腑34,回腑37,结腑16,直腑17】两法所 测的胆碱能神经元分布趋势相似,但AChE组化法 的分布比率较高,提示用ChAc高单克隆抗体免疫 组化技术测定胆碱能神经元的方法比AChE组化法 更为精确. 研究表明:有许多因素参与腑道运动的调节,如 兴奋平滑肌的神经元含有ACh和P物质等,可使肌 细胞膜去极化,导致平滑肌收缩【l,而脑啡肽可引 起神经元超极化和降低胆碱能神经快速兴奋性突触 后电位的幅度,抑制平滑肌收缩l3l因此,胆碱能 神经元的多少及功能状态是腑道运动能力强弱的关 键因素小腑运动十分活跃,这与其胆碱能神经元分 布密度较高是密切相关的. 参考文献 1ShuS.JuG,FanL.Theglucose method0tperoxidasehistochemistryofthenervoug systemNeurosciLett,1989I86}169,174 2WangJtJuG.Th—andChAT—immunoreactivee fibersintheanteriorpituitaryofther丑t.ChinJHis— tochemCytochem,l997I6(2):123,189(inChinese) 3EckensteiuF,ThoenenH.Productionofspecif~anti seraandmonoclonalantibodic*tocholineacelyltrans— fe?!characterizationanduseforidentificationof cholinergicneurons.EMBOJ,198211:363~368 4SchemannM,SannH,SchaafC,eta1.1dentJficadon ofeholinergienenroT~inentericnervoussystemby antibodiesagainstcbotineacetyltra~ferase.AmJ Physiot,1993{265(8Pt1)IGl005,1009 5GabeltaGA.Thehumbetofneul~ln5inthesinai1in— tesfineofguin~一pigsandsheep.Neuroscience,1989; 22:737~752 6YoungHM.FurnessJB,Se~eltPta1.Totalhum— hersofneul'(insinmysntericgangliaoftheguinea—pig smallintestine.CdITissRes,19934272『197,800 7BaylissWM—StarlingEH.Theen伯andinner— rationofthesmalIintestine.JPhysloI.1989,84:g9, 143 8WuHJ.LincY.HuDS,"a1.DistributionofNos. AChEandVIP—positivenellronsintheratintestine. Proceedingsofthe4thChin~一JapanJointHistochem- Lan,am]CytochemistrySymposium.Chongqing: ChongqlngPublishingHouse,1998p370~372 9CostaM.BrookesSJH.Tbentericn?uBsystem. AmJG8stroeni:el~3I,1994F89Il30,l37 10ZhouIU—BaseandClinic 1991'lO,18{j"Beijing『SciencePublishingHouse Chinese) l1PernowB.SubstanceP.PharmaealRev.1983'38:88, g2 l2NorthRA.Y0shifumiK.Wl1lJT"4Oathe mechaaismandsiteofactionofenkephalinonsingle myeutericneuron~.BrainRes.1979I185:67,77 l3BrcokesSJH,SteelePA.CostaM.Calretininim— munoreactivJtyincholinergicmotor~urDn8,interueu— rDnsandvasomotorneuronsintheguinea—pigsmallin— testine.CellTissRes,l9glI263I471,481
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